DISSERTAÇÃO DE MESTRADO-MAICO · 2020. 5. 8. · Aos meus irmãos Márcio e Marcel, pelos...
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UNIVERSIDADE ESTADUAL DE CAMPINAS
FACULDADE DE CIÊNCIAS MÉDICAS
MAICO DE MENEZES
“HOMOGENEIZAÇÃO INDUZIDA POR CAPILARIDADE DE MATRIZ EM PAPEL: UMA PODEROSA ABORDAGEM PARA A QUANTIFICAÇÃO DE INSUMOS
FARMACÊUTICOS ATIVOS USANDO A ESPECTROMETRIA DE MASSAS POR IMAGEM”
“CAPILLARY INDUCED HOMOGENIZATION OF MATRIX IN PAPER: A POWERFUL APPROACH FOR THE QUANTIFICATION OF ACTIVE PHARMACEUTICAL
INGREDIENTS USING MASS SPECTROMETRY IMAGING”
CAMPINAS 2016
MAICO DE MENEZES
“HOMOGENEIZAÇÃO INDUZIDA POR CAPILARIDADE DE MATRIZ EM PAPEL: UMA PODEROSA ABORDAGEM PARA A QUANTIFICAÇÃO DE INSUMOS
FARMACÊUTICOS ATIVOS USANDO A ESPECTROMETRIA DE MASSAS POR IMAGEM”
“CAPILLARY INDUCED HOMOGENIZATION OF MATRIX IN PAPER: A POWERFUL APPROACH FOR THE QUANTIFICATION OF ACTIVE PHARMACEUTICAL
INGREDIENTS USING MASS SPECTROMETRY IMAGING”
Dissertação apresentada à Faculdade de Ciências Médicas da Universidade Estadual de Campinas como parte dos requisitos exigidos para a obtenção do título de Mestre em Ciências. Master's dissertation presented to the School of Medical Sciences of the Campinas State University as part of the requirements for obtaining the degree of Master in Sciences.
ORIENTADOR: PROF. DR. RODRIGO RAMOS CATHARINO ESTE EXEMPLAR CORRESPONDE À VERSÃO FINAL DA DISSERTAÇÃO DEFENDIDA PELO ALUNO MAICO DE MENEZES, E ORIENTADO PELO PROF. DR. RODRIGO RAMOS CATHARINO.
CAMPINAS
2016
BANCA EXAMINADORA DA DEFESA DE MESTRADO MAICO DE MENEZES
ORIENTADOR: PROF. DR. RODRIGO RAMOS CATHARINO
MEMBROS:
1. PROF. DR. PROF. DR. RODRIGO RAMOS CATHARINO
2. PROF(A). DR(A). DAISY MACHADO
3. PROF(A). DR(A). SELMA GUTIERREZ ANTONIO
Programa de Pós-Graduação em Fisiopatologia Médica da Faculdade de Ciências
Médicas da Universidade Estadual de Campinas.
A ata de defesa com as respectivas assinaturas dos membros da banca examinadora
encontra-se no processo de vida acadêmica do aluno.
Data: 30 de agosto de 2016
DEDICATÓRIA
Dedico este trabalho à minha família, Tércio, Marlene, Márcio, Marcel e Karine por todo o apoio, amor e confiança que depositaram em mim.
AGRADECIMENTOS
Agradeço primeiramente ao meus pais, Tércio e Marlene que sempre me
incentivaram ao estudo e pela busca incessante pelo conhecimento e claro, a toda a
educação recebida. A pessoa que sou, é graças a eles! Muito obrigado por toda a minha
vida, amo vocês!
Aos meus irmãos Márcio e Marcel, pelos exemplos de vida e conversas leais ao
longo desses nossos anos de convívio. Vocês fizeram parte de meu crescimento como
pessoa, fazendo com que a união e os laços de amizade puro e verdadeiro,
permaneçam para sempre entre nós.
À Karine, a minha eterna e grande companheira, por todo o amor, carinho,
incentivo, paciência, compreensão e confiança. Obrigado por me ajudar e me incentivar
nos momentos mais delicados de minha vida. Te amo!
Aos meus grandes e valiosos amigos do Laboratório Innovare: Lívia, Diogo, Tati,
Cibele, Fernando, Estela, Mônica, Gustavo, Fu, Luis e Matheus. Obrigado pelo
companheirismo, pelas ajudas e pela bela amizade e carinho que tenho com todos
vocês.
À Althaia S.A Industria Farmacêutica pelo grande incentivo e apoio técnico.
E por fim, ao orientador e amigo Prof. Dr. Rodrigo Ramos Catharino por todo
incentivo e confiança depositada desde o episódio conturbado no início do programa de
pós-graduação. Confesso que foi o maior estímulo que obtive para a conclusão deste e
de outros projetos juntos. Só Alegria!
RESUMO
Uma técnica sensível, seletiva e que permite elucidar as estruturas químicas presentes
na formulação de um medicamento é a espectrometria de massas. É uma técnica muito
utilizada para análises de insumos farmacêuticos ativos (IFA), impurezas e degradantes.
Neste contexto, este trabalho emprega uma nova abordagem para a quantificação de
insumos farmacêuticos ativos que utilizam a espectrometria de massas por imagem.
Esta estratégia utiliza um papel de filtro previamente "eluída" com uma solução de matriz
para MALDI (Matrix-assisted laser desorption/ionization), como um suporte para a
aplicação do analito. As amostras são submetidas ao espectrômetro de massas por
imagem (MSI) e sua quantificação através das características das impressões digitais.
Os resultados para o conteúdo de rosuvastatina a partir de uma formulação comercial
são comparáveis aos obtidos com um método validado de HPLC.
Palavras-chave: Rosuvastatina Cálcica. Espectrometria de Massas por Ionização e
Dessorção a Laser Assistida por Matriz. Análise Quantitativa. Controle de Qualidade.
ABSTRACT
A sensitive technique, selective and that allows elucidating the chemical structures
in the drug formulation is mass spectrometry. It is a technique widely used for
active pharmaceutical ingredients (API) analysis, impurities and degradation
products. In this context, this study employs a novel approach for the quantitation
of active pharmaceutical ingredients using mass spectrometry imaging. This
strategy uses a filter paper previously “eluted” with a MALDI matrix solution as a
support for analyte application. Samples are submitted to mass spectrometry
imaging (MSI) and quantification through characteristic fingerprints is finally
performed. Results for the content of rosuvastatin from a commercial formulation
are comparable to those obtained with a validated HPLC method.
Key words: Rosuvastatin Calcium. Spectrometry, Mass, Matrix-Assisted Laser
Desorption-Ionization. Quantitative Analysis. Quality Control
LISTA DE ILUSTRAÇÕES
Figura 1 Esquema simplificado mostrando a biossíntese do colesterol. Em destaque, a enzima HMG-CoA redutase, que é inibida pela ação das estatinas………………………………………………….………………..…14
Figura 2 As estruturas químicas das estatinas e a reação catalisada por HMG-CoA redutase.....................................………………..……………………15
Figura 3 Estrutura química da Rosuvastatina ......………………………..………..16
Figura 4 Componentes básicos de um cromatógrafo liquido …………….....……24
Figura 5 Ionização por MALDI …………….....…………………….……………..…25
LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS
ANVISA Agencia Nacional de Vigilância Sanitária
BPF Boas Práticas de Fabricação
CHCA Ácido α-ciano-4-hidroxicinâmico
Cmáx
CQ
Concentração plasmática máxima
Controle de Qualidade
DAC Doença Arterial Coronariana
DAD Detector de arranjos de diodos (Detector diode array)
DESI Ionização de dessorção por elétron-spray (Desorption electrospray ionization)
ESI Ionização por elétron-spray (Electrospray ionization)
HDL Lipoproteína de alta densidade (High density lipoprotein)
HMG Hidroximetilglutarílico
HMG-CoA 3-hidroxi-3-metilglutaril-coenzima A
HPLC
IFA
Cromatografia líquida de alta eficiência (High-performance liquid chromatography)
Insumo Farmacêutico Ativo (Active Pharmaceutical Ingredientes)
LC Cromatografia líquida (Liquid chromatography)
LDL Lipoproteína de baixa densidade (Low density lipoprotein)
MALDI Ionização por dessorção a laser assistida por matriz (Matrix-assisted laser
desorption/ionization)
MS Espectrometria de massas (Mass spectrometry)
MSI Espectrometria de massas por imagem (Mass spectrometry imaging)
MS/MS Espectrometria de massas em tandem
VLDL Lipoproteína de densidade muito baixa (Very low density lipoprotein)
SUMÁRIO
1. INTRODUÇÃO.............................................................................................13
2. OBJETIVOS.................................................................................................27
3. METODOLOGIA...........................................................................................28
4. RESULTADOS.............................................................................................31
5. DISCUSSÃO GERAL...................................................................................38
6. CONCLUSÃO...............................................................................................40
7. REFERÊNCIAS............................................................................................41
8. ANEXOS......................................................................................................46
13
1. INTRODUÇÃO
Estatinas
As estatinas são agentes hipolipemiantes que exercem os seus efeitos
através da inibição da HMG-CoA redutase, enzima fundamental na síntese do
colesterol. (1) São os fármacos mais usados para tratamento das hiperlipidemias
em prevenção primária e secundária, com o propósito de diminuir os níveis de
lipoproteínas plasmáticas ricas em colesterol e reduzir os riscos de doença arterial
coronariana (DAC). Estes efeitos são resultantes da atividade inibidora das
estatinas sobre a enzima 3-hidroxi-3-metilglutaril-coenzima A (HMG-CoA)
redutase, com a propriedade de bloquear a conversão do substrato HMG-CoA em
mevalonato, inibindo os primeiros passos da biossíntese de colesterol. Estas
substâncias, capazes de mimetizar o substrato natural, podem ser divididas em
naturais e sintéticas e diferem fundamentalmente em termos de potência, perfil
farmacocinético, interação farmacológica e efeito indesejado relacionado à
miotoxicidade. (2-5)
14
Figura 1: Esquema simplificado mostrando a biossíntese do colesterol. Em destaque, a enzima HMG-CoA redutase, que é inibida pela ação das estatinas.
Mevastatina (ou compactina) foi o primeiro inibidor de HMGCoA redutase
descoberto em 1976, originalmente isolado como produto metabólico de culturas
de Penicillium citrinium (6), sendo sua afinidade pelo sítio enzimático cerca de
10.000 vezes superior ao substrato HMG-CoA. Por outro lado, lovastatina (ou
mevinolina) foi isolada posteriormente de culturas de Aspergillus terreus e
Monascus ruber com estrutura semelhante à mevastatina (grupo 6´-metílico
adicional), mas com potência superior. Em 1987 lovastatina foi aprovada pelo FDA
para uso terapêutico, enquanto mevastatina foi abandonada devido a problemas
na morfologia intestinal de cachorros e toxicidade hepatocelular verificada em
ratos. (7)
15
Figura 3: As estruturas químicas das estatinas e a reação catalisada por HMG-CoA redutase.
As estatinas são bem toleradas com boa margem de segurança durante a
utilização prolongada. Os efeitos colaterais não são frequentes, mas um dos mais
sérios está relacionado à ação hepatotóxica, com possível aumento das enzimas
aspartato e alanina transaminases. Miopatias, com evolução a rabdomiólises e
insuficiência renal, são raras, mas são efeitos graves associados ao uso de
estatinas. O uso concomitante de estatinas com eritromicina, ciclosporina, niacina
e fibratos aumenta o risco de miopatias em 10-30% dos pacientes. (2-5)
16
Em 2002, atorvastatina foi o fármaco mais vendido no mundo, rendendo
para o fabricante Pfizer cerca de US$ 8 bilhões. (8) A partir de 2004, a
rosuvastatina foi aprovada em 154 países e lançado em 56. Aprovação nos
Estados Unidos pela FDA veio em 12 de agosto de 2003. (9) A rosuvastatina é
hoje a estatina mais vendida no mundo. (10) A figura 3 mostra a estrutura química
da rosuvastatina.
A faixa terapêutica das estatinas é de 10-80 mg/dia. A faixa de dose usual é
de 10 mg a 40 mg, por via oral, uma vez ao dia. A dose máxima diária de
rosuvastatina é de 40 mg. Doses elevadas devem ser usadas com precaução em
idosos, em pacientes com insuficiência renal ou hepática, hipotireoidismo ou
diabetes. (11)
Figura 3: Estrutura química da rosuvastatina
17
Aplicações de tratamento
A rosuvastatina, um agente hipoglicemiante, é um inibidor seletivo e
competitivo da 3-hidroxi-3-metilglutaril-coenzima A (HMG-CoA) redutase, a enzima
limitante responsável pela conversão da HMG-CoA a mevalonato, um precursor
dos esteróis, inclusive do colesterol.
Em pacientes com hipercolesterolemia familiar homozigótica e
heterozigótica, formas não-familiares de hipercolesterolemia e dislipidemia mista,
a rosuvastatina reduz o colesterol total, LDL-colesterol (lipoproteína de baixa
densidade) e apolipoproteína B. A rosuvastatina também reduz o VLDL-colesterol
(lipoproteínas de densidade muito baixa) e os triglicérides e produz aumentos
variáveis no HDL-colesterol (lipoproteínas de alta densidade).
De uma forma geral, ela aumenta o número de receptores de LDL hepáticos
na superfície da célula, aumentando a absorção e o catabolismo do LDL.
Seu mecanismo de ação é semelhante ao de outras estatinas. A sua meia
vida de eliminação é de aproximadamente 19h e o seu tempo para a concentração
plasmática máxima (Cmáx) é alcançada em 5/3h após a administração oral. (12)
Pesquisas sugerem que a rosuvastatina pode diminuir o risco relativo de
ataque cardíaco e acidente vascular cerebral em pacientes sem hiperlipidemia,
mas com níveis elevados de proteína C-reativa altamente sensível. Isso pode
impactar fortemente a prática médica, colocando muitos pacientes em profilaxia
com a estatina. Como resultado deste ensaio clínico, o FDA aprovou a
rosuvastatina para a prevenção primária de eventos cardiovasculares.(13,14)
18
Controle de Qualidade na Industria Farmacêutica
A Indústria Farmacêutica é um segmento vital do sistema de cuidados da
saúde, já que conduz a pesquisa, fabrica e comercializa os medicamentos. A
realização do Controle de Qualidade (CQ) nas indústrias farmacêuticas é de
extrema importância para que a qualidade, segurança, eficácia e credibilidade dos
seus produtos sejam asseguradas junto à população que irá consumir estes
medicamentos. (15) Para garantir o cumprimento das legislações vigentes e de
suas políticas e procedimentos internos, com o objetivo de produzir produtos
farmacêuticos de qualidade, a empresa deve desenvolver organizações de
qualidade bastante sofisticadas, com responsabilidades bem definidas. Desta
forma, estão sendo apresentados novos desafios para o controle de qualidade e
para os sistemas que operam para assegurar esta característica essencial ao
produto. (15)
O CQ é parte das Boas Práticas de Fabricação de Medicamentos (BPF), cujas
atividades envolvidas são amostragem, especificações, ensaios, procedimentos
de organização, documentação e liberação que asseguram que os ensaios
necessários e relevantes sejam executados e que os materiais não sejam
liberados para uso, nem os produtos liberados para venda ou fornecimento, até
que a qualidade dos mesmos seja julgada satisfatória. (16)
A ANVISA regulamenta as Boas Práticas de Controle de Qualidade na
Indústria Farmacêutica através da Resolução RDC no 17, de 16 de abril de 2010.
Esta resolução estabelece requisitos mínimos a serem seguidos na fabricação de
19
medicamentos, para padronizar a verificação do cumprimento das BPF durante as
inspeções sanitárias. As matérias-primas para uso na indústria farmacêutica, tanto
os IFAs quanto excipientes, estão sujeitos a requisitos de qualidade farmacêutica
descritos nas BPF. Para garantir a máxima segurança do produto, as diretrizes de
BPF, contidas na Resolução RDC nº 17, requerem testes especiais, visto que
além dos testes rotineiros de liberação da substância, a identificação deve ser
realizada para todo recipiente de matéria-prima, de todos os lotes. (17)
Um sistema apropriado da Garantia da Qualidade aplicado à fabricação de
medicamentos deve assegurar:
• Que os medicamentos sejam desenvolvidos considerando a necessidade
do cumprimento das Boas Práticas de Fabricação.
• As operações de produção e controle estejam especificadas por escrito e as
exigências de BPF cumpridas.
• As responsabilidades gerenciais estejam claramente especificadas na
descrição de cargos e funções.
• Sejam tomadas providências à fabricação, suprimento e utilização correta
das matérias primas.
• Sejam realizados todos os controles nas matérias primas, produtos
intermediários, produtos granel, bem como outros controles em processo,
calibrações e validações.
• O produto terminado seja corretamente processado e conferido segundo
procedimentos definidos.
20
• Sejam fornecidas instruções e tomadas as providências necessárias para
garantir que os medicamentos sejam armazenados, transportados,
distribuídos e manuseados, de forma que a qualidade seja mantida por todo
prazo de validade.
• Haja procedimento de auto-inspeção e/ou auditoria interna de qualidade
que avalie regularmente a efetividade e a aplicação do Sistema de Garantia
da Qualidade.
• Que haja um sistema de treinamento e capacitação contínua dos
funcionários de toda a indústria.
• Que os fornecedores de materiais e matérias-primas sejam classificados,
segundo os critérios de qualidade.
Técnicas Analíticas
A caracterização de medicamentos e de seus contaminantes ou de
produtos de degradação exige técnicas analíticas sensíveis e seletivas para
determinar compostos existentes em sua formulação, bem como para elucidação
de mecanismos de reações bioquímicas.
A complexidade das substâncias existentes em medicamentos podem gerar
problemas à cromatografia e à espectrometria de massas, devido à separação de
matriz e ativo e supressão de íons, além de outros efeitos, sendo um grande
desafio científico. (18)
21
A espectrometria de massas por imagem apresenta vantagens particulares
sobre estas abordagens clássicas, quando aplicado ao estudo de moléculas
pequenas (com compostos de baixo peso molecular peso, 100-1000 Da) tal como
candidatos a fármacos: em contraste com LC-MS/MS, MALDI imaging permite a
detecção e o mapeamento de vários compostos de interesse simultaneamente
sem qualquer rotulagem, incluindo drogas, metabólitos lípidos, péptidos ou
proteínas, na mesma amostra de tecido. Há várias limitações em espectrometria
de massas com imagens em experimentos quantitativos, por exemplo, deposição
da matriz e suas propriedades, a única ionização de cada molécula, bem como a
dependência do sinal na natureza do tecido, todos representam fatores críticos
que devem ser tidas em conta de pré-análise. Para começar, o sinal detectado é
altamente dependente da deposição de matriz. A escolha da matriz, da
composição do solvente e a deposição influenciam no resultado do estudo. (19)
Além disso, uma elevada homogeneidade do analito da matriz de co--cristalização
de tecido é necessário para obter medições reprodutíveis e para minimizar sinal
de variação. (20) Além do pulverizador manual e de (21), novos dispositivos de
deposição de matriz usando nebulização (22) têm sido desenvolvidos para
estabelecer procedimentos automatizados e padronizados.
Considera-se também uma técnica não-destrutiva, assim, a amostra pode
ser utilizada para análises posteriores. (19)
A ampliação do campo de pesquisa para análise de substâncias em
produtos farmacêuticos, o processo de fabricação e a composição dos
medicamentos pela indústria farmacêutica são desafios, que auxiliarão na
melhoria na produção e qualidade dos medicamentos brasileiros.
22
Cromatografia
A cromatografia é um método físico-químico de separação. Ela está
fundamentada na migração diferencial dos componentes de uma mistura, que
ocorre devido a diferentes interações, entre duas fases imiscíveis, a fase móvel e
a fase estacionária. A grande variedade de combinações entre fases móveis e
estacionárias a torna uma técnica extremamente versátil e de grande aplicação.
(23)
O termo cromatografia foi primeiramente empregado em 1906 e sua
utilização é atribuída a um botânico russo ao descrever suas experiências na
separação dos componentes de extratos de folhas (24), porém há relatos que com
mais de um século e meio antes do russo, já se usavam a cromatografia embora
com uma conotação diferente. (25) Nesse estudo do botânico russo, a passagem
de éter de petróleo (fase móvel) através de uma coluna de vidro preenchida com
carbonato de cálcio (fase estacionária), à qual se adicionou o extrato, levou à
separação dos componentes em faixas coloridas. (24) Este é provavelmente o
motivo pelo qual a técnica é conhecida como cromatografia (chrom = cor e graphie
= escrita), podendo levar à errônea idéia de que o processo seja dependente da
cor.
Entre os métodos de análise em controle de qualidade, a cromatografia
ocupa um lugar de destaque devido a sua facilidade em efetuar a separação e
auxiliar a identificação e quantificação das espécies químicas, principalmente em
conjunto com outras técnicas de análise. Embora não identifique os compostos
23
separados, pode auxiliar neste processo. Sua maior vantagem consiste na
conservação estrutural dos compostos separados. (26)
Entre os contaminantes e produtos de degradação das estatinas existem
compostos com diferentes toxicidades, portanto, é necessária para uma
determinação mais exata a separação e quantificação individual de cada
composto considerando-se a atividade de cada um deles. (26) As técnicas
cromatográficas se aplicam muito bem a essa finalidade. Concomitantemente, um
grande número de medicamentos apresenta estatinas, contudo o controle desses
compostos tem sido dificultado pela falta de laboratórios preparados para a
realização das análises, mas, principalmente, pela falta de metodologias analíticas
adequadas. A cromatografia em camada delgada (CCD) é um método barato,
rápido e muito eficiente para separação de compostos e atende muito bem as
necessidades analíticas de uma avaliação inicial (screening). (27,28)
A determinação de estatinas, através de técnicas como a cromatografia
líquida de alta eficiência (HPLC) tem sido desenvolvida em função de sua rapidez,
resolução, alta sensibilidade, precisão, exatidão e pela possibilidade de
determinação das diferentes contaminantes de estatinas em uma única corrida
para cada classe desses compostos é sem dúvida uma boa alternativa para
análise quantitativa. (29)
Por outro lado, essa técnica apresenta algumas desvantagens como: (I) o
alto consumo de solventes orgânicos tanto no preparo de amostra como na fase
móvel; (II) as longas corridas cromatográficas, chegando a até 60 minutos em uma
análise de impurezas; (III) a necessidade de extração da amostra para não haver
contaminantes na corrida cromatográfica; (IV) o baixo tempo de vida útil das
24
colunas cromatográficas; (V) o preço das colunas cromatográficas, que se torna
um fator limitante dessa técnica pois para cada tipo de substâncias é necessário
utilizar uma coluna específica e (VI) impossibilidade de determinar compostos
desconhecidos presentes da corrida cromatográfica.
Figura 4: Componentes básicos de um cromatógrafo liquido.
Espectrometria de Massas e Dessorção a Lazer Assistida por Matriz (MALDI-
MSI)
A importância da espectrometria de massas na elucidação estrutural e
testes para avaliação preliminar (screening) para produtos farmacêuticos e
correlatos é inquestionável. (29) Indubitavelmente, os avanços significativos das
técnicas de ionização (“Electrospray”) ESI e recentemente o (“Desorption
Electrospray Ionization ”) DESI e o aumento da sensibilidade dos equipamentos
contribuíram muito para a aplicação da EM. (30) As análises de biomoléculas e
biomarcadores de processos encontradas em perfumes (31), ativos de limpeza
(32), energéticos (33), e matrizes complexas (34) foram facilitadas, sendo a chave
25
da difusão da técnica nos últimos anos. Na ionização por electrospray, as
substâncias da solução analítica são protonadas ou desprotonadas, formando
cátions ou ânions. Esta solução é então nebulizada através de um tubo capilar
onde se aplica uma alta voltagem. Devido a ação deste potencial aplicado no
capilar e dos gases de solvatação e nebulização, o solvente presente nas
gotículas é evaporado restando assim a molécula protonada ou desprotonada na
fase gasosa. Entre as características da ionização por eletrospray, pode-se citar a
baixa energia dos íons formados e a possibilidade da formação de íons
multicarregados (30).
Figura 5. Ionização por MALDI.
Com o avanço de lasers modernos, Ionização e Dessorção a Lazer
Assistida por Matriz (MALDI-MSI) tornou-se um dos métodos de ionização mais
amplamente utilizados devido à sua alta sensibilidade, à velocidade, à faixa de
26
massa molecular ampla (> 300 Da até 200 000 Da) e à resolução espacial.
Ensaios quantitativos por MALDI desenvolvidos para a análise de alta velocidade
de moléculas pequenas tornaram-se bem estabelecidas e podem proporcionar
precisão de qualidade igual ou maior (<5% de desvio padrão relativo, DPR) do que
a sua ionização por electrospray (ESI). Além disso, MALDI tem um intervalo
dinâmico linear de 2 a 3 ordens de magnitude, e estes atributos positivos devem,
ainda, estender a MALDI-MSI. (35)
A espectrometria de massas por Imagem tem sido geralmente considerada
como um método qualitativo com algumas manifestações recentes de análises
quantitativas para pequenas moléculas. (36,37) Fundamentalmente, o sinal
proporcionado pela MSI é uma medição direta do analito em relativa abundância
e, por conseguinte, com a utilização de matrizes adequadas e os padrões internos,
é possível a obtenção de dados quantitativos (38).
O desafio associado à quantificação MALDI-IMS tem sido na determinação
de padrões apropriados, assim como na escolha e deposição homogénea de um
padrão interno na superfície do tecido que pode consistentemente refletir as
alterações na extração de íons e da eficiência de ionização em resoluções em
escala micrométrica (35).
27
2. OBJETIVOS
Objetivo Geral
- Quantificação do insumo farmacêutico ativo de rosuvastatina através da técnica
de espectrometria de massas por imagem (MALDI-MSI).
Objetivos Específicos
- Desenvolver um novo modelo de quantificação de insumos farmacêuticos ativos
através da impregnação de matriz em papel utilizando comprimidos comerciais de
rosuvastatina.
- Realizar a comparação dos resultados com a cromatografia líquida de alta
eficiência (HPLC), a técnica analítica tradicional e validada, com os resultados
encontrados na impregnação de matriz em papel por espectrometria de massas
por imagem.
28
3. METODOLOGIA
Preparação do padrão
Uma solução estoque de padrão de rosuvastatina concentrado foi
empregue para se obter todas as diluições subsequentes utilizados na curva de
calibração. Foi utilizado 98,5 mg de rosuvastatina (96,1% de pureza) em 20 mL de
metanol: acetonitrila (50:50), para alcançar a uma concentração final de 4,733
mg.mL-1.
Preparação de amostra
Um pedaço de papel de filtro quantitativo 80 g / m2 (teor de cinzas nominal:
90 ug) com tamanho de poro de 6 mm foi cortado em tiras de 2,5 x 7,5 cm. Uma
solução matriz de ácido α-ciano-4-hidroxicinâmico (CHCA) foi preparada em
metanol / acetonitrila (50:50) a uma concentração final de 25 mg / mL. As tiras de
papel de filtro foram introduzidas numa câmara de vidro contendo a solução de
matriz na parte inferior e foram deixados para eluir completamente. Amostras de
vinte (20) comprimidos genéricos de um único fabricante de rosuvastatina 10 mg,
foram trituradas e diluídas em metanol / acetonitrila (50:50) e utilizados para
quantificar o teor de rosuvastatina. O padrão de rosuvastatina foi diluído no
mesmo sistema de solventes, em diferentes concentrações (0,12, 0,24, 0,36, 0,48
e 0,6 mg.mL-1, ou seja, 25. 50, 75. 100 e 125%, respectivamente para construir
uma curva de calibração. 2 µL das soluções amostras finais foram aplicadas sobre
as tiras de papel de filtro, em triplicada, e submetidas para análise em
espectrometria de massas após a secagem do solvente.
29
Espectrometria de massas
Os experimentos foram realizados em um instrumento LTQ-XL MALDI
equipado com recursos de imagens. As condições de operação típicas foram: 10
mJ de potência do laser, de 60 µm de tamanho de passo de varredura, tamanho
de amostra de 600 x 600 mm, três disparos de laser por passo e colisão induzida
por energia de dissociação fixado em 40 unidades, utilizando hélio como o gás
tampão para medições em MS / MS. Análises de varredura foram realizadas na
faixa de m / z de 380-600, no modo de íon positivo.
Tratamento dos dados
Resultados espectrais e MS / MS foram analisados utilizando o software
Mass Frontier (v. 6.0, Thermo Scientific, San Jose, CA). Dados de MSI foram
tratados utilizando o software ImageQuest (Thermo Scientific, San Jose, CA); A
quantificação foi realizada usando espectrometria de massas por imagem, onde as
áreas (pixels) das imagens obtidas em escala de cinza foram analisadas utilizando
o software ImageJ (National Institutes of Health - Open Source). Este software
fornece valores arbitrários em relação a de intensidade de pixels: uma cor mais
clara na escala, significa menor quantidade da substância, enquanto uma cor mais
escura significa uma quantidade mais elevada. Os valores arbitrários obtidos pelo
ImageJ foram então utilizados para traçar a curva analítica.
HPLC
30
As análises cromatográficas utilizadas para comparação em um método
validado foram realizadas em um HPLC LaChrom Elite, instrumento Merck Hitachi
equipado com uma coluna de Purospher® Star RP18e 150 x 4.6mm 5µm. Fase
móvel é constituída por uma solução de ácido fórmico 0,05 M e acetonitrila
(65:35). Outros parâmetros foram: Taxa de fluxo fixado em 2,0 mL.min-1; volume
de injeção de 10 µl; temperatura de forno de 35 °C e o detector DAD fixado em λ =
250 nm. As amostras foram diluídas de acordo com o método acima descrito, com
uma filtração através de um filtro de PVDF de 0,45µm. Todos os cálculos da
validação foram realizados utilizando o software Validation Manager (versão
3.40O, VWR International, Alemanha).
31
4. RESULTADOS
32
5.
33
34
35
36
37
38
5. DISCUSSÃO GERAL
Dois principais parâmetros de validação foram testados para verificar a
viabilidade desta aplicação: seletividade e linearidade. O primeiro foi verificado
através da caracterização por espectrometria de massas em “tandem” (MS / MS;
de alta resolução com atribuições de estrutura).
A verificação da linearidade foi realizada através do estabelecimento de
uma curva de calibração usando MSI e cinco pontos com concentrações que
variavam de 0,12-0,6 mg.mL-1. Após a preparação do papel de filtro, extraiu-se 10
mg de rosuvastatina em comprimidos obtidos a partir de um fabricante local e foi
medido utilizando a curva de calibração.
A recuperação observada em MALDI-MSI para a extração de rosuvastatina
em 100% (0,47 mg.mL-1) é 0,465 mg.mL-1 (98,23%). Assim, os resultados obtidos
para linearidade foram considerados validado de acordo com as especificações,
como estavam dentro da faixa de controle de qualidade do produto acabado (teor
deve estar dentro da faixa de 90-110%; HPLC: 99,8% de recuperação.
O uso de papel filtro impregnado de matriz como um suporte para ionização
em MALDI-MSI apresentou provas suficientes para ser considerado um método
eficaz para realizar uma avaliação quantitativa simples e eficaz de APIs. A
estratégia de eluição no papel com uma solução de matriz antes da incorporação
de amostra, elimina os potenciais problemas em relação à homogeneidade, o que
é uma desvantagem considerável na análise de MALDI. É possível observar a
dispersão homogênea da matriz entre as fibras de papel, o que aumenta o
potencial de ionização das moléculas depositadas sobre a tira de papel. Várias
39
vantagens podem ser, portanto, evidenciadas nesta abordagem; a utilização de
papel de filtro, um item barato de laboratório, tem uma gramatura e tamanho de
poro padronizados, bem como uma pequena e controlada quantidade de
impurezas (denominados como "teor de cinzas"), que são características
desejáveis para um suporte analítico. Além disso, utilizando a eluição para saturar
o papel com matriz, é uma estratégia de baixo custo, utilizando pequenas
quantidades de solvente e permitindo uma base homogênea para ionização, o que
é evidenciado pela linearidade observada nos ensaios, para além de uma
abordagem ecológica, com a geração de pequenos resíduos de solvente no
processo. Embora o HPLC é exato e preciso o suficiente, MALDI-MSI oferece uma
ampla faixa de recursos para auxiliar na caracterização e controle de moléculas
orgânicas que são adequados para o controle de APIs; MS / MS (em tandem MS)
surge como uma alternativa melhor e mais confiável para garantir a especificidade,
aumentando a seletividade método. A principal limitação da metodologia, em
comparação com HPLC, é, em termos de precisão e exatidão. Isto pode ser
explicado pelas características da ionização, intrínseca do método; MALDI usa um
laser pulsado para ionizar as moléculas, e a breve interrupção na formação dos
íons e, consequentemente, a detecção, podem influenciar diretamente nos
resultados quantitativos, provocando flutuações indesejadas e, às vezes, os
valores de desvio padrão relativo mais elevados quando comparados com a
abordagem convencional. No entanto, os experimentos evidenciaram que este
fenômeno tem pouca influência sobre os resultados, fornecendo valores que estão
dentro dos limites aceitáveis em todas as concentrações analisadas, de uma
forma muito simples e em curto tempo.
40
6. CONCLUSÃO
A proposta de quantificação de insumos farmacêuticos ativos (IFA) através
da técnica de impregnação de matriz em papel com Espectrometria de Massas por
Imagem se mostrou satisfatória.
Utilizando a nova técnica desenvolvida, foi possível quantificar de forma
simples e eficaz o IFA de rosuvastatina em apresentações comerciais, e
comparado com a técnica tradicional analítica validada de Cromatografia Liquida
de Alta Eficiência (HPLC).
A metodologia desenvolvida apresentou um grande avanço em relação aos
problemas de quantificação por imagem. Houve a eliminação dos potenciais
desvios com a homogeneidade da amostra e matriz.
A utilização dessa técnica na quantificação de insumos farmacêuticos
permite que seja utilizada no controle de qualidade de indústrias farmacêuticas,
nas áreas de controle na determinação da porcentagem do princípio ativo, na
quantificação das impurezas, na determinação da composição ou formulação de
um produto, proporcionando uma análise simples, rápida, especifica, seletiva e
com impactos ambientais reduzidos devido à baixa geração de resíduos de
solventes.
41
7. REFERÊNCIAS
(1) FONSECA, Francisco Antonio Helfenstein. Pharmacokinetics of statins.
Arquivos brasileiros de cardiologia , v. 85, p. 9-14, 2005.
(2) SHITARA, Yoshihisa; SUGIYAMA, Yuichi. Pharmacokinetic and
pharmacodynamic alterations of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A (HMG-
CoA) reductase inhibitors: drug–drug interactions and interindividual differences in
transporter and metabolic enzyme functions. Pharmacology & therapeutics , v.
112, n. 1, p. 71-105, 2006.
(3) World Health Organization, World Health Report, Report of the Director-
General, Geneva,WHO, 1998
(4) SACKS, Frank M. The relative role of low-density lipoprotein cholesterol and
high-density lipoprotein cholesterol in coronary artery disease: evidence from
large-scale statin and fibrate trials. The American journal of cardiology , v. 88, n.
12, p. 14-18, 2001.
(5) BERTOLINI, Stefano et al. Efficacy and safety of atorvastatin compared to
pravastatin in patients with hypercholesterolemia. Atherosclerosis , v. 130, n. 1, p.
191-197, 1997.
(6) LIAO, James K.; LAUFS, Ulrich. Pleiotropic effects of statins. Annual review of
pharmacology and toxicology , v. 45, p. 89, 2005.
(7) BAKRI, Rashed et al. Cerivastatin monotherapy-induced muscle weakness,
rhabdomyolysis and acute renal failure. International journal of cardiology , v.
91, n. 1, p. 107-109, 2003.
42
(8) LANCET, The. The statin wars: why AstraZeneca must retreat. The Lancet , v.
362, n. 9393, p. 1341, 2003.
(9) "FDA Approves New Drug for Lowering Cholesterol". The Food and Drug
Administration. August 12, 2003. Archived from the original on 2005-02-07.
(10) BROOKS, Megan. Top 100 selling drugs of 2013. Medscape Medical News ,
v. 30, 2014.
(11) BRUNTON, Laurence L.; CHABNER, Bruce A.; KNOLLMANN, Björn C. As
Bases Farmacológicas da Terapêutica de Goodman & Gilman-12 . AMGH
Editora, 2012.
(12) NISSEN, Steven E. et al. Effect of very high-intensity statin therapy on
regression of coronary atherosclerosis: the ASTEROID trial. Jama , v. 295, n. 13, p.
1556-1565, 2006.
(13) RIDKER, Paul M. et al. Rosuvastatin to prevent vascular events in men and
women with elevated C-reactive protein. New England Journal of Medicine , v.
359, n. 21, p. 2195, 2008.
(14) EVERETT, Brendan M. et al. Rosuvastatin in the prevention of stroke among
men and women with elevated levels of C-reactive protein Justification for the Use
of Statins in Prevention: An Intervention Trial Evaluating Rosuvastatin (JUPITER).
Circulation , v. 121, n. 1, p. 143-150, 2010.
(15) GENNARO, Alfonso R. Remington, a ciência e a prática da farmácia .
Guanabara Koogan, 2004.
(16) Brasil, Ministério da Saúde, Agência Nacional de Vigilância Sanitária.
Resolução RDC N0 17 de 16 de abril de 2010: Dispõe sobre as Boas Práticas de
Fabricação de Medicamentos. Disponível em: <
43
http://bvsms.saude.gov.br/bvs/saudelegis/anvisa/2010/res0017_16_04_2010.html
> Acesso em: 28 mai 2016.
(17) REICH, Gabriele. Near-infrared spectroscopy and imaging: basic principles
and pharmaceutical applications. Advanced drug delivery reviews , v. 57, n. 8, p.
1109-1143, 2005.
(18) MODHAVE, Dattatray T. et al. Stress degradation studies on lornoxicam using
LC, LC–MS/TOF and LC–MS n. Journal of pharmaceutical and biomedical
analysis , v. 56, n. 3, p. 538-545, 2011.
(19) HAMM, Gregory et al. Quantitative mass spectrometry imaging of propranolol
and olanzapine using tissue extinction calculation as normalization factor. Journal
of proteomics , v. 75, n. 16, p. 4952-4961, 2012.
(20) TRIMPIN, Sarah et al. Automated solvent-free matrix deposition for tissue
imaging by mass spectrometry. Analytical chemistry , v. 82, n. 1, p. 359-367,
2009.
(21) SCHWARTZ, Sarah A.; REYZER, Michelle L.; CAPRIOLI, Richard M. Direct
tissue analysis using matrix‐assisted laser desorption/ionization mass
spectrometry: practical aspects of sample preparation. Journal of Mass
Spectrometry , v. 38, n. 7, p. 699-708, 2003.
(22) BALUYA, Dodge L.; GARRETT, Timothy J.; YOST, Richard A. Automated
MALDI matrix deposition method with inkjet printing for imaging mass
spectrometry. Analytical chemistry , v. 79, n. 17, p. 6862-6867, 2007.
(23) COLLINS, C. H.; BRAGA, G. L.; BONATO, P. S. Princípios básicos de
cromatografia. Introdução a métodos cromatográficos , v. 6, p. 13-19, 1990.
44
(24) TSWETT, Mikhail Semenovich. 0. Innledning. Berichte der Deutschen
botanischen Gesellschaft , v. 24, p. 316-23, 1906.
(25) WILLIAMS, Trevor I.; WEIL, HERBERT. Definition of chromatography. 1952.
(26) RAJU, B. et al. Identification and characterization of stressed degradation
products of prulifloxacin using LC–ESI-MS/Q-TOF, MS n experiments:
development of a validated specific stability-indicating LC–MS method. Journal of
pharmaceutical and biomedical analysis , v. 56, n. 3, p. 560-568, 2011.
(27) STAREK, Małgorzata; KRZEK, Jan; TARSA, Monika. TLC-densitometric
determination of tenoxicam and its degradation products in pharmaceutical
preparations and after hydrolysis in solutions. JPC-Journal of Planar
Chromatography-Modern TLC , v. 24, n. 4, p. 337-343, 2011.
(28) THOMAS, Asha Byju et al. Stability-indicating HPTLC method for
simultaneous determination of nateglinide and metformin hydrochloride in
pharmaceutical dosage form. Saudi Pharmaceutical Journal, v. 19, n. 4, p. 221-
231, 2011.
(29) MARTÍN, Julia et al. Comparison of different extraction methods for the
determination of statin drugs in wastewater and river water by HPLC/Q-TOF-MS.
Talanta , v. 85, n. 1, p. 607-615, 2011.
(30) GILLESPIE, Todd A.; WINGER, Brian E. Mass spectrometry for small
molecule pharmaceutical product development: a review. Mass spectrometry
reviews , v. 30, n. 3, p. 479-490, 2011.
(31) HADDAD, Renato et al. Perfume fingerprinting by easy ambient sonic‐spray
ionization mass spectrometry: nearly instantaneous typification and counterfeit
45
detection. Rapid Communications in Mass Spectrometry , v. 22, n. 22, p. 3662-
3666, 2008.
(32) SARAIVA, Sergio A. et al. Fabric softeners: nearly instantaneous
characterization and quality control of cationic surfactants by easy ambient
sonic‐spray ionization mass spectrometry. Rapid Communications in Mass
Spectrometry , v. 23, n. 3, p. 357-362, 2009.
(33) CATHARINO, Rodrigo R. et al. Fast analysis of taurine in energetic drinks by
electrospray ionization mass spectrometry. Journal of the Brazilian Chemical
Society , v. 22, n. 4, p. 801-806, 2011.
(34) RICCIO, Maria Francesca et al. Easy mass spectrometry for metabolomics
and quality control of vegetable and animal fats. European journal of lipid
science and technology , v. 112, n. 4, p. 434-438, 2010.
(35) KOENIGER, Stormy L. et al. A quantitation method for mass spectrometry
imaging. Rapid Communications in Mass Spectrometry , v. 25, n. 4, p. 503-510,
2011.
(36) SHANTA, Selina Rahman et al. A new combination MALDI matrix for small
molecule analysis: application to imaging mass spectrometry for drugs and
metabolites. Analyst , v. 137, n. 24, p. 5757-5762, 2012.
(37) GOBEY, Jason et al. Characterization and performance of MALDI on a triple
quadrupole mass spectrometer for analysis and quantification of small molecules.
Analytical chemistry , v. 77, n. 17, p. 5643-5654, 2005.
(38) MCDONNELL, Liam.; ANDRÉN, Per. E.; CORTHALS, Garry.L.; "Imaging
mass spectrometry: a user’s guide to a new technique for biological and biomedical
research." Preface. J Proteomics , v. 75, n. 16, p. 4881-2, Aug 2012.
46
8. ANEXOS