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    Anlise da actividade da catalase de Leveduras em gel nativo

    Introduo:

    A levedura Saccharomyces cerevisiae capaz de crescer em meios de cultura contendo uma

    fonte de carbono fermentvel (ex. glucose) ou no fermentvel (ex. etanol, glicerol). Em meio

    de cultura com glucose, as clulas esto sob represso catablica pelo que a expresso de

    protenas mitocondriais inibida. Nessas condies, a energia produzida na via glicoltica,

    sendo o piruvato formado convertido em acetaldedo pela piruvato descarboxilase e este em

    etanol pela lcool desidrogenase 1 (fermentao alcolica). No fim da fase exponencial de

    crescimento, medida que a concentrao de glucose diminui, as clulas tornam-se

    gradualmente desreprimidas e induzem a sntese de enzimas mitocondriais (fase de transio

    diauxica). O etanol ento utilizado para produo de energia por metabolismo respiratrio

    (fase ps-diauxica): a lcool desidrogenase 2 converte etanol em acetaldedo, e a aldedo

    desidrogenase converte o acetaldedo em acetato, o qual entra no ciclo de Krebs. Como

    subprodutos da respirao mitocondrial, formam-se radicais superxido, pelo que as clulas

    induzem concomitantemente a expresso de defesas antioxidantes, tais como superxido

    dismutases, que convertem radicais superxido em perxido de hidrognio, e catalase e

    peroxidases, que reduzem o perxido de hidrognio a gua.

    Material equipamento e reagentes

    Clulas de Saccharomyces cerevisiae BY4741

    Meio de cultura YPD: 1% extracto de levedura 2% bactopeptona 2% glucose

    Tampo 50 mM NaK Fosfato 0.1 mM EDTA pH 7.0

    50 mM K2HPO4 0.1 mM EDTA

    K2HPO4 (174.18 g/mol) 8.709 g

    EDTA.2H2O (372.24 g/mol) 0.0372 g

    H2O 1000 ml

    50 mM KH2PO4 0.1 mM EDTA

    KH2PO4 (136.09 g/mol) 6.805 g

    EDTA.2H2O (372.24 g/mol) 0.0372 g

    H2O 1000 ml

    Tampo fosfato de potssio 50 mM, pH 7,0

    cocktail inibidores de proteases 30X

    prolas de zircnio

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    Incubadora orbital

    centrifuga de bancada

    microcentrfuga

    tubos eppendorf

    micropipetas

    Pontas azuis e amarelas

    Tanque de electroforese

    Alimentador de corrente

    Gel nativo

    Tampo de electroforese (25 mM Tris-HCl pH 8.3, 192 mM Glicina)

    Soluo corante-sacarose de aplicao da amostra (50% sacarose, 0,1%azul bromofenol)

    Peroxidase (HSP) em 50 mM KPi pH 6,7

    Diaminobenzidine (DAB) em 50 mM KPi pH 6,7

    30 % H2O2

    Crecimento das clulas

    Mtodo

    1.Crescer clulas de levedura em meio YPD a 26C at OD600 = 0.5-0.6 (fase exponencial;

    amostra 1: 30 ml/grupo) ou at OD600 = 8-10 (fase estacionria; amostra 2: 30 ml/grupo).

    NOTA: manter as amostras a 4C a partir deste ponto.

    2.Centrifugar as clulas (5 ml/grupo) a 4000 rpm, 5 min.

    3.Ressuspender o pellet em 1 ml tampo fosfato e transferir para tubo eppendorf.

    4.Centrifugar a 13000 rpm, 1 min, e rejeitar o sobrenadante.

    5.Congelar as clulas a -70C.

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    Catalase - Lise das clulas

    1.Deixar descongelar as clulas lentamente.

    2.Ressuspender o pellet em 100 l tampo fosfato + 3.4 l cocktail inibidores de proteases

    30X.

    3.Adicionar prolas de zircnio (2 colheres peq) e agitar num vortex 5 x 1 min.

    4.Centrifugar a 14000 rpm, 15 min.

    5.Guardar o sobrenadante num tubo eppendorf.

    Anlise da actividade da catalase em gel nativo

    1. Preparar um running gel a 7,5 % acrilamida (Mighty-small; 0.75 mm) segundo o seguinteesquema:

    Acrilamida 30% 3,75 ml

    2 M Tris-HCl pH 8.85 2,81 ml

    H2O 8,27 ml

    Persulfato de Amnio 10% 150 l

    TEMED 15 l

    2.Cobrir o gel com H2O e deixar a polimerizar durante 30 minutos.

    3. Remover a camada de H2O, colocar o pente e preparar um stacking gel segundo o

    seguinte esquema:

    Acrilamida 30% 0,534 ml

    1 M Tris-HCl pH 6.8 0,5 ml

    H2O 2,92 ml

    Persulfato de Amnio 10% 40 l

    TEMED 4 l

    4. Aps polimerizao encher o tanque com tampo de electroforese.

    5. Prepare a amostra da seguinte forma:

    a) Pipete para um tubo eppendorf 15 l de sobrenadante obtido aps a lise. Junte 5 l da

    soluo corante-sacarose.

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    6. Aplicar 15 l de amostra no gel.

    7. Corra o gel numa cmara fria. Proceder electroforese V max = 100 V.

    8. Retirar o gel e incuba-lo 30-45 min em HSP (0.9 mg /18 ml de 50 mM KPi pH 6,7)

    9. Adicionar 9,2 l de 30 % H2O2 (concentrao final de 5 mM) e agitar continuamente

    durante 10 min.

    10. Lavar o gel rapidamente com dH2O e adicionar a sol. DAB (10 mg / 20 ml de 50 mM KPi pH

    6,7).

    Incubar com agitao suave at aparecimento das bandas.