ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO · de Ehrlichia spp naturalmente infectados, sugere-se a...
22
Larissa Rodrigues Galera ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO Curitiba/PR 2013
Transcript of ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO · de Ehrlichia spp naturalmente infectados, sugere-se a...
Larissa Rodrigues Galera
ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO
Curitiba/PR
2013
Larissa Rodrigues Galera
ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO
Monografia apresentada como requisito para
conclusão do Curso de Pós-Graduação,
Especialização em Clínica Médica e Cirúrgica
de Pequenos Animais, do Centro de Estudos
Superiores de Maceió, da Fundação
Educacional Jayme de Altavila, orientada pela
M.Sc. Denize Cotrim Barbosa.
Curitiba/PR
2013
Larissa Rodrigues Galera
ERLIQUIOSE CANINA: RELATO DE CASO
Monografia apresentada como requisito para
conclusão do Curso de Pós-Graduação,
Especialização em Clínica Médica e Cirúrgica
de Pequenos Animais, do Centro de Estudos
Superiores de Maceió, da Fundação
Educacional Jayme de Altavila, orientada pela
M.Sc. Denize Cotrim Barbosa.
Curitiba/PR, _______ de __________________ de 20___
– Orientador –
Curitiba/PR
2013
Dedicatória
Ao meu marido Alexandre e ao meu filho Kaio, razões do meu viver.
Aos meus país Sonia e José pelo seu amor incondicional.
Agradecimento
A Minha amiga Jaciara pela ajuda na realização deste trabalho.
A orientadora Dra. Denize Cotrim Barbosa pela paciência e amizade.
A Profª Valéria Teixeira pela atenção, compreensão e generosidade.
Resumo
O presente trabalho teve como objetivo fazer uma breve revisão sobre erliquiose no Brasil e
relatar um caso clínico do cão atendido em uma clínica Veterinária na cidade de Cajati, São
Paulo, no ano de 2013. Optou-se por este tema devido ao crescente número de casos no
Brasil, principalmente em regiões de clima quente. A erliquiose é uma doença infecciosa de
fase aguda, subaguda ou crônica é transmitida pelo carrapato infectado pelo agente etiológico
Ehrlichia canis que acomete os cães. A doença é considerada uma zoonose grave, com
grande potencial de infecção humana, as evidências sugerem que a erliquiose humana não é
transmitida diretamente pelos cães, mas por um vetor. Portanto o conhecimento desta doença
assume uma importância primordial para diagnóstico clínico preciso e tratamento específico,
levando em consideração o bem estar animal e humano, tendo em vista o potencial zoonótico
desta doença.
Palavras-chave: hematozoário, doença infecciosa, carrapato.
Lista de figuras
Fig. 1. – Mucosa oral do Kiro após transfusão ..................................................................... 16
Sumário
INTRODUÇÃO .................................................................................................................. 09
1. ERLIQUIOSE CANINA ................................................................................................ 10
2. RELATO DE CASO ...................................................................................................... 15
2.1 Histórico e sinais clínicos ......................................................................................... 15
2.2 Diagnóstico ............................................................................................................... 15
2.3 Tratamento ............................................................................................................... 15
3. RESULTADO E DISCUSSÕES .................................................................................... 17
CONSIDERAÇÕES FINAIS ............................................................................................ 18
REFERÊNCIAS ................................................................................................................. 19
9
INTRODUÇÃO
Os carrapatos tem assumido uma grande importância tanto na saúde publica,
quanto animal, pois são responsáveis pela transmissão de várias doenças, entre elas a
erliquiose canina, causada pela Ehrlichia canis e transmitida pelo carrapato do gênero
Rhipicephalus sanguineus.
As espécies classificadas como pertencentes à família à Anaplasmataceae, gênero
Ehrlichia são: Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia ewingii, Ehrlichia muris
e Ehrlichia (cowdria) ruminantium (DUMLER et al., 2001). As espécies que afetam o
cão são: Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia ewingi, porém a mais comum
é a Ehrlichia canis.
Erliquiose canina se manifesta de diferentes formas, variando de acordo com a
fase em que o animal se encontra. O tratamento é realizado de acordo com os sinais
clínicos, junto de antibioticoterapia e o seu diagnostico é laboratorial.
No Brasil erliquiose canina é considerada endêmica, encontra-se disseminada em
vários estados principalmente em áreas urbanas (MACEDO et al., 2005), sendo relatada
pela primeira vez em, Belo Horizonte, por Costa et al., (1973).
A prevenção é fundamental devido à falta de vacinas protetoras contra erliquiose,
sendo assim necessário o controle dos carrapatos.
10
1. ERLIQUIOSE CANINA
É uma doença infecciosa comum em cães, causada pela bactéria do gênero
Ehrlichia que são organismos intracelulares obrigatórios com tropismo por células
hematopoiéticas (SKOTARCZAK, 2003).
A erliquiose é uma hemoparasitose capaz de atingir cães, gatos, equinos,
ruminantes e humanos. (McQUISTON et al., 1999). Em 1996, na Venezuela, foi
identificada uma nova amostra ou subespécie de Ehrlichia canis em humanos com
infecção persistente, porém assintomática (PEREZ et al., 1996); entretanto, neste
mesmo país, foram descritos três casos humanos sintomático por Ehrlichia canis
(PEREZ et al., 2005), sendo que cerca de 5% a 10% dos paciente humanos podem
ocorrer casos fatais (DUMLER et al., 1995).
Todas as evidências sugerem que a erliquiose humana não é transmitida
diretamente pelos cães, mas por um vetor (MAEDA, 1987).
Segundo estudos epidemiológicos realizados nos Estados Unidos e na Europa,
presume-se que a maioria dos nossos cães sejam acometido pela Erliquiose canina
(DAWSON et al., 1996)
Já DAGNONE et al., (2003); MACHADO et al., (2004); LABRUNA et al.,
(2007) relatam que aproximadamente 20% dos cães atendidos em hospitais e clinicas
veterinárias dos estados das regiões nordeste, sudeste, sul e centro-oeste, determinando
um importante papel zoonótico da erliquiose canina (PEREZ et al., 2005).
Existem várias espécies de Ehrlichia como Ehrlichia equi, Ehrlichia risticii,
Ehrlichia platys, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia muris, Ehrlichia (cowdria)
ruminantium, Ehrlichia ewingii e Ehrlichia canis (DUMLER et al., 2001). No entanto,
apenas a infecção por Ehrlichia canis possui importância epidemiológica, por levar a
um quadro clínico mais severo (WANER et al., 1995).
O vetor e reservatório da Ehrlichia canis é o Rhipicephalus sanguineus,
conhecido como carrapato marrom. Embora existam outras duas espécies de carrapatos
com potencial de infecção o Amblyomma americana e Otobius maggnini o
Rhipicephalus sanguineus ainda é o de maior importância (RIKIHISA et al., 1991).
A contaminação do carrapato ocorre através da inoculação do sangue de um cão
contaminado e poderá permanecer infectado por um período de aproximadamente um
11
ano, visto que a infecção poderá acontecer em qualquer estado do ciclo (WOODY;
HOSKINS, 1991).
A infecção canina provavelmente ocorre quando as secreções salivares do
carrapato entram em contato com a corrente sanguínea do cão (BREITSCHWERDT,
2004). No momento da transmissão da Erliquiose, o carrapato poderá transmitir outros
agentes tais como: Babesia, Hepatozoon e Hemobartonella canis (KLAG et al., 1991).
A transmissão também pode ocorrer por meio de transfusão sanguínea de um cão
infectado para outro susceptível (LÓPEZ et al., 1999).
Segundo SOUSA et al. (2010), o estudo realizado na avaliação clínica e molecular
de cães com erliquiose permitiu concluir que não há indícios de predisposição etária,
sexual ou racial.
Os sinais clínicos incluem depressão, letargia, anorexia, pirexia,
linfoadenomegalia, esplenomegalia e perda de peso. Os cães podem apresentar
tendência a sangramentos, principalmente petéquias e equimoses na pele e nas mucosas
e epistaxe ocasional. Os sinais oculares não são incomuns e incluem uveíte anterior e
opacidade corneana (WANER et al., 2000).
Através de estudos baseados nos sinais clínicos e patológicos, foi possível
distinguir três fases da doença, a aguda, a subclínica e a crônica (CASTRO et al., 2004).
A fase aguda que começa de uma a três semanas após a picada de um carrapato,
pode haver depressão, anorexia, perda de peso, febre, dispneia, corrimento óculo-nasal,
edema de membros ou de escroto, linfadenopatia generalizada e esplenomegalia
(SKOTARCZACK, 2003).
Esta é a principal fase onde se consegue identificar mórulas do parasito em
leucócitos através de esfregaços sanguíneos (FELDMAN et al., 2000).
No hemograma também é vista leucopenia progredindo para leucocitose
(GREGORY et al., 1990). A anemia é geralmente, normocítica normocrômica e
regenerativa, devido à perda de sangue. (MENDONÇA et al., 2005).
Os exames bioquímicos mostram hiperbilirrubinemia principalmente por
betaglobulinemia, assim como um aumento das enzimas TGP, fosfatase alcalina e das
bilirrubinas, indicando comprometimento hepático (ANDEREG; PASSOS, 1999).
Os sinais clínicos desaparecem na maioria dos casos sem tratamento dentro de
uma a quatro semanas, porém o hospedeiro permanece com a infecção subclínica.
Acredita-se que cães imunocompetentes eliminam a infecção durante esta fase, que
12
podem durar meses ou anos (ANDEREG; PASSOS, 1999).
A fase subaguda geralmente é assintomática, ocorre de seis a nove semanas,
podendo encontrar algumas complicações como: depressão, hemorragias, edema de
membros, perda de apetite e palidez de mucosas (WOODY; HOSKINS, 1991). Esta fase
é caracterizada pela persistência variável de trombocitopenia e anemia
(BREITSCHWERDT, 2004).
Devido à ineficiência do sistema imune do animal ao final da fase subclínica
instala-se a fase crônica (ANDEREG; PASSOS, 1999). Sendo assim, a fase crônica
assume a característica de uma doença autoimune, os sinais clínicos são semelhantes à
fase subclínica, mas com maior intensidade, apresenta pancitopenia, glomerulonefrite,
hemorragias e aumento da suscetibilidade às infecções secundárias, pois nesta fase o
animal encontra-se mais debilitado e com comprometimento imunológico (COUTO,
1998).
A principal característica dessa fase é a hipoplasia de medula óssea(ANDEREG;
PASSOS, 1999), resultando na diminuição de eritropoese, mielopoese e trombopoese,
que pode ser evidenciada no hemograma por anemia não regenerativa, leucopenia e
trombocitopenia (MYLONAKIS et al., 2004). Nesta fase, dificilmente encontra-se
inclusões de mórulas de Ehrlichia canis nos leucócitos (MACHADO, 2004).
O diagnóstico pode ser feito através da pesquisa de parasita ou de anticorpos
contra erliquia na circulação, pesquisa de parasitos em esfregaço sanguíneo das
extremidades, PCR, Western blotting e imunofluorescência indireta, permitindo o
diagnóstico preciso da erliquiose (DAVOUST, 1993).
A técnica de PCR permite um diagnóstico rápido e com sensibilidade a outras
técnicas (IQBAL et al., 1994; WEN et al., 1997).
O Western blotting tem sido utilizado no diagnóstico de erliquiose e na
determinação da diversidade antigênica entre cepas de Ehrlichia canis, é também
utilizado na confirmação do resultado da imunofluorescência, não é muito utilizado por
causa dos custos adicionais (SUKASAWAT et al., 2000).
O teste de imunofluorescência indireta foi desenvolvido para a detecção de
anticorpos séricos (RISTIC et al., 1972). Sendo que sua maior desvantagem são as
reações inespecíficas originadas por antígenos comuns a outros agentes do mesmo
grupo de erliquias (RIKIHISA et al., 1991; DUMLER et al., 1995; WANER et al.,
2000).
13
Segundo AGUIAR et al., 2007 o estudo realizado para o diagnóstico sorológico
de erliquiose canina com antígeno brasileiro de Ehrlichia canis, teve como objetivo
mostrar que o uso do teste sorológico como auxiliar no diagnóstico da erliquiose
canina, é de grande relevância desde que aliados ao histórico e ao exame clínico do cão.
Segundo outro estudo com Borin et al. (2009), em um estudo realizado sobre
aspectos epidemiológicos, clínicos e hematológicos de 251 cães portadores de mórula
de Ehrlichia spp naturalmente infectados, sugere-se a confecção de esfregaços de
sangue periférico como rotina, para diagnostico precoce e por se tratar de um exame
rápido e de baixo custo, além de ser preciso quando positivo.
Em áreas endêmicas a anemia e a trombocitopenia no hemograma é um grande
indício de Erliquiose, mas não confirma a doença, outros indicativos encontrados em
exames não específicos são a hipoalbuminemia e hiperglobulinemia (DAVOUST, 1993).
O diagnóstico presuntivo pode ser feito baseado no conjunto de sinais clínicos,
alterações hematológicas e bioquímicas séricas indicativas de erliquiose (DAGDONE et
al., 2001; GRENNE, 2005).
Após a confirmação da doença o tratamento deve-se ser instituído conforme a fase
e sinais clínicos.
O antibiótico mais utilizado é a doxiciclina 10mg/kg/dia (HOSKINS, 1991). Deve
ser administrada de duas a três horas antes ou após a alimentação para que não ocorram
alterações de absorção, o tempo de tratamento pode durar de três a quatro semanas nos
casos agudos e até oito semanas nos casos crônicos (WOODY; HOSKINS, 1991).
Além da doxiciclina existem outros fármacos que podem ser utilizados para o
tratamento da erliquiose, entre eles estão: a oxitetraciclina, o clorafenicol, a tetraciclina
e o imidocarb (WOODY; HOSKINS, 1991).
Para filhotes com menos de seis meses é indicado o clorafenicol na dose de
20mg/kg/8h, via oral por 14 dias, ele evita a descoloração dos dentes em erupção
causada pelas tetraciclinas. Deve-se alertar os proprietários sobre os riscos à saúde, pois
o clorafenicol interfere diretamente na síntese da medula óssea, devendo ser evitado em
cães com trombocitopenia, pancitopenia ou anemia (BARR, 2000).
Segundo Ribeiro et al. (2001), existem alguns estudos sobre o uso da
enrofloxacina onde foi considerada eficaz no tratamento de alguns cães com erliquiose
aguda na dose de 5mg/kg/dia por 15 dias, mas em alguns cães que apresentavam fase
aguda e crônica obtiveram melhora temporária, ocorrendo anemia severa e não
14
responsiva evoluindo a óbito, sendo assim a enrofloxacina ainda não é um tratamento
muito eficaz contra erliquiose.
Outra alternativa é o dipropionato de imidocarb, na dose de 5mg/kg, repetido
após 14 dias, é efetivo no tratamento de erliquiose graves, crônicas ou refratárias, sendo
que ela também é eficaz contra babesiose, além de não interferir na resposta terapêutica
quando utilizada em associação a doxiciclina.(GREENE, 1998; BARR, 2000).
Corticosteróides também são indicados na preservação da integridade vascular ou
da função plaquetária, principalmente na fase crônica e grave da erliquiose canina
(SOUZA et al., 2004).
Os animais com desidratação e insuficiência renal devem ser indicados a
fluidoterapia, os animais com anemia severa pode ser indicado à transfusão sanguínea
(COHN, 2003).
A profilaxia está diretamente ligada com o controle da infestação dos carrapatos
nos cães. Este controle deve ser feito no animal com carrapaticidas que contenham
propoxur, carbaril, diclorvós, clorfenvilós, entre outros (BARR, 2003).
No ambiente o controle deve ser feito com produtos a base de piretróides quando
confinados (LABRUNA; PEREIRA, 2001).
Atualmente não há vacinas disponíveis no mercado (BREITSCHWERDT, 2004).
Sendo assim, em áreas endêmicas existe a indicação do uso profilático de antibiótico de
reposição na estação de carrapatos. A indicação é tetraciclina na dose de 6,6mg/kg, VO,
SID ou oxitetraciclina na dose de 200mg, por via intramuscular duas vezes por semana
(COHN, 2003; BREITSCHWERDT, 2004).
Segundo BREITSCHWERDT (2004), o prognóstico para erliquiose em geral é
bom. Uma melhora clínica espetacular comumente ocorre dentro do período de 24 a 48
horas após o início da fase aguda ou crônica da doença.
Quando o hemograma apresenta pancitopenia isso implicada como um indicador
de mau prognóstico (HARRUS et al., 1997), os cães cronicamente infectados, nos quais
esta alteração hematológica é mais frequente, geralmente não respondem bem a terapia
específica para o microrganismo, resultado em óbito (MYLONAKIS et al., 2004).
O prognóstico depende da precocidade do tratamento, quanto mais cedo se inicia
o tratamento melhor é a resposta (WOODY; HOSKINS, 1991), pois cães em fase
crônica raramente se curam (WANER et al., 1997).
15
2. RELATO DE CASO
2.1 Histórico e sinais clínicos:
Paciente Kiro, canino, Akita, seis meses de idade, macho, peso 6 kg, chegou a
clínica veterinária Quatro Patas Cajati-SP para atendimento clínico, em janeiro de
2013.
A proprietária relatou que o animal apresentava fezes hemorrágicas há vários
dias, diminuição do apetite, estava mais quieto, e percebeu que haviam surgido manchas
roxas no abdômen.
Ao exame clínico foi observada presença de ectoparasitas (pulgas e carrapatos),
mucosas hipocoradas, pirexia de 40ºC, encontrava-se anorético, apresentava taquipnéia,
estava desidratado ++, havia equimose na região abdominal e estava com
linfadenomegalia.
2.2Diagnóstico:
O diagnóstico presuntivo foi feito através do hemograma que apresentou o
seguinte resultado:
Eritrograma: Hemácias 1,4 milhões/mm³; hemoglobina 3,8 g/dl; hematócrito 13%;
VGM: 94/fl; HGM 27 /pg; CHCM 5%.
Leucograma: Leucócitos 27.300/mm³; Linfócitos: 8190/ mm³; Monócitos: 546/mm³;
Bastonetes 819/ mm³; Segmentados 16.653 / mm³.
Após o resultado do hemograma a suspeita de erliquiose foi ainda mais
relevante, sendo assim solicitado o exame sorológico para erliquiose canina, no
laboratório Pet Imagem, Curitiba, PR, seu resultado foi positivo para Ehrlichia canis.
2.3Tratamento:
O tratamento indicado foi o doxiciclina (10mg/kg/dia) por 28 dias, prednisona
(1mg/kg/dia) por 15 dias e imidocarb (5mg/kg) duas aplicações com intervalos de 14
dias.
16
Foi realizada transfusão sanguínea para normalizar o quadro de anemia, após
cinco dias foi realizado um novo hemograma onde obteve uma melhora, com os
seguintes resultados:
Eritrograma: Hemácias 3,4 milhões/mm³; hemoglobina 7,87g/dl; hematócrito 23%;
VGM: 66/fl; HGM 23 /pg; CHCM 16%.
Leucograma: Leucócitos 22.700/mm³; Linfócitos: 6356/ mm³; Monócitos: 681/mm³;
Bastonetes 0/ mm³; Segmentados 15.436 / mm³.
O proprietário relatou que o animal voltou a se alimentar bem e estava mais
animado.
Após dois meses foi realizado uma nova avaliação, o animal não apresentava
mais nenhum sinal clínico, e o hemograma apresentou os seguintes resultados:
Eritrograma: Hemácias 6,8 milhões/mm3; hemoglobina 15,3/dl; hematócrito 48%;
VGM: 70/fl; HGM 22/pg; CHCM 32%.
Leucograma: Leucócitos 11.800/mm³; Linfócitos: 5782/ mm³; Monócitos:472/mm³;
Bastonetes 0/ mm³; Segmentados4130 / mm³.
O quadro anêmico já havia sido revertido.
Figura 01: Mucosa oral do Kiro após transfusão
17
4. RESULTADOS E DISCUSSÕES
O surgimento da doença está relacionado com o histórico prolongado da
presença de carrapato no animal. Após o início do tratamento o paciente teve uma
melhora significativa, principalmente depois da transfusão sanguínea, o antibiótico
instituído foi a doxiciclina por ser um medicamento de fácil aplicação e baixa
toxicidade.
O paciente teve o diagnóstico positivo para erliquiose canina através do exame
sorológico realizado pelo laboratório Pet Imagem, confirmando a suspeita através do
histórico clínico e hemograma. Sendo assim, em locais endêmicos com dificuldade para
exames específicos o hemograma e o histórico do animal podem sugerir o diagnóstico
de erliquiose canina, mas não confirma a doença.
18
CONSIDERAÇÕES FINAIS
O presente caso permitiu concluir que as alterações clínicas e hematológicas são
bastante inespecíficas, mas em regiões endêmicas onde a incidência de carrapatos é de
grande relevância os animais que apresentam quadro clínico de anemia e histórico de
carrapato, a suspeita primordial deve ser erliquiose.
O diagnóstico precoce é extremamente importante, pois quanto mais cedo
tratado melhor é a resposta terapêutica.
É de suma importância o controle dos vetores, pois são eles os responsáveis pela
transmissão da erliquiose.
Sendo assim, necessário que haja orientação do Médico Veterinário para os
proprietários de animais infectados minimizando os riscos à saúde humana e animal.
19
REFERÊNCIAS
AGUIAR, D. M. Diagnóstico sorológico de erliquiose canina com antígeno brasileiro
de Ehrlichia canis. Ciência Rural. Disponível em: http://www.scielo.br/scielo. Acesso
em: 10 de fevereiro de 2013.
ANDEREG. P.; PASSOS, L. Erliquiose canina: revisão. Revista Clinica Veterinária.
São Paulo, n.19, p.31-38, 1999.
BARR, S. C. Ehrlichiosis. Tilley, L. P. & Smith, F. W. k. The 5 Minute Veterinary.
Consult. Canine and Feline. 2 Baltimore: Lippincott Williams & Wilkins, p. 644 e
645, 2000.
BARR, S. C. Ehrlichiosis. Tilley, L. P. & Smith, F. W. k. The 5 Minute Veterinary.
Consult. Canine and Feline. 2 Baltimore: Lippincott Williams & Wilkins, p. 644 e
645, 2000.
BARR, S. C. Eliquiose. In: SMITH, F. W. K.; TILLEY, L. P. Consulta Veterinária em
5 minutos: espécie canina e felina. 2 ed. São Paulo: Manole, 2003.
BORIN, S.; Crivelenti, L. Z.; FERREIRA, F. A. Aspectos epidemiológicos, clínicos e
hematológicos de 251 cães portadores de mórula de Erlichia spp. Naturalmente
infectados. 2009. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia.
Disponível em: <http://portal.revistas.bvs.br/index>. Acesso em: 24 de fevereiro de
2013.
BREITHSCHWERDT, Edward B. Riquetsioses. In: ETTINGER, Stephen J;
FELDMAN, Edward C. Tratado de Medicina Interna Veterinária. 5edª. Rio de
Janeiro: Editora Guanabara Koogan S.A, p. 424-426, 2004.
COHN, L.A Ehrlichiosis and related infections. The Veterinary Clinics Small
Animal Practice, v.33, p.863-884, 2003.
CASTRO, M. B.; MACHADO, R. Z.; AQUINO, L. P. C. T.; ALESSI, A. C.; COSTA,
M. T. Experimental acute canine monocytic ehrlichiosis: clinic pathological and
immunopathological findings. Veterinary Parasitology, v. 119, p. 73-86, 2004.
COSTA, J. O. et al. Ehlichia canis infections in dog in Belo Horizonte – Brazil.
Arquivo da Escola Superior de Veterinária da Universidade de Minas Gerais. v. 25,
n. 2, p. 185-197, 1973.
COUTO, C.G. Doenças Rickettsiais In: BIRCHARD, SHERDING, Manual Saunders:
Clínica de pequenos animais. São Paulo: Roca: 139-42, 1998.
DAGDONE, A. S.; MORAIS, H. S. A.; VIDOTTO, M. C. Erliquiose nos animais e no
homem. Ciências Agrárias, v. 22, n. 2, p. 191-201, 2001.
20
DAGDONE, A. S.; MORAIS, H. S. A.; VIDOTTO, M. C.; JOJIMA, F. S.; VIDOTTO,
O. Ehrlichiosis in anemic, thombocytopenic, or tick-infestd dogs from a hospital
population in South Brazil. Veterinary Paratology, v. 117, n. 4, p. 285-290, 2003.
DAVOUST, B. Canine Ehrlichiosis. In: Point Vét., v. 25, p. 43-51, 1993.
DAWSON, J E. et al. Polymerase chain reaction evidence of Ehrlichia Chaffeensis, an
etiologic agent of human ehrlichiosis, in dogs from southeast Virginia. American
Jounal of Veterinary Research, v. 57, n. 8, p.1175-1179, 1996.
DUMLER, J. S. et al. Serologic Cross-Reactions among Ehrlichia equi, Ehrlichia
phagocytphia, and Human Granulocytic Ehrlichia. Journal of Clinical Microbiology,
v. 33, n. 5, p. 1098-1103, 1995.
DUMLER, J. S. et al. Reorganization of genera in the families Rickettsiaceae and
Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: unification of some species of Ehrlichia
whit Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions
of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and “HE agent´as
subjective synonyms of Ehrlichia phagacytophila. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., v. 51,
p. 2145-2165, 2001.
FELDMAN, B. F., ZINKI, J. G, JAIN, N.C. Schally’s Veterinary Hematology.
Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2000.
GREENE, C. E. Rickettsia diseases in dogs. Aiello, S. E. The Merck veterinary
manual. 8 ed. Philadelphia: National Publishing, p. 2305, 562-564, 1998.
GREENE, C. E. Infectious diseases of the dog and cat. Philadelphia W. B. Saunders, 3
ed, p. 1440, 2005.
GREGORY, C; FORRESTER, S. O. Ehrlichia canis, E. equi, E. risticci infections. In:
GREENE, C. E. Infectious diseases of the dog and cat. Philadelphia: W.B. Saunders:
404-14, 1990.
HARRUS, S.; KASS, P. H.; KLEMENT, E.; WANER, T. Canine monocytic
ehrlichiosis: a restropective study of 100 caese, and an epidemiological investigation of
prognostic indicators for the disease. The Veterinary Record, v. 141, n. 14, p. 360-363,
1997.
HOSKINS, J.D. Erhlichial diseases of dogs: diagnosis and treatment. Canine Practice,
v.16, n. 3, p. 13-21, 1991.
IQBAL, Z.; CHAICHANASIRIWITHAYA, W.; RIKIHISA, Y. Comparison of PCR
With other test for early diagnosis of canine ehrlichiosis. J. Clin. Microbiol., v.7, p.
1658-63, 1994.
KLAG, A.R.; DUNBAR, L.E; GIRARD, C.A. Concurrent erlichiosis and babesiosis in
a dog. Can. Vet Volume, v. 32, p. 305-307, 1991.
LABRUNA, Marcelo B; PEREIRA, Marcelo de Campos. Carrapatos em cães no Brasil.
21
Clínica veterinária. n. 30, p. 24-31, anual, Jan/Fev. 2001.
LABRUNA, M. B.; MCBRIDE, J. W.; CAMARGO, L. M.; AGUIAR, D. M.;
YABSLEY, M. J.; DAVIDSON, W. R.; STROMDAHL, E. Y.; WILLIAMSON, P. C.;
STICH, R. W.; LONG, S. W.; CAMARGO, E. P.; WALKER, D. H. A preliminary
investigation of Ehrlichia species in ticks, humans, dogs, and capybaras from Brazil.
Veterinary Parasitology, v. 143, n. 2, p. 189-195, 2007.
LÓPEZ, J.; CASTILLO, A.; MUNOZ, M. et al. Hallazgo de Erlichia canis en Chile,
informe preliminar. Arch. Med. Vet., v. 31, p. 211-214, 1999.
MACHADO, R.Z. Erliquiose canina. Revista brasileira de Parasitologia Veterinária,
v. 13, n. 1, p. 53-57, 2004.
MACEDO, A. B.; LEAL, E.R.V. Ehrlichiose canina: estudo retrospectivo e principais
achados hematológicos. Revista Nosso Clínico, n.45, p. 30-34, 2005.
MENDONÇA, C. S.; MUNDIM, A.V.; COSTA. A.S.; MORO. T.V. Erliquiose Canina:
Alterações hematológicas em cães domésticos naturalmente infectados. Bioscience
Journal. v. 21, n.1, p. 167-174, 2005.
MAEDA, K. et al. Human infection wih Ehrlichia canis, a leukocytic rickettsia. New
England Journal Medicine. v. 316, p.853-856,1987.
MYLONAKIS, M. E.; KOUTINAS, A. F.; BREITSCHWERDT, E. B.; HEGARTY, B.
C.; BILLINIS, C. D.; LEONTIDES, L. S.; KONTOS, V. S. Chronic Canine Ehrlichiosis
(Ehrlichia canis): A retrospective Study of 19 Natural Cases. Journal of the American
Animal Hospital Association, v. 40, n. 3, p. 174-184, 2004.
McQUISTON, J. H. et al. The human Ehrlichiosis in the United States. Disponível
em: < http://www.medscape.com/govmt/CDC/EID/199...n05/c0505.04mcqu/pnt-
c0505.04mcqu.html>. Acesso em: 11 de abril 2013.
PEREZ, M.; BODOR, M.; ZHANG, C.; RIKIHISA, Y. Ehrlicjia canis detection in
symptomatic humans in Venezuela. International Conference on Rickettsiae and
Rickettsial Diseases, v.4, p. 45, 2005.
PEREZ, M.; RIKIHISA, Y.; WEN, B. Ehrlichia canis-like agent isolated from a man in
Venezuela: antigenic and genetic characterization. Journal of Clinical Microbiology, v.
34, n. 9, p. 2133-2139, 1996.
RIBEIRO, B.C.C. et al. Avaliação do uso de enrofloxacina no tratamento da
Erliquiose canina aguda e crônica. 3º Prêmio de pesquisa clínica Schering-Plough
Veterinária 2001.
RIKIHISA, Y.; EWING, S.A.; FOX, J.C et al. Analyses of Ehrlichia canis and a canine
granulocytic Ehrlichia infection. J. Clin. Microbiol., v. 30, p. 143-148, 1991.
RISTIC, M. et al. Serological diagnosis of tropical canine pancytopenia by indirect
22
immunofluo-recente. Infection and Immunity, v.6, n.3, p. 226-231, 1972.
SKOTARCZACK, B. Canine Erlichiosis. Ann Agric Environ Med, n. 10, p. 137-141,
2003.
SOUSA, V. R. F. et al. Avaliação clínica e molecular de cães com erliquiose. 2010.
Ciência Rural. Disponível em: <http://www.scielo.br/pdf>. Acesso em: 20 de fevereiro
de 2013.
SOUZA, M. G.; HIGA, A. C.; GERARDI, D. G.; TINUCCI-COSTA, M.; MACHADO,
R. Tratamento da erliquiose canina de ocorrência natural com doxiciclina, precedida ou
não pelo diprionato de imidocarb. Revista de Ciências Agroveterinária, v. 3, p. 126-
130, 2004.
SUKASAWAT, J.: HEGARTY, B. C.; BREITSCHWERDT, E. B. Seroprevalence of
Ehrlichia canis, Ehrlichia equi, and Ehrlichia risticci in sick dogs from North Carolina
and Virginia. Journal of Veterinary Internal Medicine, v. 14, p.50-55, 2000.
WANER, T.; HARRUS, S. Canine Monocytic Ehrlichiosis. In: CAMICHAEL, L. E.
Recent Advances in Canine Infectious Diseases,2000. International Veterinary
Information Service. Disponível em: <http://www.ivis.org >. Acesso em : 20 de março
de 2013.
WANER, T.; HARRUS, S.; WEISS, D.J.; BARK, H.; KEYSARY, A. Demonstration of
serum antiplatelet antibodies in experimental acute canine ehrlichiosis. Veterinary
Immunology and Immunopathology, v.48, n.1/2, p. 177-82, 1995.
WANER, T. et al. Characterization of subclinical phase of canine ehrlichiosis in
experiment-tally infected beagle dogs. Veterinary Parasitology, v.69, p.307-317, 1997.
WEN, B. ET AL. Comparasion of nested PCR whith immunofluorescent-antibody assay
for detection of Ehrlichia canis infection in the dogs treated whit doxycycline. Journal
of Clinical Microbiology, v.35, n.7, p.1852-1855, 1997.
WOODY, B.J.; HOSKINS, J.D. Ehrlichial diseases of the dog. Veterinary Clinical
North America: Small animal practice, v.21, n.1, p. 45-98, 1991.
