Bol. San. Veg. Plagas, 24: 573-580, 1998

La mancha negra de la hoja (Alternaria brassicicola(Schw.) Wiltsh.) en cultivos de colza canola de Buenos Airesy Santa Fe, Argentina

Silvia A. GAETÁN y Marta S. MADIA

Este trabajo tiene por objetivo estudiar la enfermedad foliar conocida como «Man-cha Negra de la hoja» detectada en cultivos de colza cañóla (Brassica napus L. ssp.oleifera) en diferentes localidades de las provincias de Buenos Aires y Santa Fe, Ar-gentina. Se describen los síntomas observados en hojas, silicuas y tallos, como así tam-bién las características morfobiométricas y culturales del microorganismo causal (Al-ternaria brassicicola (Schw.) Wiltsh.). Se detallan los resultados de los test de patoge-nicidad efectuados en plántulas.

S. GAETÁN y M. MADIA: Cátedra de Fitopatología, Fac. de Agronomía. Universidad deBuenos Aires. Avda. San Martín 4453. (1417) Capital Federal. Fax: 552-1687.

Palabras clave: Colza, enfermedad foliar, mancha negra, Alternaria brassicicola

INTRODUCCIÓN

En lotes de producción de colza 00 (cano-la) (Brassica napus L. ssp. oleifera (Metzg.)Sinsk.) ubicados en las provincias de BuenosAires y Santa Fe, Argentina se registraron,durante las campañas 1993-95, ataques deintensidad variable de Alternaria brassicico-la (Schw.) Wiltsh, agente causal de la Man-cha Negra de la Hoja. La sintomatología deesta enfermedad foliar se observó en plantasadultas de colza de primavera a partir de lafase de formación de silicuas (G,: caída delos primeros pétalos, primeras silicuas de2 cm - G4: 10 primeras silicuas bien marca-das). Ésta se evidenció en todos los órganosaéreos, es decir hojas, tallos y frutos.

En las hojas, sobre todo en las inferiores,se observaron lesiones necróticas de formaredondeada, de 3-5 mm de diámetro y ubi-cadas sobre el haz foliar. Su color se intensi-ficó debido a la esporulación del hongo queformó la eflorescencia negra con aspecto

aterciopelado conformada por las estructu-ras asexuales (conidios y conidioforos) (Fi-gura 1). En las hojas que presentaban gran-des porciones de tejido enfermo se produjomarchitamiento de la lámina y posteriordesprendimiento de las mismas.

Lesiones semejantes a extensas estrías ne-cróticas de casi 6-8 mm de longitud invadie-ron los tallos, que al quedar cubiertos porestas lesiones se ennegrecieron. Las condi-ciones ambientales también favorecieron elataque de Oidio por lo que las lesiones setornaron grisáceas debido a la pulverulentade esta enfermedad (Figura 2).

Sobre las silicuas se observaron manchasnecróticas con características similares a lasencontradas en las hojas. La presencia delhongo en ellas anticipó su apertura lo cualdeterminó la pérdida de sus semillas (Figu-ra 3).

La sintomatología se presentó sobre varie-dades nacionales -Global, Optima, Printol ylíneas experimentales- y en un híbrido, Icio-Ia41.

Fig. l.-En las hojas: lesionesnecróticas de forma redondeada,de 3-5 mm. de diámetro ubicadassobre el haz.

Fig. 2.-En tallos: lesiones necróticas de 6-8 mm. de longitud. Asociado a las mismas se observauna pulverulencia blanquecina correspondiente al desarrollo de Oidio.

Fig. 3.-Sobre las silicuas: manchas necróticas cubiertas por una eflorescencia negra producidapor las estructuras asexuales del hongo. Lesiones semejantes alcanzaron los pedúnculos florales.

Esta enfermedad fue estudiada por prime-ra vez en 1945 por Neegaard en Dinamarca.Alternaria brassicae (Berk.) Sacc, y A.brassicicola son considerados en Europa,sobre este cultivo, como los patógenos másfrecuentes y causantes de severas reduccio-nes en los rendimientos. Casi todas las va-riedades cultivadas, tanto en España comoen Inglaterra, se caracterizan por ser suscep-tibles a ambos microorganismos (EVANS etal, 1984). De los dos, A. brassicicola es elmás difundido y el responsable de las mayo-res mermas debido a su gran patogenicidad(MAUDE y HUMPHERSON- JONES, 1977).

En la Argentina CALOT et al. (1985) des-criben por primera vez la sintomatologíacausada por A. brassicicola sobre dos culti-vares de colza de tipo invernal y destacan lagravedad de los daños producidos en las si-licuas. GAETÁN et al. (1995) comprueban lapatogenicidad de A. brassicae (Berk.) Sacc.y A. brassicicola a partir de aislamientosobtenidos de semillas de colza cañóla enlotes de la provincia de Buenos Aires. MON-TERROSO y DELHEY (1995) detectan, en lamisma zona de cultivo, la presencia de A.brassicae en la semilla cosechada.

Se plantea como objetivo del presente tra-bajo actualizar las investigaciones sobre estepatógeno fúngico, en virtud del daño queocasionó en 1981 y porque es la primera vezen el país que se lo observa en cultivos decolza 00.

MATERIALES Y MÉTODOS

Aislamientos y reaislamientos

Se emplearon plantas enfermas de colzacañóla de la variedad Printol y del híbridoIclola 41 recolectadas en lotes ubicados enla provincia de Buenos Aires.

Los aislamientos se realizaron en APG(agar papa glucosado) al 2% (acidificadocon gotas de ácido láctico al 25%) a partirde secciones de hojas, tallos y silicuas consíntomas. Las siembras se incubaron a 23 °C(± 3 °C).

Pruebas de Patogenicidad

Hospedantes

Los tests de patogenicidad se efectuaronsobre la variedad Printol e híbrido Iciola 41,en la etapa correspondiente a plántula, A -B,(estado cotiledonar y formación de roseta aprimer par de hojas verdaderas desplegadas,respectivamente). Las plantas se obtuvierona partir de la siembra en macetas de plásticode 250 cm3 ubicadas en cámaras bioclimáti-ca a 24 °C (±3 °C) y a 50 cm de distancia detubos Grolux de 40 watts, 5 semillas por ma-ceta que luego se ralearon a dos, a razón de20 macetas por variedad/híbrido, dejando 5como testigos para cada una.

Inoculo

El inoculo se obtuvo de cultivos delhongo de 10-12 días de desarrollo en cajasde Petri. Se preparó una suspensión de espo-ras en agua destilada estéril con una concen-tración de 4 x 104 esporas/ml.

Técnica de Inoculación

Las plántulas se pulverizaron con la sus-pensión de esporas mediante un pulverizadortipo de Vilbiss. Luego se mantuvieron nueva-mente en cámara bioclimática con las carac-terísticas descritas. Durante las primeras 48horas que siguieron a la inoculación, se lasacondicionó en una cámara húmeda consti-tuida por bolsas de polietileno para dar lugara la germinación de los conidios. Los testigosfueron sometidos a idénticas condicionesaunque sólo se pulverizaron con agua estéril.

RESULTADOS

Características del agente causal

A los 10-12 días el hongo desarrolló for-mando colonias de color pardo oliváceo, de

aspecto afieltrado y bordes irregulares. Seobservaron conidios dispuestos en cadenasde hasta 18 unidades. Las esporas son muri-formes, de color pardo oliváceo, con 5-8 ta-biques transversales y 0-4 longitudinales.Presentan una célula basal redondeada y laapical en forma de cono truncado; están pro-vistas de un pico relativamente corto ymiden 65 u (42-68 ¡x) de largo por 12 u (9-15 ja) de ancho (figura 4).

Fig. 4.-Conidios muriformes de color pardooliváceo, con 5-8 tabiques transversales

y 0-4 longitudinales. Célula basal redondeaday apical en forma de cono truncado, provistas

de un pico relativamente corto (40X).

Fig. 5 y 6.-Pruebas de patogenicidad: Sobre loscotiledones: manchas necróticas negruzcas, de aspecto

deprimido y dispuestas sobre los márgenes.

Pruebas de patogenicidad

A los 7-10 días de efectuadas las pulveri-zaciones, tanto en el híbrido como en la va-riedad inoculada se observaron lesiones encasi todos los órganos. Sobre los cotiledonesse formaron manchas necróticas negruzcas,de aspecto deprimido y dispuestas sobre losmárgenes que medían de 2-4 mm. de diáme-tro (figuras 5 y 6).

Cuando en los hipocótiles se desarrollaronpequeñas lesiones necróticas, se produjo elestrangulamiento de la zona afectada, con laconsiguiente muerte de plántulas. En estecaso, se registró una mortandad que osciló

Fig. 7.-Lesión necrótica que rodea el hipocótiley lo extrangula.

entre el 20-35% en la variedad e híbrido,respectivamente (figuras 7 y 8).

El hongo alcanzó a esporular sobre lossíntomas descritos, facilitando su re-aisla-miento.

DISCUSIÓN

La sintomatología observada en las plan-tas enfermas en condiciones de campo coin-cide con la descrita por CALOT et ai (1985),sobre las variedades de colza de tipo inver-nal.

Los síntomas obtenidos en las pruebas depatogenicidad concuerdan con los referidospor GAETÁN et al. (1995) para las varieda-des de colza cañóla.

Las características morfobiométricas delmicroorganismo causal coinciden con lasdescripciones dadas por JOLY (1959) y porELLIS (1971) para A. brassicicola.

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Fig. 8.-Tallo «alambre» (inf.) y tallo normal (sup.).

CONCLUSIONES

Los resultados obtenidos permiten con-cluir que: A. brassicicola se comporta comoun patógeno muy agresivo sobre B. napusssp. oleifera ya que ocasiona síntomas entoda la parte aérea. Los mismos producen la

muerte de los órganos afectados e importan-tes pérdidas de la semilla debido a la apertu-ra anticipada de las silicuas.

La difusión alcanzada por este patógenoen las zonas de producción de las provinciasde Buenos Aires y Santa Fe, lo convierte enuna amenaza potencial para el cultivo deesta oleaginosa.

ABSTRACT

GAETÁN, Silvia A. y MADIA, Marta S., 1998: La mancha negra de la hoja (Alterna-ria brassicicola (Schw.) Wiltsh.) en cultivos de colza cañóla de Buenos Aires y SantaFe, Argentina. Bol. San. Veg. Plagas, 24(3): 573-580.

The purpose of this work was to identifie the causal microorganism of Leaf BlackSpot observed in rapeseed (Brassica napus L ssp. oleifera). The symptomatology wasdetected in Buenos Aires and Santa Fe provinces. The phytopathological techniqueswere followed. Alternaria brassicicola (Schw.) Wiltsh. was the etiologic agente. Thepathogenicity tests were followed and the results of these tests were positive.

Key words: Rapeseed, leaf disease, Leaf Black Spot, Alternaria brassicicola.

REFERENCIAS

CALOT, L.; CANULLO, G. y GAETÁN, S., 1985: La man-cha negra de la hoja causada por Alternaria brassici-cola (Schw.) Wiltsh. en colza oleaginosa (Brassicanapus L. ssp. oleifera (Metzg.) Sinsk. Congreso Ar-gentino de Micología. San Luis, octubre de 1985.Trabajo publicado en actas del congreso.

ELLIS, M. B., 1971: Dematiacious Hyphomycetes.Commonw. Inst., England. 608 pp.

EVANS, E. J.; GLADDERS, P. y DAVIES, J. M. L., Cu-rrent status of diseases and disease control of winteroilseed rape in England. Aspects of Applied Biology6: 323-334.

GAETÁN, S.; GARBAGNOLI, C. y IRIGOYEN, E., 1995:Microorganismos en semillas de colza cañóla (Bras-sica napus L. ssp. oleifera (Metzg.) Sinsk.) en Ar-gentina. Fitopatología 30 (2): 107-117. Lima, Peru.

JOLY, P., 1959: Variations morphologiques et notiond'espece chez le genre Alternaria (Nees.) Wiltshire.Bull. Soc. Mycol. Fr. 75: 149-158.

MAUDE, R. B. y HUMPHERSON-JONES, F. M., 1977:Dark Leaf Spot of Brassicas (Alternaria brassicico-la). Ann. Rep. Nati. Veg. Res. Sin. Wellesbourne,Warwic 28: 95-97.

MONTERROSO, L. y DELHEY, R., 1995: Estudio de lasenfermedades del cultivo de colza (Brassica napus)en el centro de la provincia de Buenos Aires, Argen-tina. IX Jornadas Fitosanitarias Argentinas. Mendo-za, 13-15 de noviembre de 1995. Publicado en resú-menes. 100 pp.

NEEGAARD, P., 1945: Danish species of Alternariaand Stemphyllum. Einar Munksgaard, Copenha-guen. 560 pp.

(Recepción: 26 enero 1998)(Aceptación: 11 mayo 1998)