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22 T T í i 2013
1
Ficha Técnica No. 22
Tortrícido anaranjado
Argyrotaenia franciscana Walsingham
Elaborada por:
SENASICA
Laboratorio Nacional de
Referencia Epidemiológica
Fitosanitaria
LANREF-CP
Fotografías: J.K. Clark y Washington State
University, Alan L. Knight, CABI 2012.
22 T T í i 2013
2
Servicio Nacional de Sanidad,
Inocuidad y Calidad Agroalimentaria
(SENASICA)
Calle Guillermo Pérez Valenzuela No.
127, Col. Del Carmen C.P. 04100,
Coyoacán, México, D.F.
Primera edición: Julio 2013 ISBN: 978-607-715-122-7
Nota del autor: La última actualización de este documento se
realizó en junio de 2014.
Tortrícido anaranjado
Argyrotaenia franciscana Walsingham
22 T T í i 2013
3
Contenido
IDENTIDAD ......................................................... 4
Nombre ................................................................ . 4
Sinonimia .............................................................. 4
Clasificación taxonómica ...................................... 4
Nombre común...................................................... 4
Código EPPO ........................................................ 4
Categoría reglamentaria ...................................... 4
Situación de la plaga en México ........................... 4
IMPORTANCIA ECONÓMICA
DE LA PLAGA ...................................................... 4
Impacto económico de la plaga............................. 5
Riesgo fitosanitario............................................... 5
DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA
DE LA PLAGA ...................................................... 6
HOSPEDANTES .................................................. 6
Distribución nacional de hospedantes ................. 7
ASPECTOS BIOLÓGICOS .................................. 7
Ciclo biológico ....................................................... 7
Descripción morfológica........................................ 9
Daños ................................................................... 11
ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS ..................... 12
Epidemiología de la plaga ................................... 12
Dispersión ........................................................... 15
Sobrevivencia...................................................... 15
Métodos de identificación ................................... 15
MEDIDAS FITOSANITARIAS .......................... 15
Esquema de Vigilancia
Epidemiológica Fitosanitaria ............................. 15
Alerta fitosanitaria ............................................. 16
Protección ........................................................... 16
BIBLIOGRAFÍA ................................................. 18
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IDENTIDAD
Nombre Argyrotaenia franciscana Walsingham.
Sinonimia Argyrotaenia citrana
A. insulana
A. purata
A. kearfotti
Cacoecia franciscana
Eulia citrana
E. franciscana
Tortrix citrana
Clasificación taxonómica
Dominio: Eucariota Reino: Metazoa Phylum: Artropoda Subphylum: Uniramia
Clase: Insecta
Orden: Lepidoptera
Familia: Tortricidae
Subfamilia: Tortricinae
Tribu: Archipini
Género: Argyrotaenia
Especie: Argyrotaenia
franciscana
Código EPPO:
ARGTCI.
Categoría reglamentaria Ausente; no hay registros de la plaga
(CIPF, 2006).
Situación de la plaga en
México
Con base en la NIMF. no 8 de la
Convención Internacional de
Protección Fitosanitaria, el tortrícido
anaranjado (Argyrotaenia franciscana)
se cataloga como ausente en México
(CIPF, 2006).
IMPORTANCIA ECONÓMICA
DE LA PLAGA
Argyrotaenia franciscana
anteriormente Argyrotaenia citrana, es
una plaga de importancia agrícola en
manzano, cítricos, vid, fresa, mora,
cerezo e inclusive en aguacate (Landry
et al., 1999; UC IPM, 2010). En
California, EE.UU., el tortrícido
anaranjado es una de las principales
plagas en manzano y vid (Zalom y
Pickel, 1988).
Nombre común
Español Tortrícido anaranjado.
Inglés Orange tortrix, apple
skinworm.
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Impacto económico de la plaga
Las larvas se alimentan de frutos en
desarrollo y maduros de cítricos,
manzano y vid, causando cicatrices y
galerías. También pueden alimentarse
de tallos y ramas (Gilligan et al., 2009).
No se tienen estudios acerca del
impacto económico ocasionado por esta
plaga, sin embargo se ha observado que
en infestaciones severas el rendimiento
se reduce hasta 40 %, y cuando la
fructificación es abundante, las
poblaciones de 50 a 100 larvas por árbol
son suficientes para ocasionar daños
severos (Basinger, 1938). Además, esta
plaga restringe la comercialización por la
condición cuarentenaria.
Riesgo fitosanitario
Para México A. franciscana
representa una seria amenaza,
principalmente para los cultivos de
manzano y vid. De acuerdo al SIAP,
2014, durante el ciclo agrícola 2012, la
superficie nacional correspondiente al
cultivo de manzano fue de 61,551.59
Ha, con una producción superior a las
375,044.90 T y un valor de producción
de 3,008 millones de pesos (Cuadro 1).
En la producción de vid, el SIAP,
(2014), reporta que en el año 2012, la
superficie establecida superó las 28,940
Ha, con una producción de 375,298.40 T
y un valor estimado de 7,093 millones de
pesos (Cuadro 2).
Cuadro 1. Principales estados productores
de manzana en México. Ciclo
agrícola 2012.
Estado
Superfici
e
sembrad
a (ha)
Valor de
producción
(miles de
pesos)
Chihuahua 26 666.00 1 913 082.03
Durango 10 889.75 376 848.41
Puebla 8 498.96 112 177.06
Coahuila 7 028.00 387 219.51
Nuevo León 1 958.60 41 496.00
Chiapas 1 241.50 35 995.85
Zacatecas 1 206.21 24 612.34
Hidalgo 1 002.77 29 764.38
Créditos: SIAP, 2014. Cuadro 2. Principales estados productores
de vid en México. Ciclo agrícola
2012.
Estado
Superficie
sembrada
(ha)
Valor de
producción
(miles de
pesos)
Sonora 19 970.00 6 518 350.42
Baja California 3 768.06
266 778.89
Zacatecas 3 590.25 200 335.74
Aguascalientes 835.00 41 573.98
Coahuila 305.00 28 980.60
Querétaro 212.00 21 130.30
Chihuahua 120.00 2 520.00
Créditos: SIAP, 2014.
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DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA
DE LA PLAGA
El tortrícido anaranjado se encuentra
presente en los estados de California,
Oregón y Washington, EE.UU.
(Figura 1) (Coates et al., 2009; CABI,
2012).
HOSPEDANTES
A. franciscana es una especie
altamente polífaga con más de 80
especies hospedantes (Cuadro 3). Las
especies de mayor importancia
económica son manzano, aguacate,
zarzamora, frambuesa, moras, vid,
toronja, limón y pino de Monterrey
(Gilligan et al., 2009).
Figura 1. Distribución del tortrícido anaranjado (A.
franciscana) en EE.UU. Créditos: CABI,
2013.
Cuadro 3. Hospedantes de importancia económica del tortrícido anaranjado.
Fuente: CABI, 2012.
Familia Nombre científíco Nombre común en español Nombre común en inglés
Ericaceae Vaccinium sp. Mora Blueberry
Lauraceae Persea americana Aguacate Avocado
Rutaceae Citrus x paradisi
Citrus lemon
Toronjo
Limón
Grapefruit
Lemon
Rosaceae Malus sp.
Prunus armeriaca
Rubus sp.
Manzano
Chabacano
Zarzamora y Frambuesa
Apple
Apricot
Blackberry and Raspberry
Vitaceae Vitis vinifera Vid Grape
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Distribución nacional
de hospedantes
Los cultivos hospedantes de A.
franciscana se encuentran distribuidos
en la mayoría de los estados de la
República Mexicana (SIAP, 2012)
(Cuadro 4 y Figura 2).
ASPECTOS BIOLÓGICOS Ciclo biológico
Los huevos son ovipositados sobre la
superficie de hojas, frutos y ramas en
masas de 200 huevos, el período de
incubación varía con la temperatura, en
condiciones de laboratorio dura de 8-15
días y en campo es de 29-44 días (Figura
3) (Lange, 1936). Los primeros ínstares
larvales enrollan las hojas y generan
una red de seda color blanco, las
larvas pasan por cinco ínstares en un
período de 20-30 días (Gilligan et al.,
2009).
Las larvas son solitarias y viven en
refugios que construyen con fibras de
las hojas y brotes nuevos, en ocasiones
se pueden encontrar en ramas y en
racimos florales. Se alimentan de hojas,
brotes, ovarios florales y frutos en
desarrollo. A finales del verano y
durante el otoño se alimentan de hojas
y racimos viejos o muertos (Basinger,
1938).
El estado de pupa se lleva a cabo
en un cocón de seda, la duración varía
con las estaciones, en invierno pueden
durar 3 semanas y en verano de 8-10
días. Se ha observado que la humedad
relativa influye durante el proceso de
formación de pupa (Basinger, 1938).
Cuadro 4. Distribución de hospedantes comerciales del tortrícido anaranjado (A. franciscana) en México.
Créditos: SIAP, 2014.
Cultivo
Principales estados productores
% de superficie
cultivada a nivel
nacional
Aguacate Michoacán, Jalisco, Nayarit, Estado de México, Morelos. 90.5 %
Frambuesa Jalisco, Michoacán, Baja California. 94.8 %
Manzana Chihuahua, Durango, Puebla, Coahuila, Nuevo León,
Zacatecas, Chiapas, Hidalgo.
95.0 %
Toronja Veracruz, Michoacán, Nuevo León, Tamaulipas, Puebla,
Sonora, Campeche.
92.4 %
Vid Sonora, Zacatecas, Baja California, Querétaro. 95.0 %
Zarzamora Michoacán. 95.4 %
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La especie es bivoltina o multivoltina dependiendo de la temperatura; en las zonas cálidas de California presentan dos generaciones
por año, y en zonas templadas pueden presentarse hasta cinco generaciones traslapadas (Gilligan et al., 2009).
Figura 2. Distribución de hospedantes del tortrícido anaranjado (A. franciscana) en México. Créditos: SINAVEF-
LaNGIF, 2011.
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Figura 3. Ciclo biológico del tortrícido anaranjado (A. franciscana). Créditos: A) University of California; B) J.K.
Clark; C) Donald H. Gudehus; D) Eric La Gasa; edición: Fco. Márquez; E) Dick Wilson. edición: Fco.
Márquez.
Descripción morfológica
Huevo
Los huevos son aplanados traslúcidos
de forma ovalada, miden 0.91 x 0.7
mm de diámetro, son ovipositados en
grupo de forma sobrepuesta (Figura 4)
(Gilligan et al., 2009).
Figura 4. Masa de huevos del tortrícido anaranjado
(A. franciscana) sobrepuestos. Créditos: J.
K. Clark.
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Larva
Las larvas recién emergidas miden
aproximadamente 1.5 mm de largo, y
cuando completan el desarrollo llegan
hasta los 16 mm. La cabeza y el escudo
protorácico son de color café claro y no se
diferencia uno de otro; el color del cuerpo
varía de acuerdo con el hospedante del
que se alimente, pero por lo general es de
color pálido a verde oscuro (Figura 5)
(Basinger, 1938; CABI, 2012).
Figura 5. Larvas del tortrícido anaranjado (A.
franciscana) del último ínstar. Créditos:
J.K. Clark y Washington State University.
Pupa
La pupa mide 8 mm de largo, es de
color café claro a café oscuro,
generalmente se encuentran dentro de
un capullo por debajo de las hojas o en el
suelo (Figura 6) (Basinger, 1938).
Figura 6. Pupa del tortrícido anaranjado (A.
franciscana). Créditos: Alan L. Knight.
Adulto
La envergadura alar de los adultos
mide de 9.9 mm a 10 mm de largo, las
alas anteriores son de color blanco-
naranja con una banda transversal de
color oscuro y una mancha en la vena
costal, las alas posteriores son color
blanco a gris.
La hembra es de color café
amarillento, con una mancha en forma
de “V” en la mitad de las alas cuando
está en reposo. El macho se distingue
por la presencia de manchas oscuras
(Figura 7) (Basinger, 1938; Bentley et
al., 2009; Gilligan et al., 2009).
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A B
Figura 7. Ejemplares de adulto del tortrícido anaranjado (A. franciscana). A) Hembra; B) Macho. Créditos:
USDA-APHIS-Colorado State University
Daños
Los daños causados por A.
franciscana varían de acuerdo al
hospedante. En cítricos y manzano las
larvas se alimentan de frutos en
desarrollo que causan cicatrices y
galerías; y en vid, las larvas se
alimentan de los tallos y frutos. Las
heridas ocasionadas durante la
alimentación favorecen la entrada de
hongos saprófitos y otros patógenos
causantes de pudriciones (CABI, 2012).
Los daños más importantes son
causados por las larvas de los últimos
ínstares, al inicio son imperceptibles,
posteriormente se observan frutos
perforados que caen prematuramente o
permanecen momificados en las ramas
(Basinger, 1938).
Otro daño ocasionado por las
larvas es la generación de una red de
telarañas blanquecinas en las
inflorescencias (Figura 8 y 9) (Bentley
et al., 2009).
Figura 8. Daños ocasionados por larvas del tortrícido anaranjado (A. franciscana) en racimos de vid. Créditos:
Jack Kelly Clark.
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Figura 9. Enrollamiento de brotes ocasionados por larvas del tortrícido anaranjado (A. franciscana).
Créditos: CABI 2012.
ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS
Epidemiología de la plaga
El rango de temperatura para el
desarrollo de la larva varía de 7.2-29 °C,
mientras que los límites de temperatura
donde mueren sin alimentarse son de 1
y 35 °C (Basinger, 1938).
La duración de los estadíos larvales
depende de la temperatura y humedad.
Bajo condiciones de laboratorio
alcanzan el estado de pupa entre 20.9
y 25.7 días a 23.8 y 29 °C,
respectivamente, con 70 % de humedad
relativa (HR); mientras que a 23.8 °C y
35 % de HR requieren de 29 días para
alcanzar el estado de pupa. Las
temperaturas altas y baja humedad
relativa reducen la actividad de las
larvas en condiciones de campo
(Basinger, 1938).
Para completar el ciclo de vida, el
insecto requiere de 503 unidades calor
con una temperatura base de 5 °C
(Knight y Croft, 1987).
En la mayor parte del territorio
mexicano existen regiones con
condiciones favorables para el
desarrollo y establecimiento de A.
franciscana, con excepción de algunas
zonas especificas del norte y noroeste
(Figura 10). Las regiones con
condiciones óptimas de temperatura se
observan en la zona centro y costera de
Guerrero, Oaxaca y Chiapas (Figura
11).
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Figura 10. Zonas con condiciones favorables para el desarrollo del tortrícido anaranjado (A. franciscana) en
México. Créditos: SINAVEF-LaNGIF, 2011.
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Figura 11. Áreas con condiciones óptimas de temperatura para el desarrollo del tortrícido anaranjado
(A. franciscana) en México. Créditos: SINAVEF-LaNGIF, 2011.
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Dispersión
De forma natural el insecto se
dispersa mediante el vuelo de los
adultos. Larvas pueden ser
transportadas en frutos cosechados y
empacados; también en el equipo
utilizado para realizar la cosecha de
frutos (CABI, 2012).
Sobrevivencia
El insecto puede hibernar como larva
o pupa en hojas muertas, frutos
momificados, sobre ramas o en plantas
herbáceas cercanas a los hospedantes
preferenciales (Knight y Croft, 1987).
Métodos de identificación
A. franciscana puede ser confundida
con otros tortrícidos. Se ha observado
que adultos de Choristoneura rosaceana
pueden ser atraídos en trampas con
feromona sexual de A. franciscana; sin
embargo, estas dos especies se
diferencian con facilidad, ya que la
envergadura de los machos en C.
rosaceana es aproximadamente un 50 %
más grande que A. franciscana y
presenta dos bandas oblicuas de color
marrón en las alas anteriores. Del
mismo modo, las larvas de C. rosaceana
son distintivas de A. franciscana por
tener mayor tamaño y la presencia de
una placa de color marrón o negro en la
cabeza (Figura 12). El tortrícido
Pandemis pyrusana es común que se
presente en los huertos de manzanos en
la costa de California (Zalom y Pickel,
1988; Swezey et al., 1998). P. pyrusana
es similar en aspecto a C. rosaceana,
pero no son atraídos por la feromona
sexual de A. franciscana (Swezey et al.,
1998).
MEDIDAS FITOSANITARIAS
Esquema de Vigilancia
Epidemiológica Fitosanitaria
Con el fin de detectar de manera
oportuna al tortrícido anaranjado, el
Programa de Vigilancia Epidemiológica
Fitosanitaria (PVEF) opera en los
estados de Baja California, Coahuila,
Chihuahua, Distrito Federal, Durango,
Sonora y Tlaxcala a través de acciones
de exploración y rutas de trampeo, que
deberán establecerse estratégicamente
con base en la distribución y
densidad de hospedantes, las condiciones
climáticas favorables, la biología de la
plaga, las etapas fenológicas del cultivo,
rutas de comercialización y vías de
comunicación (DGSV-CNRF, 2014).
La descripción de las estrategias para la
Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria
se pueden consultar en el link
http://www.senasica.gob.mx/?id=5956
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Alerta fitosanitaria
En adición a las acciones del
Programa de Vigilancia Epidemiológica
Fitosanitaria para la detección
oportuna de brotes, la DGSV ha
puesto a disposición la comunicación
pública mediante el teléfono (01)-800-
98-79-879 y el correo electrónico
Protección Control cultural
La eliminación de residuos después
de la cosecha y malezas, son prácticas
efectivas, ya que durante el invierno las
larvas y adultos suelen encontrarse en
malezas adyacentes (Bentley et al.,
2009).
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Control biológico
En viñedos de la zonas costeras de
California, el principal enemigo de
larvas de A. franciscana es el
parasitoide Exochus nigripalpus sub.
obscurus (Hym: Ichneumonidae). Estos
parasitoides emergen poco después de
las pupas de A. franciscana (Bentley et
al., 2009).
Meterorus argyrotaenia (Hym:
Braconidae) se ha reportado que ejerce
un control de 100 % sobre A.
franciscana en huertos de frambuesa
(Breakey, 1951; CABI, 2012).
Otros parasitoides registrados son
Zenillia caesar (Dip: Tachinidae),
Trichogramma minutum (Hym:
Trichogrammatidae), Brachymeria sp.
(Hym: Chalcididae), Microbracon
gelechiae (Hym: Braconidae),
Mesochorus sp. (Hym: Ichneumonidae),
Habrocytus sp. y Dibrachys cavus (Hym:
Pteromalidae) (Basinger, 1938) e
Hyssopus pallidus (Hym: Eulophidae)
(Zaviezo y Mills, 1999; CABI, 2012).
Control químico
Bentley et al., (2009), en la guía del
Programa de Manejo Integrado del
tortrícido anaranjado en California E. U.
recomiendan la aplicación de los
siguientes productos insecticidas
durante la floración: Metoxifenozoide,
Spinosad, Cryolite, y la bacteria
Bacillus thuringiensis. Estos mismos
autores señalan que los insecticidas
Metoxifenozoide, Spinosad, Metomilo,
Carbaril, pueden ser aplicados durante
la etapa de desarrollo vegetativo. Sin
embargo, para la mayoría de tortrícidos
el momento oportuno de aplicación se
basa en la acumulación de Grados Días
de Desarrollo (GDD); para esto se deben
empezar a contar los GDD acumulados a
partir de la primera detección de un
adulto en trampas de feromona. Se
recomienda que el primer producto que
se aplique sea un regulador del
crecimiento, el cual actúa sobre las
masas de huevos y larvas de primer
ínstar.
Para el control de larvas de 2do y 3er
ínstar se recomienda la aplicación de un
insecticida de buena penetración y con
acción fumigante, ya que estos ínstares
se comportan como enrolladores de hoja.
En México solo los productos Bacillus
thuringiensis y Spinosad están
autorizados para su uso en vid, por lo
que de requerirse el uso de algún otro
producto de los arriba mencionados se
deberá solicitar un permiso a
COFEPRIS para su utilización.
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BIBLIOGRAFÍA
Basinger, AJ. 1938. The Orange
Tortrix, Argyrotaenia citrana.
(Abstract) Hilgardia 11(11): 635-
669.
Bentley, JW, LG Varela, FG Zalom, RJ
Smith, AH Purcell, PA Phillips,
DR Haviland, KM Danee, MC
Battany. 2009. Grape Orange
tortrix. UC Pest Management
Guidelines. Consultado en línea el
17 de agosto de 2010 en:
http://www.ipm.ucdavis.edu/PM
G/ r302300411.html.
Breakey, EP. 1951. Natural control of
the orange tortrix in western
Washington. Journal Economic
Entomology, 44:24.
CABI. 2012. Crop Protection
Compendium. Data Sheet for:
Argyrotaenia citrana.
Wallingford, U. K. Consultado en
línea en marzo de 2012 en:
http://www.cabi.org/cpc.
CIPF. 2006. Normas Internacionales
para Medidas Fitosanitarias.
Determinación de la situación de
una plaga en un área. Publicación
no 8. Convención Internacional de
Protección Fitosanitaria. FAO.
Roma, Italia. p. 85-93.
Coates, WW, RA Van Steenwyk, WJ
Bentley, KR Day, KA Kelley, JL
Caprile. 2009. Apricot Orange
Tortrix. UC Pest Management
Guidelines. Consultado en línea el
12 de agosto de 2010 en:
http://www.ipm.ucdavis.edu/PMG/
r5300411.html.
DGSV-CNRF. 2014. Estrategias
operativas para las plagas bajo
vigilancia epidemiológica
fitosanitaria 2014. Dirección
General de Sanidad Vegetal-
Centro Nacional de Referencia
Fitosanitaria. SENASICA. México,
Distrito Federal.
Gilligan, TM and ME Epstein. 2009.
LBAM ID, tools for diagnosing light
brown apple moth and related
western U. S. leafrollers
(Tortricidae: Archipini). Colorado
State Univeristy, California
Department of Food and
Agriculture, and Center for Plant
Health Science and Technology,
USDA, APHIS, PPQ. Consultado
en línea el 19 de agosto de 2010 en:
ttp://keys.lucidcentral.org/
keys/v3/LBAM/Argyrotaenia_franc
iscana.htm.
Kido H, Flaherty DL, Kennett CE,
Mc- Calley NF, Bosch DF. 1981.
Seeking the reasons for
differences in orange tortrix
infestations. California
Agriculture, 35(7/8):27-28.
Knight AL and Croft BA. 1987.
Immature developmental
requirements and factors
22 T T í i
19 2013
influencing spring emergence of
Argyrotpnia citrana (Lepidoptera:
Tortricidae) on caneberries, Rubus
spp., in the Pacific Northwest.
Journal of Economic Entomology,
80(4):799-805.
Knight, AL, La Lone, R, Fisher, GC,
Coop, LB. 1988. Managing
leafrollers on caneberries in
Oregon. Corvallis, Oregon, USA:
Oregon State University,
Extension Circular 1263.
La Lone RS. 1980. Pest management of
leafrollers in caneberries grown in
Oregon. Acta Horticulturae,
112:135-141.
Lange WH. 1936. The biology of the
orange tortrix Eulia
(Argyrotaenia) citrana Fernald.
California State Department
Agriculture Monthly Bulletin,
25:283-285.
Landry B, Powell JA, Sperling FAH.
1999. Systematics of the
Argyrotaenia franciscana
(Lepidoptera: Tortricidae) species
group: evidence from
mitochondrial DNA. Annals of the
Entomological Society of
America, 92(1):40-46; 32 ref.
SIAP. 2014. Anuarios Estadísticos de la
Producción Agrícola en México.
Secretaría de Agricultura,
Ganadería, Desarrollo Rural,
Pesca y Alimentación. Consultado
en línea el 30 de junio de 2014:
http://www.siap.gob.mx
SCOPE. 2014. Sistema Coordinado
para la Vigilancia de Plagas
Reglamentadas y su
Epidemiología. Consultada en
línea el 17 de junio 2014:
http://www.scopemx.uaslp.mx/
SINAVEF-LaNGIF. 2011. Sistema
Nacional de Vigilancia
Epidemiológica Fitosanitaria-
Laboratorio Nacional de
Geoprocesamiento de Información
Fitosanitaria Coordinación para la
Innovación y Aplicación de la
Ciencia y la Tecnología
Universidad Autónoma de San
Luis Potosí. Consultado en línea:
http://langif.uaslp.mx/
Swezey SL, Werner MR, Buchanan M,
Allison J. 1998. Comparison of
conventional and organic apple
production systems during three
years of conversion to organic
management in coastal California.
American Journal of Alternative
Agriculture, 13(4):162-180; 70 ref.
UC IPM. 2010. Orange Tortrix
(Argyrotaenia citrana). UC Pest
Management Guidelines.
Consultado en línea en junio de
2013 en: http://www.ipm.
ucdavis.edu/PMG/r8301011.html
Walker KR, Welter SC. 1999. Effects of
lure dose on efficacy of pheromone
22 T T í i
20 2013
traps for monitoring Argyrotaenia
citrana (Lepidoptera: Tortricidae)
in California apple orchards.
Journal of Economic Entomology,
92(3):574-582; 30 ref.
Zalom F and Pickel C. 1988. Spatial
and seasonal distribution of
damage to apples by Argyrotpnia
citrana (Fernald) and Pandemis
pyrusana Kearfott. Journal of
Agricultural Entomology, 5(1):11-
15
Zaviezo, T and Mills, N. 1999.
Aspects of the biology of Hyssopus
pallidus (Hymenoptera:
Eulophidae), a parasitoid of the
codling moth (Lepidoptera:
Olethreutidae). Environmental
Entomology, 28(4):748-754; 39 ref.
22 T T í i
21 2013
Forma recomendada de citar:
SENASICA. 2013. Tortrícido
anaranjado (Argyrotaenia franciscana
Walsingham). Dirección General de
Sanidad Vegetal - Sistema Nacional de
Vigilancia Epidemiológica
Fitosanitaria. México, D.F. Ficha
Técnica No. 22. 20 p.
Coordinación:
M.C. José Abel López Buenfil
Director del CNRF
Ing. Rigoberto González Gómez
Coordinador Operativo del SINAVEF
Dr. Gustavo Mora Aguilera
Coordinador de LANREF
Con la colaboración: Laboratorio Nacional de Referencia
Epidemiológica Fitosanitaria
(LANREF)
Colegio de Postgraduados (CP)
M.C. Fabiola Esquivel Chávez
Ing. Francisco Javier Márquez Pérez
M.C. Jorge Luis Flores Sánchez
M.C. Santiago Domínguez Monge
Ing. Gerardo Acevedo Sánchez
CNRF – Sistema Nacional de
Vigilancia Epidemiológica
Fitosanitaria (SINAVEF)
Ing. Liliana Ramírez Bautista
M.C. Jesús Chavero Jaramillo
Dr. Julio César Velázquez González
Dr. Moisés Roberto Vallejo Pérez
Corrección de estilo:
Dr. Edmundo Martínez Ríos
Departamento de Idiomas CP
Rogelio Dromundo Salazar
Departamento de Difusión CM - CP
Diseño editorial:
D.C.V. Laura Xochitl Arriaga Betanzos
Departamento de Difusión CM - CP