Juliane Cristina Trevisan Sanches Estudo ultraestrutural e ...€¦ · skeletal and non-skeletal...

21
Juliane Cristina Trevisan Sanches Estudo ultraestrutural e imunohistoquímico do estroma uterino durante a gestação de camundongos deficientes em decorim. Dissertação apresentada ao Programa de Pós-Graduação em Biologia Celular e Tecidual do Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo, para obtenção do Título de Mestre em Ciências. Área de concentração: Biologia Celular e Tecidual Orientador: Prof. Dr. Sérgio Ferreira de Oliveira São Paulo 2009

Transcript of Juliane Cristina Trevisan Sanches Estudo ultraestrutural e ...€¦ · skeletal and non-skeletal...

Juliane Cristina Trevisan Sanches

Estudo ultraestrutural e imunohistoquímico do estroma uterino durante a gestação de camundongos deficientes

em decorim.

Dissertação apresentada ao Programa de Pós-Graduação em Biologia Celular e Tecidual do Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo, para obtenção do Título de Mestre em Ciências. Área de concentração: Biologia Celular e

Tecidual

Orientador: Prof. Dr. Sérgio Ferreira de

Oliveira

São Paulo 2009

RESUMO

Sanches, J.C.T. Estudo ultraestrutural e imunohistoquímico do estroma uterino durante a gestação de camundongos deficientes em decorim [tese]. São Paulo: Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo; 2009.

No presente estudo realizamos uma análise ultraestrutural e imuhistoquímica da organização das fibrilas de colágeno no endométrio durante a gestação de camundongos silvestres e deficientes em decorim. Os resultados mostraram que as fibrilas de colágeno em ambos os genótipos sofrem grande variação de forma e tamanho. Observou-se variação significante, na percentagem de distribuição dos diâmetros das fibrilas de colágeno existentes na região decidualizada em ambos os genótipos, porém foi maior nos animais Dcn-/-. Estes animais também apresentam maior percentagem de fibrilas finas quando comparados aos animais Dcn+/+. Observamos ainda que biglicam é expresso no endométrio não decidualizado dos animais Dcn-/-, no 3º dia de gestação. A expressão de lumicam mostrou-se nítida no estroma decidualizado e não decidualizado nos animais Dcn-/- no 7º dia de gestação e foi ausente nos animais Dcn-/-. Estes resultados mostraram que a ausência do decorim promove distúrbios no processo de agregação lateral das fibrilas espessas de colágeno.

Palavras chaves: Decorim, Colágeno, Ultraestrutura, Endométrio, Decídua, Camundongos nocautes.

ABSTRACT

Sanches, J.C.T. Ultrastructural and immunohistochemical studies of the uterine stroma in the decorin-deficient mice during pregnancy [tesis]. São Paulo: Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo; 2009.

The present study is an ultrastructural investigation into the organization of collagen fibrils in the pregnant endometrium of wild-type and decorin-deficient mice. Our results showed that collagen fibrils from both genotypes present a great variability of shape and size in cross section. Significant variation in the diameter of collagen fibrils exists in the decidualized endometrium from both groups of animals. In the decidualized endometrium, the diameter of collagen fibrils increases in both genotypes were higher in Dcn-/- than in Dcn+/+ animals. In the Dcn-/- animals the percentage of thin fibrils with diameter is also higher, when compared with Dcn+/+ animals. We also showed that Bgn is expressed in the non decidualized endometrium in the Dcn-/- animals, on day 3 of pregnancy. The expression of lumican showed a very sharp labeling in the decidualized stroma from day 7, and in the non decidualized estroma from Dcn-/- animals. These results suggest that the deficience of decorin may play a role on collagen fibrillogenesis in different stages of pregnancy.

Key Words: Decorin, Collagen, Ultrastructure, Endometrium, Decidua, Knockout

mice.

1 Introdução

A implantação embrionária em roedores e em humanos é acompanhada de

uma profunda remodelação dos tecidos maternos, especialmente da matriz

extracelular (MEC) do endométrio, com o objetivo de adaptar o ambiente uterino à

implantação e ao desenvolvimento do embrião.

Estudos anteriores têm demonstrado importantes mudanças na composição e

estrutura da matriz extracelular durante a decidualização em humanos e em

roedores (Aplin, 1996; Abrahamsohn e Zorn, 1993; Abrahamsohn, et al., 2002).

Dentre as modificações extracelulares do endométrio de camundongos,

destacam-se a intensa remodelação da matriz extracelular principalmente de fibras

colágenas (Abrahamsohn, et al., 2002). Síntese e secreção de fibrilas de colágeno

espessas com diâmetro de até 420nm têm sido demonstradas ao redor das células

deciduais durante o início da decidualização em camundongos (Alberto-Rincon, et

al., 1989; Oliveira, et al., 1991, 1998; Carbone, et al., 2006). Além da produção e

secreção de colágeno pelas células deciduais (Oliveira, et al., 1998), outros

componentes da matriz extracelular tais como, glicosaminoglicanas (GAGs),

glicoproteínas (Carson, et al., 1987), e proteoglicanos (PGs) (Greca, et al., 1998,

2000; San Martin, 2003) também são produzidos por estas células durante o

processo de transformação decidual.

Os pequenos proteoglicanos ricos em leucina (PPRLs) pertencem á família de

proteoglicanos secretados para matriz extracelular e incluem decorim, biglicam,

fibromudulina, lumicam, epiphican e keratocam (Iozzo e Murdoch, 1996). O

proteoglicano decorim tem sido localizado na superfície das fibras colágenas e tem

ação reguladora sobre o diâmetro da fibra de colágeno do tipo I (Pringle e Dodd,

1990), do tipo III (Thieszen e Rosenquist, 1995) e do tipo VI (Bidanset, et al., 1992),

o decorim liga-se á fibronectina (Schmidt, et al., 1987), e ao TGF β exercendo uma

ação moduladora na sua atividade (Hildebrand, et al., 1994; Kolb, et al., 2001;

Shaefer, et al., 2002). Além disso, o decorim exerce um controle da proliferação

celular pela indução da parada de células tumorais na fase G1 do ciclo celular (De

Luca, et al., 1996; Santra, et al., 1995).

Pouco se conhece sobre o controle da produção e a fibrilogênese de

colágeno no útero. Colágenos dos tipos I, III e V são os componentes fibrilares mais

comuns no endométrio de ratos e camundongos (Hurst, et al., 1997; Teodoro, et al.,

2003). Sabe-se, entretanto, que em outros tecidos, os pequenos proteoglicanos ricos

em leucina ligam-se á sítios específicos na superfície do colágeno, exercendo uma

forte influência na agregação destas das fibrilas (Ruggeri, 1984; Iozzo, et al., 1999).

Os tipos genéticos de colágeno, a sua associação com diferentes

glicosaminoglicanos e proteoglicanos, parecem desempenhar um papel importante

neste processo (Iozzo, et al., 1999; Greca, et al., 2000).

Estudos recentes conduzidos por San Martin, et al., (2000, 2003a) e San

Martin e Zorn, (2003) tem apontado para o papel dos proteoglicanos decorim e

biglicam no espessamento da fibrila de colágeno durante a decidualização em

camundongos.

Camundongos com deleção do gene para decorim são férteis e apresentam

anormalidades na fibrilogênese de colágeno em tecidos tais como, pele e tendão.

Estas alterações são tecido-específicas (Danielson, et al., 1997). A deficiência de

decorim leva à formação de fibrilas de colágenas muito espessas com perfil bastante

irregular (Danielson, et al., 1997).

Vários estudos têm demonstrado que camundongos nocautes para os PPRLs,

decorim (Dcn -/-), biglicam (Bgn -/0), lumicam (Lm -/-) e fibromodulina (Fm -/-)

apresentam alterações na formação, agregação e no diâmetro das fibrilas de

colágeno (Danielson, et al., 1997; Xu, et al., 1998; Ameye, et al., 2002a; Chakravarti,

et al., 1998).

O acesso ao camundongo deficiente para o proteoglicano decorim oferece

uma oportunidade única no estudo do papel deste proteoglicano na biologia da

matriz extracelular uterina, especialmente durante o processo de decidualização,

evento marcado pela extensa remodelação da matriz extracelular endometrial.

Conclusão

Os resultados obtidos neste trabalho nos permitiram concluir que:

1. A deleção funcional do gene de decorim promoveu alterações

morfológicas importantes na morfologia e na agregação das fibrilas de

colágeno do endométrio, durante o início da gestação.

2. A principal consequência da deficiência de decorim no endométrio não

decidualizado do 3º e 7º dia da gestação, e no sítio de interimplantação, foi

o aparecimento de fibrilas espessas de colágeno de contorno bastante

irregular.

3. A deleção do gene para o decorim promoveu um aumento significativo na

espessura das fibrilas de colágeno na decídua madura, no 5º e 7º dias de

gestação.

4. A deficiência de decorim aumentou a percentagem de fibrilas finas em

relação às fibrilas grossas na região de decídua madura no 7º dia de

gestação.

5. A deficiência de decorim pareceu aumentar a expressão de biglicam e

lumicam em diferentes fases da gestação e em diferentes regiões da

decídua, indicando uma possível ação compensatória destes

proteoglicanos no controle da fibrilogênese do colágeno endometrial.

Referências Bibliográficas

1 Abrahamsohn PA, Zorn TMT, Oliveira S. Decídua in rodents. In: SR Glasser, JD Aplin, LC Giudice and S Tabibzadeh editors. The endometrium. London: Taylor and Francis; 2002. pp 279-93. Abrahamsohn PA, Zorn, TM. Implantation and decidualization in rodents. J Exp Zool. 1993; 266(6): 603-28. Abrahamsohn PA. Morphology of the decidua. In: Yoshinaga K, editor. Blastocyst Implantatiom. Boston: Adams Publishing Group; 1989. p.127-33. Abrahamsohn PA. Ultrasctructural study of the mouse antimesometrial decidua. Anat Embryol. 1983; 166(2): 263-74. Alberto-Rincon MC, Zorn TM, Abrahamsohn PA. Diameter increase of collagen fibrils of the mouse endometrium during decidualization. Am J Anat. 1989; 186(4): 417-29. Alexander CM, Hansell EJ, Behrendtsen O, Flannery ML, Kishnani NS, Hawkes SP, Werb Z. Expression and function of matrix metalloproteinases and their inhibitors at the maternal-embryonic boundary during mouse embryo implantation. Development. 1996; 122(6): 1723-36 Ameye L, Young MF. Mice deficient in small leucine-rich proteoglycans: novel in vivo models for osteoporosis, osteoarthritis, Ehlers-Danlos syndrome, muscular dystrophy, and corneal diseases. Glycobiology. 2002; 12(9): 107R-16R. Ameye L, Aria D, Jepsen K, Oldberg A, Xu T, Young MF. Abnormal collagen fibrils in tendons of byglican/fibromodulin-deficient mice lead to gait impairment, ectopic ossification, and osteoarthritis. FASEB J. 2002; 16(7): 673-80. Aplin J. The cell biology of human implantation. Placenta. 1996; 17(5-6): 269-75. Bany BM, Harvey MB, Schultz GA. Expression of matrix metalloproteinases 2 and 9 in the mouse uterus during implantation and oil-induced decidualization. J Reprod Fertil. 2000; 120(1): 125-34

1 De acordo com:

International Committe of Medical Journal Editors. Uniform requirements for manuscripts submitted to

Biomedical Journal: sample references. Available from: http://www.icmje.org [2004 May 06]

Barkai U, Pringent-Tessier A, Tessier C, Gibori GB, Gibori G. Involvment of SOCS-1, the suppressor of cytokine signaling, in the prevention of prolactin-responsive gene expression in decidual cells. Mol Endocrinol. 2000; 14(4): 554-63. Bell SM, Schreiner CM, Scott WJ. The loss of ventral ectoderm identity correlates with the inability to form an AER in the legless hindlimb bud. Mech Dev. 1998; 74(1-2): 41-50. Bevilacqua EM, Abrahamsohn PA. Trophoblast invasion during implantation of the mouse embryo. Arch Biol med Exp. 1989; 22(2): 107-18. Bianco P, Fisher LW, Young MF, Terminie JD, Robey PG. Expression and localization of the two small proteoglycans biglycan and decorin in developing human skeletal and non-skeletal tissues.J Histochem Cytochem. 1990; 38(11): 1549-63 Bidanset DJ, Guidry C, Rosenberg LC, Choi HU, Timpl R, Höök. Binding of the proteoglycan decorin to collagen type VI. J Biol Chem. 1992; 267(8): 5250-6. Bijovisky AT, Zorn TM, Abrahamsohn PA. Remodeling of the mouse endometrial stroma during the preimplantation period. Acta Anat.1992; 144(3): 231-4 Birk DE, Hahn RA, Linsenmayer CY, Zycband EI. Characterization of collagen fibril segments from chicken embryo cornea, dermis and tendon. Matrix Biol. 1996; 15(2): 111-8. Birk DE, Nurminskaya MV, Zycband EI. Collagen fibrillogenesis in situ: fibril segments undergo post-depositional modifications resulting in linear and lateral growth during matrix developmental. Dev Dyn. 1995; 202(3): 229-43. Birk DE, Trelstad RL. Extracellular compartments in matrix morphogenesis: collagen fibril, bundle, and lamellar formation by corneal fibroblasts. J Cell Biol. 1984; 99(6): 2021-33. Candeloro L, Zorn TM. Distribution and spatiotemporal relationship of activin a and follistatin in mouse decidual and placental tissue. Am J Immunol. 2007b; 58(5): 415-24. Candeloro L, Zorn TM. Granulated and non-granulated decidual prolactin-related protein-positive decidual cells in the pregnant mouse endometrium. Am J Immunol. 2007a; 57(2): 122-32.

Carbone K, Pinto NM, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Arrangement and fine structure of collagen fibrils in the decidualized mouse endometrium. Microsc Res Tech. 2006; 69(1) 36-45. Carson DC, Dutt A, Tang JP. Glycoconjugate synthesis during early pregnancy: hyaluronate and function. Dev Biol. 1987; 120(1): 228-35. Chakravarti S, Zhang G, Chervoneva I, Roberts L, Birk DE. Collagen fibril assembly during postnatal development and dysfunctional regulation in the lumican-deficient murine cornea. Dev Dyn. 2006; 235(9): 2493-06. Chakravarti S, Paul J, Roberts L, Chervoneva I, Oldberg A, Birk DE. Ocular and scleral alterations in gene-targeted lumican-fibromodulin double-null mice. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003; 44(6): 2422-32. Chakravarti S, Petroll WM, Hassel JR, Jester JV, Lass JH, Paul J, Birk DE. Corneal opacity in lumican-null mice: defects in collagen fibril structure and packing in the posterior stroma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2000; 9(11): 3365-73. Chakravarti S, Magnuson T, Lass JH, Jepsen KJ, LaMantia C, Caroll H. Lumican regulates collagen fibril assembly: skin fragility and corneal opacity in the absence of lumican. J Cell Biol. 1998; 141(5): 1277-86. Corsi A, Xu T, Chen XD, Boyde A, Liang J, Mankani M, Sommer B, Iozzo RV, Eichstetter L, Robey PG, Bianco P, Young MF. Phenotypic effects of byglican deficiency are linked to collagen fibril anormalities, are synergized by decorin deficiency, and mimic Ehlers-Danlos-like changes in bone and others connective tissues. J Bone Miner Res. 2002; 17(7): 1180-9. Danielson KG, Baribault H, Holmes DF, Graham H, Kalder KE, Iozzo RV. Targeted disruption of decorin leads to abnormal collagen fibril morphology and skin fragility. J Cell Biol. 1997; 136(3): 729-43. Das SK, Chakraborty I, Wang J, Dey SK, Hoffman LH. Expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) and VEGF-receptor messenger ribonucleic acids in the peri-implantation rabbit uterus. Biol Reprod. 1997; 56(6): 1390-9. De Luca A, Santra M, Baldi A, Giordano A, Iozzo RV. Decorin-induced growth suppression is associated with upregulation of p21, an inhibitor of cyclin-dependent Kinases. J Biol Chem. 1996; 271(31): 18961-5.

De Feo VJ. Decidualization. In: Wynn RM, editor. Cellular Biology of the uterus. Amsterdam: North Holland; 1967. p. 192-291. Enders AC, Schlafke S. A morphological analysis of the early implantation stages in the rat. Am J Anat. 1967; 120: 185-226. Finn CA. The implantation reaction. In: Wynn RM, editor. Biology of the uterus. 2nd edition. New York: Plennum Press; 1977. p.245-308 Finn CA. The biology of decidual cells. Adv Reprod Physiol. 1971; 5: 1-26. Finn CA. The ageing uterus and its influence on reprodutive capacity. J reprod fertile suppl. 1970; 12: 31-8. Finn CA, Martin L. The role of the oestrogen secreted before oestrus in the preparation of the uterus for implantation in the mouse. J Endocrinol. 1970; 47(4): 431-8. Finn CA, Martin L. Patterns of cell division in the mouse uterus during early pregnancy. J Endocrinol. 1967; 39(4): 593-7. Finn CA, McLaren A. A study of the early stages of implantation in mice. J Reprod Fertil. 1967; 13(2): 259-67. Fisher LW. Biglycan. In: Kreis T, Vale R. editors. Guidebook to the Extracellular Matrix, Anchor, and Adhesion Proteins. 2nd edition. San Francisco: Oxford UniversityPress; 1999. p. 365-7. Fisher LW. Decorin. In: Kreis T, Vale R. editors. Guidebook to the Extracellular Matrix, Anchor, and Adhesion Proteins. 2nd edition. San Francisco: Oxford UniversityPress; 1999. p. 408-10. Greca CP, Nader HB, Dietrich CP, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Ultastructural cytochemical characterization of collagen-associated proteoglycans in endometrium of mice. Anat Rec. 2000; 259(4): 413-23.

Greca CP, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Ultraestructural cytochemical study of proteoglycans in the endometrium of pregnant mice using cationic dyes. Tissue Cell. 1998; 30(3): 304-11. Gu Y, Srivastava RK, Ou J, Krett NL, Mayo KE, Gibiori G. Cell-specific expression of activin and its two binding proteins in the rat decidua: role of alpha 2-macroglobulin and follistatin. Endocrinology. 1995; 136(9): 3815-22. Gu Y, Gibori G. Isolation, culture, and characterization of the two cell subpopulations forming the rat decidua: differential gene expression for activin, follistatin, and decidual prolactin-related protein. Endocrinology. 1995; 136(6): 2451-8. Gu Y, Jayatilak PG, Parmer TG, Gauldie J, Fey GH, Gibori G. Alpha 2-macroglobulin expression in the mesometrial decidua and its regulation by decidual luteotropin and prolactin. Endocrinology. 1992; 131(3): 1321-8. He H, McCartney DJ, Wei Q, Esadeg S, Zhang J, Foster RA, Hayes MA, Tayade C, Van Leuven F, Croy BA. Characterization of a murine alpha 2 macroglobulin gene expressed in reproductive and cardiovascular tissue. Biol Reprod. 2005; 72(2): 266-75. Hedbom E, Heinegärd D. Binding of fibromodulin and decorin to separate sites on fibrilar collagens. J Biol Chem. 1993; 268(36): 27307-12. Hildebrand A, Romaris M, Rasmussen LM, Heinegard D, Twardzik, DR, Border WA, Ruoslahti. Interaction of the small interstitial proteoglycan biglican, decorin and

fibromodulin with transforming growth factor . Biochem J. 1994; 302(Pt 2): 527-34. Hocking AM, Shinomura T, McQuillan DJ. Leucine-rich repeat glycoproteins of the extracellular matrix. Matrix Biol. 1998; 17(1): 1-19. Hurst PR, Palmay RD. Matrix metalloproteinases and their endogenous inhibitors during the implantation period in the rat uterus. Reprod Fertil Dev. 1999; 11(7-8): 395-402. Hurst PR, Palmay RD, Myers DB. Localization and synthesis of collagen types III and V during remodelling and decidualization in rat uterus. Reprod Fertil Dev. 1997; 9(4): 403-9.

Hurst PR, Gibbs RD, Clark DE, Myers DB. Temporal changes to uterine collagen types I, III, and V in relation to early pregnancy in the rat. Reprod Fertil Dev. 1994; 6(6): 669-77. Iozzo RV, Moscatello DK, McQuillan DJ, Eichstetter I. Decorin is a biological ligant for the epidermal growth factor receptor. J Bioll Chem. 1999; 274(8): 4489-92. Iozzo RV. Matrix proteoglycans: from molecular design to cellular function. Annu Rev Biochem. 1998; 67: 609-52. Iozzo RV & Murdoch AD. Proteoglycans of the extracellular environment: clues from the gene and protein side offer novel perpesctives in molecular diversity and function. FASEB J. 1996; 10(5): 598-614 Jayatilak PG, Puryear TK, Herz Z, Fazleabas A, Gibori G. Protein secretion by mesometrial and antimesometrial rat decidual tissue: evidence for differential gene expression. Endocrinology. 1989; 125(2): 659-66. Kadler KE, Holmes DF, Trotter JA, Chapman JA. Collagen fibril formation. Biochem J. 1996; 316(Pt1): 1-11. Karkavelas G, Kefalides NA, Amenta PS, Martinez-Hernandez A. Comparative ultrastructural localization of collagen types III, IV, VI and laminin in rat uterus and kidney. J Ultrastruct Mol Struct Res. 1988; 100(2): 137-55. Katz S, Abrahamsohn PA. Involution of the antimesometrial decidua in the mouse. An ultrastructural study. Anat Embryol. 1987; 176(2): 251-8. Kolb M, Margetts PJ, Sime PJ, Gauldie J. Proteoglycans decorin and biglican differentially modulate TGF-beta mediated fibrotic responses in the lung. Am J Physiol Lung Cell Mol Phyfiol. 2001; 280(6): L1327-34. Krehbiel RH. Cytological studies of the decidual reaction in the rat during early pregnancy and in the production of deciduomata. Physiol Zool. 1937; 10: 212-38. Lejune B, Van Hoeck J, Leroy F. Transmitter role of the luminal uterine epithelium in the induction of decidualization in rats. J Reprod Fertil. 1981; 61(1): 235-40.

Lisenmayer TF, Fitch JM, Birk DE. Heterotypic collagen fibril and stabilizing collagens. Contolling elements in corneal morphogenesis? Ann N Y Acad Sci. 1990; 580: 143-160. Mao JR, Bristow J. The Ehlers-Danlos syndrome: on beyond collagens. J Clin Invest. 2001; 107(9): 1063-9. Martello EM, AbrahamsohnPA. Collagen distribution in the mouse endometrium during decidualization. Acta Anat. 1986; 127(2): 146-50. Mossman HW. Comparative morphogenesis of the fetal membranes and accessory uterine structures. Contrib Embriol. 1937; 25: 133-426. Nuttall RK, Kenedy TG. Gelatinases A and B and tissue inhibitors of metalloproteinases 1, 2, and 3 during in vivo and in vitro decidualization of rat endometrial stromal cells. Biol Reprod. 1999; 60(2): 471-8. Oliveira SF, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Autoradiography reveals regional metabolic difference in the endometrium of pregnant and non-pregnant mice. Braz J Med Biol Res. 1998; 31(2): 307-12. Oliveira SF, Abrahamsohn PA, Nagata T, Zorn TM. Incorporation of 3H-amino acids by endometrial stromal cells during decidualization in the mouse. A radioautographical study. Cell Mol Biol. 1995; 41(1): 107-16. Oliveira SF, Nagata T, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Electron micrographic study on the incorporation of 3H-proline by mouse decidual cells. Cell Mol Biol. 1991; 37(3): 315-23. Orwij KE, Ishimura R, Müller H, Liu B, Soares MJ. Identification and characterization of a mouse homolog for decidual/trophoblast prolactin-related protein. Endocrinology. 1997b; 138(12): 5511-7.

Orwij KE, Daí G, Rasmussen, Soares MJ. Decidual/trophoblast prolactin-related protein: characterization of gene structure and cell-specific expression. Endocrinology. 1997a; 138(6): 2491-500. Parkening TA. An ultrastructural study of implantation in the golden hamster. III. Initial formation and differentiation of decidual cells. J Anat. 1976; 122(Pt 3): 485-98.

Pringle GA, Dodd CM. Imunoelectron microscopic localization of the core protein of decorin near the d and e bands of tendon collagen fibrils by use of monoclonal antibodies. J Histochem Cytochem. 1990; 38(10): 1405-11. Rasmussen CA, Orwig KE, Vellucci S, Soares MJ. Dual expression of prolactin-related protein in decidua and trophoblast tissues during pregnancy in rats. Biol Reprod. 1997; 56(3): 647-54. Rasmussen CA, Hashizume K, Orwig KE, Xu L, Soares MJ. Decidual prolactin-related protein: heterologous expression and characterization. Endocrinology. 1996; 137(12): 5558-66. Reinus S. Ultrastructural of blastocyst attachment in the mouse. Cell Tissue Res. 1967; 152: 525-42. Reponen P, Leivo I, Sahlberg C, Apte SS, Olsen BR, Thesleff I, tryggvason K. 92-kDa type IV collagenase and TIMP-3, but not 72-kDa type IV collagenase or TIMP-1 or TIMP-2, are highly expressed during mouse embryo implantation. Dev Dyn. 1995; 202(4): 388-96. Robertson SA, Mau VJ, Hudson SN, Tremellen KP. Cytokine-leukocyte networks and the establishment of pregnancy. Am J Reprod Immunol. 1997; 37(6): 438-42. Ruggeri A, Benazzo F. Collagen proteoglycan interaction. In: A Ruggeri, PM Motta, editors. Ultrastructure of the connective tissue matrix. Boston: Nijhoff Publ.; 1984. pp 113-25. Rugh R. Normal Development of the mouse. In: Rugh R editor. The mouse. Its reproduction and development. Burgess Publisng Company. 1968 p. 44-101. Ruoslahti E. Proteoglycans in cell regulation. J Biol Chem. 1989; 264(23): 13369-72. San Martin S, Soto-Suazo M, Zorn TMT. Perlecan and syndecan-4 in uterine tissues during the early pregnancy in mice. Am J Reprod. 2004; 52(1): 53-9. San Martin S. Caracterização e distribuição de proteoglicanos da matriz extracelular do útero de camundongos. Efeitos da castração e da reposição hormonal. [Dissertação (Doutorado em Biologia Celular e Tecidual)]. São Paulo (Brasil): Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo; 2003.

San Martin S, Zorn TMT. The small proteoglycan byglican is associated with thick collagen fibrils in the mouse decidua. Cell Mol Biol. 2003; 49(4): 673-8. San Martin S, Soto-Suazo M, Zorn TMT. Distribuition of versican and hyaluronan in the mouse uterus during decidualization. Braz J Med Biol Res. 2003c; 36(8): 1067-71. San Martin S, Soto-Suazo M, Oliveira SF, Aplin J, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Immunocytochemical localization of decorin in the mouse uterine tissues during the pre-implantation period. Cell Mol Biol. 2003b Congress, Vol. 46, Abstract, 206. San Martin S, Soto-Suazo M, Oliveira SF, Aplin J, Abrahamsohn PA, Zorn TM. Small leucine-rich proteoglycans (SLRPs) in uterine tissues during preganacy in mice. Reproduction. 2003a; 125(4): 585-95. Santra M, Skorski T, Calabretta B, Lattime EC, Iozzo RV. De novo decorin gene expression suppress the malignant phenotype in human colon cancer cells. Proc Natl. Acad Sci USA. 1995; 92(15): 7016-20. Schmidt G, Robneck H, Harrach B, Glössi J, Nolte V, Hörmann H, Richter H, Kresse H. Interaction of small dermatan sulfate proteoglycan from fibroblast with fibronectin. J Cell Biol. 1987; 104(6): 1683-91. Scott JE. The nomenclature of glycosaminoglycans and proteoglycans. Glycoconj J. 1993; 10(6): 419-21. Shaefer L, Macakova K, Raslik I, Micegova M, Gröne HJ, Schönherr E, Robenek H, Echtermeyer FG, Grässel S, Brukner P, Schaefer RM, Iozzo RV, Kresse H. Absence of decorin adversely influences tubulointerstitial fibrosis of the obstruced kidney by enhanced apoptosis and incrased inflamatory reaction. Am J Pathol. 2002; 160(3): 1181-91. Shelesnayk MC. Decidualization: the decidua and the deciduoma. Perspect Biol Mol. 1962; 5: 503-18. Snell GD. The early embruology of the mouse. In: Snell GD, editor. Biology of the laboratory mouse. New York: Dover Publications Ine; 1941. p.14-54.

Spiess K, Teodoro WR, Zorn TM. Distribution of collagen types I, III, and V in pregnant mouse endometrium. Connect Tissue Res. 2007; 48(2): 99-108. Spiess K. Distribuição temporal e especial dos colágenos I, III e V na decídua de camundongos: Estudo imunocitoquímico em microscopia de luz e eletrônica. [Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Tecidual)]. São Paulo (Brasil): Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo; 2006. Svensson L, Aszodi A, Reinholt F, Fassler R, Heinegärd D, Oldberg A. Fibromodulin-null mice have abnormal collagen fibrils, tissue organization, and altered lumican deposition in tendon. J Biol Chem. 1999; 274(14): 9636-47. Teixeira V. Estroma endometrial de camundongas durantre a “janela de implantação”. Análise por microscopia de luz e microscopia eletrônica de transmissão. [Dissertação (Mestrado em Biologia Celular e Tecidual)]. São Paulo (Brasil): Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo; 1998. Tenório DM, Santos MF, Zorn TM. Distribution of biglycan and decorin in rat dental tissue. Braz J Med Biol Res. 2003; 36(8): 1061-5. Teodoro WR, Witzel SS, Velosa AP, Shimokomaki M, Abrahamsohn PA, Zorn TMT. Increase of interstitial collagen in the mouse endometrium during decidualization. Connect Tissue Res. 2003; 44(2): 96-103. Thieszen SL, Rosenquist TH. Expression of collagens and decorin during aortic arch development: implications for matrix pattern formation. Matrix Biol. 1995; 14(7): 573-82. Vogel KG, Trotter JA. The effect of proteoglycans on the morphology of collagen fibrils formed in vitro. Coll Relat Res. 1987; 7(2): 105-14. Vogel KG, Paulsson M, Heinegard D. Specific inhibition of type I and type II collagen fibrillogenesis by the small proteoglycan of tendon. Biochem J. 1984; 223(3): 587-97. Welsh AO, Enders AC. Light and electron microscopic examination of the mature decidual cells of the rat with emphasis on the antimesometrial decidua and its degeneration. Am J Anat. 1985; 172(1): 1-29.

Weight TN, Heinegard DK, Hascall VC. Proteoglicans: Structure and Functions. In: Cell biology of extracellular matrix. 2nd edition. Eds Hay ED New York: Plenum. 1991. p. 45-70. Weitlauf HM. Biology of implantation. In: Knobil E, Neil JD, editors. The Physiology of Reprodution. 2nd. Edition. New York: Raven Press; 1994. p.391-440. Weitlauf HM. Biology of implantation. In: Knobil E, Neil JD, editors. The Physiology of Reprodution. V 01. 1 New York: Raven Press; 1988. p.231-62. Wenstrup RJ, Florer JB, Brunskill EW, Bell SM, Chervoneva I, Birk DE. Type V collagen controls the initiation of collagen fibril assembly. J Biol Chem. 2004; 279(51): 53331-7 Xu T, Bianco P, Fisher L, Longenecker G, Smith E, Goldstein S, Bonadio J, Boskey A, Heegaard A, Sommer B, Satomura K, Dominguez P, Zhao C, Kulkarni AB, Robey PG, Young MF. Targed disruption of the byglican gene leads to na osteoporosis-like phenotype in mice. Nat Genet. 1998; 20(1): 78-82. Young TL, Guo XD, King RS, Johnson JM, R ada JA. Identification of genes expressed in a human scleral cDNA library. Mol Vis. 2003; 9; 508-14. Zorn TM, Bijovsky AT, Bevilacqua EM, Abrahamsohn PA. Phagocytosis of collagen by mouse decidual cells. Anat Rec. 1989; 225(2): 96-100. Zorn TM, Abrahamsohn PA, Mariano M. The local origino f decidual cells in pregnancy mice. Braz J Med Biol Res. 1986b; 19(2): 221-6. Zorn TM, Bevilacqua EM, Abrahamsohn PA. Collagen remodeling during decidualization in the mouse. Cell Tissue Res. 1986a; 244(2): 443-8.