Influência da ação oxidante do selênio na indução da ......

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Comissão Nacional de Energia Nuclear – CNEN

Centro de Desenvolvimento da Tecnologia Nuclear – CDTN

Mestrado em Ciência e Tecnologia das Radiações, Materiais e Minerais

Influência da ação oxidante do selênio na indução da radiossensibilidade e morte

celular na levedura Saccharomyces cerevisiae

Bárbara Abranches de Araujo Porto

Belo Horizonte

2012

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Comissão Nacional de Energia Nuclear – CNEN

Centro de Desenvolvimento da Tecnologia Nuclear – CDTN

Mestrado em Ciência e Tecnologia das Radiações, Materiais e Minerais

Influência da ação oxidante do selênio na indução da radiossensibilidade e morte

celular na levedura Saccharomyces cerevisiae

Bárbara Abranches de Araujo Porto

Belo Horizonte

2012

Dissertação de mestrado apresentada ao

Programa de Pós-graduação em Ciência e

Tecnologia das Radiações, Minerais e

Materiais.

Orientadora: Maria José Neves

Co-orientador: Luiz Cláudio Meira Belo

3

CfNff/0 DE DESEIWOLVIMENfO ~ ffCNO(OGVI NVC1.EM

Programa de Pós-Gradua<;ao em Ciencia e Tecnologia das Radia<;éíes, Minerais e Materiais

A presente disserta~o de mestrado, intitulada : "Influencia da a~ao oxidante do selenio na indu~áo da radiosensibilidade e morte celular na levedura Sacc/w romyces cerevisiae", autoria de Bárbara Abranches de Ara ujo Porto, foi defendida e aprovada em 10 de fcvereiro de 2012 pela Banca Examinadora abaixo assinada.

Belo Horizonte, 10 de fevereiro de 2012

Prof. Dr. Lu~ira Belo CDTN - Ca-orientador

V4~~ Prof'. Dra. Raquel 6ouvea dos Santos

CDTN

~~~ Prof. Dr. Flaviano dos Santos Marti ns

UFMG

C"t nl ro dt l>tSt"n••oh•imtnlo da Trrnolo~ia Nurltar o CI>T,~CNEN o ~o de Pós-Gradua~o. SECI'OS Av. Pres. AniOnio Carlos, 6.627 • Cídade Un1vcrs11ána. Pampulha o C.aixa Poslal 941 o CEP 30161°970 - 1311/MG /lonrt pogt: www cdlo.br o E-nrml: [l\1cdlo(il cdto.l>r o l'ooe fax: (03 1) 3069-3356

4

AGRADECIMENTOS

Agradeço a Deus por mais esta conquista. Aos meus pais pelo amor, por

sempre me apoiarem e acreditarem nos meus sonhos. A minha avó pelo carinho,

apoio e dedicação. Aos meus irmãos, Lívia e Felipe, pela amizade e por serem

pessoas com quem sempre pude contar nas etapas mais importantes da minha

vida.

À Mazé, por acreditar em mim desde a iniciação científica, e me dar asas

para ser quem sou hoje.

À Lu, por me ensinar tudo, por me ajudar sempre, e pelo apoio constante.

Aos meus grandes parceiros Fred e Dani não só de laboratório mas, de todas as

horas. Obrigada pela bela amizade! Vocês fizeram desse trabalho NOSSO!

Ao Leandro pelo amor e carinho, e por ter me ajudado a construir cada

pedacinho desse projeto com seus ensinamentos estatísticos, físicos,

matemáticos e sua dedicação aos meus sonhos!

A todos os amigos do laboratório de Radiobiologia, Pryscila, Marcella,

Thaíssa, Paulo, Nino, Tetê, Cris, Ieda, Lorrana, Camilinha, Lucilene, Caiubi,

Mara, e Priscila. Por terem me ensinado muito e me alegrado bastante!

Aos amigos do CDTN, Romário, Wagner, Nelson, Virgínia, Nívea,

Geraldinho, Bruno, Anayve, Alessandra e todos aqueles que sempre me

apoiaram.

Aos meus colegas e amigos de mestrado, que fizeram toda a diferença! E

um especial agradecimento aos meus professores honorários, Anderson, Diego,

Tadeu e Marcio, por me ajudarem a vencer a Física com suas aulas pós-aulas! A

todos da secretaria de pós graduação pelo apoio e aos professores.

À Maria Ângela e Ângela Amaral com sua atenção e carinho e pelas

análises! A todos do reator e Laboratório de Ativação Neutrônica do CDTN. Aos

amigos do LIG, Timóteo, Perpetua e todos os que me ajudaram com muita

dedicação.

Ao Luiz Cláudio por ter me recebido com tanto apreço no laboratório de

dosimetria química, a Luana por ter me ensinado tantas coisas de dosimetria e ao

Júlio por ter me ajudado sempre.

À CNEN pela bolsa de mestrado, e ao CDTN pelo apoio financeiro ao

projeto.

5

“A diferença entre um remédio e um veneno está só na dosagem”.

(Paracelso – Médico e físico do séc. XVI).

6

RESUMO

As radiações ionizantes são provenientes tanto de fontes naturais como de fontes

antropogênicas. A radioterapia emergiu como uma das terapias mais comuns no

combate ao câncer. Irradiadores de Co-60 (aceleradores lineares de cobalto- 60) são

usados para tratamento de tumores malignos rotineiramente em hospitais de todo o

mundo. Exposições às radiações ionizantes podem induzir alterações nas

macromoléculas celulares e afetar suas funções, pois causam radiólise da molécula de

água gerando espécies reativas do oxigênio, que podem causar danos a praticamente

todas as organelas e constituintes da célula, conhecidos como danos oxidativos, que

podem culminar no estresse oxidativo. O estresse oxidativo é a situação na qual foi

rompido o equilíbrio entre oxidantes e antioxidantes, com excessiva produção de

espécies reativas, não acompanhada do aumento da capacidade antioxidante,

inviabilizando assim, a neutralização das mesmas. O selênio é um micronutriente

considerado antioxidante e antiinflamatório, que poderia prevenir o câncer. No sistema

biológico o selênio existe na forma de selenoproteínas. Até o presente momento, 25

selenoproteinas humanas já foram identificadas, entre elas a enzima Glutationa

peroxidase, uma enzima antioxidante. Leveduras têm a capacidade de incorporar

diversos metais tais como ferro, cádmio, zinco e selênio, assim como todos os

organismos biológicos. A levedura Saccharomyces cerevisiae, ao contrário das células

de mamíferos é desprovida de selenoproteínas, sendo considerada como um modelo

prático para estudos de toxicidade do selênio, sem qualquer interferência do

metabolismo de selenoproteínas. Além disso, células de leveduras proliferam-se por

meio de da fermentação, o equivalente microbiano da glicólise aeróbia em mamíferos

que é o processo utilizado por tumores. Vários relatos mostram que os efeitos pró-

oxidantes e tóxicos induzidos por compostos de selênio ocorrem em doses mais baixas

em células malignas quando comparadas às células normais dando ao selênio um grande

potencial terapêutico no tratamento do câncer. Nosso objetivo foi verificar se o selênio

desempenha função radiossenbilizadora em células de levedura ao serem desafiadas

com radiação ionizante (60

Co) . Para isso foi avaliado se o selênio causa danos

oxidativos para a célula e morte celular. Em seguida foi avaliado se ocorre diferença nos

danos oxidativos após as células serem tratadas com selênio e irradiação gama. Nossos

resultados demonstraram que o selênio exerce função radiossensibilizadora e tem papel

oxidante nas células de levedura.

7

ABSTRACT

Ionizing radiations are from both natural sources such as from anthropogenic

sources. Recently, radiotherapy has emerged as one of the most common therapies

against cancer. Co-60 irradiators (cobalt-60 linear accelerators) are used to treat of

malignant tumors routinely in hospitals around the world. Exposure to ionizing

radiation can induce changes in cellular macromolecules and affect its

functions, because they cause radiolysis of the water molecule generating reactive

oxygen species, which can cause damage to virtually all organelles and cell

components known as oxidative damage that can culminate in oxidative stress.

Oxidative stress is a situation in which the balance between oxidants and antioxidants is

broken resulting in excessive production of reactive species, it is not accompanied by

the increase in antioxidant capacity, making it impossible to neutralize them. Selenium

is a micronutrient considered as antioxidant, antiinflammatory, which could prevent

cancer. Selenium in biological system exists as selenoproteins.

Nowdays, 25 human selenoproteins have been identified, including glutathione

peroxidase, an antioxidant enzyme. Yeasts have the ability to incorporate various

metals such as iron, cadmium, zinc and selenium, as well as all biological organisms.

The yeast Saccharomyces cerevisiae, unlike mammalian cells is devoid of

selenoproteins, being considered as a practical model for studies on the toxicity of

selenium, without any interference from the metabolism of selenoproteins.

Moreover, yeast cells proliferate through the fermentation, the microbial equivalent of

aerobic glycolysis in mammals and the process is also used by tumors. Several

reports show that the pro-oxidante effects and induced toxic selenium compounds

occur at lower doses and in malignant cells compared with benign cells. Therefore

selenium giving a great therapeutic potential in cancer treatment .Our objective was

to determine whether selenium is capable to sensitize yeasts cells when they

are challenged with ionizing radiation produced by 60

Co. For this, we assessed whether

selenium causes oxidative damage to cell and cell death. After that, we assessed

whether differences in the oxidative damage occurs after the cells be treated with

selenium and gama irradiation. Our results showed that selenium has a rdiosensitizing

function playing a oxidant role in yeast cell.

8

LISTA DE FIGURAS

FIGURA 01. Estrutura química da floxina B....................................................... 44

FIGURA 02. Fórmula química e reação do reagente de ellman (5-5´dithio-bis 2-ácido-

nitrobenzoico DTNB)..................................................................................................... 46

FIGURA 03. Esquema mostrando a oxidação da sonda fluorescente 2,7-

diclorodihidrofluoresceína diacetato............................................................................. 47

FIGURA 04. Curva de crescimento de células da levedura S. cerevisiae, em diferentes

concentrações de selenito de sódio durante 24 horas ....................................................54

FIGURA 05. Crescimento da levedura S. cerevisiae BY4741 em placa contendo

selenito de sódio em diferentes

concentrações...................................................................................................................55

FIGURA 06. Capacidade de formação de colônias após incubação por tempos

crescentes na presença de 0,1 e 0,25 mM de selênio de

sódio.................................................................................................................................57

FIGURA 07. Determinação da incorporação de selênio após 24 horas de

incubação........................................................................................................................ 59

Figura 08. Determinação da incorporação de selênio após 24 horas de incubação e

determinação do selênio dessorvido após 24 horas de

incubação.........................................................................................................................60

FIGURA 09. Determinação de potássio após 24 horas de incorporação de selenito de

sódio pela linhagem de levedura

BY4741............................................................................................................................61

9

FIGURA 10. Determinação da peroxidação lipídica após incorporação por 24 horas de

selenito de sódio em diferentes concentrações de selênio...............................................62

FIGURA 11. Determinação de Resíduos sulfidrílicos totais após a incubação com

selenito de sódio..............................................................................................................63

FIGURA 12. Formação de radicais livres na linhagem

BY4741............................................................................................................................64

FIGURA 13. (A) Crescimento da levedura S. cerevisiae na presença de selenito de

sódio em meio com glicose, durante 24 horas, (B) crescimento da levedura S. cerevisiae

na presença de selenito de sódio em meio com glicerol, durante 24

horas.........................................................................................................................69

FIGURA 14. Fração de células sobreviventes após a irradiação gama..........................70

FIGURA 15. Determinação da peroxidação de lipídios após irradiação gama em células

pré-tratadas com selenito de sódio........................................................................71

FIGURA 16. Determinação dos Resíduos sulfidrílicos totais após irradiação gama e

tratamento com selenito de sódio...................................................................................73

FIGURA 17. Análise da formação de radicais livres na linhagem

BY4741............................................................................................................................75

10

LISTA DE TABELAS

TABELA 1. Ingestão de selênio recomendada para adultos de acordo com a localização

geográfica (µg/dia)..........................................................................................................28

TABELA 2. Análise da viabilidade celular pela porcentagem de células coradas por

floxina B na linhagem BY4741.......................................................................................58

TABELA 3. Marcação com Laranja de Acridina e Brometo de Etídeo em células da

linhagem BY4741 tratadas por 24 horas com selenito de sódio para avaliação do tipo de

morte celular....................................................................................................................66

TABELA 4. Tratamento com DAPI – Porcentagem de células com cromatina

condensada.......................................................................................................................67

11

LISTA DE SÍMBOLOS

ºC – graus celcius

Ca+ - cálcio

Cd- Cadmio

CDC48 - gene que codifica uma proteína associada à degradação de retículo

endoplasmático em vesículas

Ci - Curie

60Co – isótopo cobalto 60

-gama

GLR1 - gene que codifica a enzima glutationa redutase

his3Δ1- histidina deletada

H2O2 – peróxido de hidrogênio

H2Se- selenido

H+ - hidrogênio

K+ - potássio

leu2Δ0 – leucina deletada

met15Δ0 – metionina deletada

MATa- mating type

mM - milimolar

mg- miligramas

µg – micrograma

mL – mililitros

L – microlitros

mm – milímetros

moles - micromoles

Na+- sódio

n - neutron

nm - nanometros

O2- oxigênio

O2● – anion superoxido

OH - radical hidrolxila

rho0- ausência de DNA mitocondrial

12

RAD6- gene que controla o reparo do DNA

RAD9 – gene que controla o dano ao DNA no ciclo celular

RAD18 – gene que controla o reparo do dano no DNA

rpm – rotações por minuto

Se – selênio

75 Se - isótopo selênio 75

SeO32-

- selenito

SOP1- gene responsável pela tolerância ao sódio

TBq – Tera Bequerel

TRR1- gene que codifica a enzima tiorredoxina redutase

ura3Δ0 –uracila deletada

v/v – volume por volume

w/v – peso por volume

YAP1 - gene que codifica para o fator de transcrição indutor da apoptose

13

LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS

ATP – adenosina trifosfato

ATPS - sulfato de adenilil transferase

Caspase - do inglês cysteine-aspartic-acid-proteases

CAT- catalase

CDTN - Centro de Desenvolvimento da Tecnologia Nuclear

CNEN - Comissão Nacional de Energia Nuclear

DAPI - do inglês Diamidine phenindole dihydrocloride

DCFH-DA - diclorodihidrofluoresceína diacetato

DNA- ácido desoxirribonucleico

DSBs - quebra de fitas duplas

DTNB - 5-5´dithio-bis 2-ácido-nitrobenzoic

GPx - glutationa peroxidase

GR - glutationa redutase

GRXs - Glutarredoxinas

Grx1- glutarredoxina 1

Grx2 - glutarredoxina 2


Grx4- glutarredoxina 4


GSH - glutationa reduzida

GSSG- glutationa oxidada

GTS - glutationa S-tranferase

IPEN - Instituto de Pesquisas Energéticas e Nucleares

LET - do inglês Linear Energy Transference

LIG - Laboratório de Irradiação Gama

MCP -morte celular programada

MDA – malondialdeído

MHMR - microhomologia mediada por recombinação

NADH - nicotinamida adenina dinucleotídeo

NR - do inglês Nutrient Requirement

PBS - do inglês Phosphate buffered saline

pH - potencial hidrogeniônico

14

PRI - do inglês Population Reference Intake

RDA - do inglês Recommended Dietary Allowance

RNI - do inglês Reference Nutrient Intake

ROS - do inglês Reactive Oxigen Species

Sec – selenocisteína

SeMet – Selenometionina

SOD - superóxido dismutase

SSBs - quebra de fitas simples

TBARS - do inglês Thiobarbituric Acid Reactive Species

TCA - ácido tricloroacético

UV- ultra-violeta

YNB - do inglês Yeast Nitrogen Base with aminoacids

YPG – do inglês Yeast Peptone Glucose

15

SUMÁRIO

1- INTRODUÇÃO ................................................................................................. 18

2- REVISÃO BIBLIOGRÁFICA.......................................................................... 20

2.1- Radiação ionizante ......................................................................................... 20

2.2- Espécies reativas de oxigênio e estresse oxidativo ......................................... 24

2.3- Selênio ............................................................................................................. 26

2.4- Leveduras e selênio ........................................................................................ 30

2.5- Selênio e câncer .............................................................................................. 32

2.6- Morte celular em leveduras ........................................................................... 33

2.7- Leveduras e câncer ......................................................................................... 35

3- JUSTIFICATIVA .............................................................................................. 37

4- OBJETIVOS ...................................................................................................... 38

4.1- Objetivo geral ................................................................................................. 38

4.1.1- Objetivos específicos 1........................................................................ 38

4.1.2- Objetivos específicos 2........................................................................ 38

5- METODOLOGIA ................................................................................................. 40

5.1- Organismo experimental................................................................................ 40

5.2- Meios de cultura ............................................................................................. 40

5.3- Solução de selenito de sódio ........................................................................... 40

5.4- Avaliação do crescimento celular .................................................................. 40

5.5- Avaliação da tolerância ao selênio em meio sólido suplementado com

selenito de sódio ..................................................................................................... 41

5.6- Tratamento das células com selenito de sódio ............................................... 41

5.7- Influencia das concentrações crescentes de selenito de sódio na quantidade

de selênio incorporado pelas células ..................................................................... 42

5.8- Determinação da Incorporação e dessorção de selênio e concentração de

potássio .................................................................................................................. 42

5.9- Determinação do selênio presente na célula .................................................. 43

5.10- Análise da viabilidade celular ...................................................................... 44

5.11- Análise da atividade metabólica com uso da Floxina B .............................. 44

5.13- Determinação da quantidade de lipídios peroxidados ................................ 45

5.14- Determinação de resíduos Sulfidrílicos Totais ............................................ 46

5.15- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio ............................... 47

5.16- Dosagem de proteínas .................................................................................. 48

16

5.17- Avaliação das alterações nucleares via coloração com DAPI ..................... 48

5.18- Avaliação das alterações nucleares por meio da coloração com Laranja de

Acridina/Brometo de Etídio .................................................................................. 49

5.19- Atividade mitocondrial ................................................................................ 49

5.20- Avaliação da interação do selênio com a irradiação gama e seu efeito nas

células da levedura Saccharomyces cerevisiae BY4741 ........................................ 50

5.20.1- Irradiação das células com cobalto Co60 .............................................. 50

5.20.2 Determinação da viabilidade de células após irradiação gama ................. 50

5.20.3 Irradiação de células tratadas com selenito de sódio ............................... 51

5.20.4- Dosimetria Fricke ............................................................................. 51

5.20.5 Preparo da solução Fricke ................................................................... 53

5.20.6 Análises químicas para determinação de íons Fe2+

e Fe3+

dos dosímetros

Fricke ......................................................................................................... 53

5.21- Análise estatística ......................................................................................... 54

5.22- Descarte de Rejeitos ..................................................................................... 54

6. RESULTADOS E DISCUSSÃO ........................................................................... 55

6.1- Curva de crescimento.................................................................................... 55

6.2- Tolerância ao selenito de sódio ...................................................................... 56

6.3- Análise da viabilidade celular ........................................................................ 57

6.4- Análise da atividade metabólica com uso da Floxina B ................................ 58

6.5- Determinação do selênio incorporado pela levedura .................................... 59

6.6- Determinação da quantidade de potássio após incorporação de selênio ...... 61

6.7- Determinação da quantidade de lipídios peroxidados .................................. 62

6.8- Resíduos Sulfidrílicos Totais .......................................................................... 63

6.9- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio ................................. 64

6.10- Determinação do tipo de morte celular ....................................................... 65

6.11- Avaliação das alterações nucleares via coloração com DAPI ..................... 67

6.12- Atividade mitocondrial ................................................................................ 68

6.13- Viabilidade de células após irradiação gama .............................................. 70

6.14 - Peroxidação de lipídios após irradiação gama ........................................... 71

6.16- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio após tratamento com

selenito de sódio e radiação gama. ........................................................................ 74

7- CONCLUSÃO....................................................................................................... 77

8- REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................................. 80

17

ANEXO I ................................................................................................................... 91

ANEXO II ................................................................................................................. 95

18

1- INTRODUÇÃO

As células quando expostas à radiação sofrem ação de fenômenos físicos,

químicos e biológicos. Os fenômenos físicos são: ionização e excitação dos átomos.

Quando a radiação cede a uma molécula certa quantidade de energia, esta energia pode

ser suficiente para arrancar um elétron orbital e conferir-lhe energia cinética,

provocando assim a ionização (MARTINEZ et al., 1997). A radiação ionizante induz a

morte celular como resultado da interação de radicais livres com o DNA, mitocôndria,

membranas e proteínas celulares. Nos organismos biológicos, a radiação ionizante

incidente leva à radiólise da molécula de água formando espécies altamente reativas

conhecidas como radicais livres ou, espécies reativas do oxigênio (LEONARDUZZI et

al., 2000).

As ROS “Reactive Oxygen Species”, ou espécies reativas do oxigênio são

conhecidas por desempenharem um duplo papel: agem tanto tendo efeito positivo

(benéfico) como negativo (danoso). Este papel dual que caracteriza as ROS pode ser

observado em vários estudos que indicam que ROS agem como mensageiro secundário

nas cascatas de sinalização intracelular que induzem e mantém o fenótipo oncogênico

das células cancerígenas como, também, as ROS podem induzir a senescência e a

apoptose e assim, funcionar como espécies anti carcinogênicas. Os aspectos benéficos

da geração de espécies reativas do oxigênio são bem observados na destruição de

patógenos pelo hospedeiro, ou no envolvimento com a ativação da resposta celular e

aquisição de tolerância contra um eventual estresse oxidativo severo. Os efeitos nocivos

são produzidos pela interação potencialmente mutagênica no DNA, ou a destruição de

proteínas e lipídeos, acarretando alterações bioquímicas que levam a danos importantes

e, eventualmente, a morte celular (MAITY et al., 1994).

A interação dos radicais livres com o DNA resulta em danos à sua estrutura que

levarão à quebras de uma única fita, ou mesmo à quebra de fita dupla. Estas quebras

levam à parada do ciclo celular e ao recrutamento de enzimas de reparo do DNA para os

sítios danificados (HWANG & MUSCHEL, 1998). Além dos danos da radiação ao

DNA, acredita-se que outro alvo importante seja a membrana citoplasmática das

organelas, e as membranas plasmáticas das células. O dano oxidativo às membranas é

normalmente mediado pela degradação de fosfolipídeos, que são os maiores

constituintes das membranas plasmáticas. As ROS produzidas pela radiação ionizante

produzem uma rápida peroxidação de lipídeos da membrana com consequente alteração

19

na bicamada lipídica. As alterações na bicamada lipídica afetam a permeabilidade e

fluidez das membranas causando modificações estruturais e funcionais das mesmas

(MAITY et al., 1994). Para bloquear a ação das ROS, os organismos possuem as

defesas antioxidantes (que podem ser defesas enzimáticas ou não enzimáticas). A

principal defesa antioxidante não enzimática é o tripeptídeo glutationa, evidenciado

pelas altas concentrações nos mais diversos organismos como a levedura

Saccharomyces cerevisiae (ZECHMANN et al., 2011). Oxidantes resultantes de

alterações lipídicas como hidroperóxidos lipídicos ou peróxidos de oxigênio podem

sofrer a ação da enzima glutationa peroxidase que os reduzem a álcoois ou água. Em

mamíferos, a enzima glutationa peroxidase, tem o selênio como um componente

essencial do centro catalítico (COMBS & GRAY, 1998).

O selênio é um elemento traço universal para todos os mamíferos e é muito

importante para vários processos celulares, sendo assimilado pelos mamíferos pela

dieta. O efeito do selênio é estritamente concentração dependente, com propriedades

antioxidantes nos teores baixos a moderados (40-55 µg/dia), principalmente porque ele

é um constituinte do centro ativo de várias enzimas antioxidantes. Nas concentrações

supranutricionais, os compostos de selênio inibem o crescimento celular e tem efeitos

pró-oxidantes (OLM et al., 2009). Concentrações de 3200 µg/dia, principalmente de

formas inorgânicas de compostos de selênio, por exemplo, selenito (SeO32-

), levam à

toxicidade aguda devido à quebra da fita de DNA. Vários relatos mostram que os efeitos

pró-oxidantes e tóxicos induzidos por compostos de selênio ocorrem em concentrações

mais baixas em células malignas (1mM) quando comparadas com células benignas (>

500 mM), dando ao selênio um grande potencial terapêutico no tratamento do câncer

(MENTER et al., 2000; GHOSE et al., 2001).

Para este trabalho, foi utilizado como modelo experimental a levedura

Saccharomyces cerevisiae, que é desprovida de selenoproteínas, em contraste com os

humanos que possuem 25 selenoproteinas (KRYUKOV et al., 2003), sendo considerada

como um modelo prático para estudos de toxicidade do selênio, sem qualquer

interferência do metabolismo de selenoproteínas (OLM et al., 2009). Além disso,

células de leveduras proliferam-se preferencialmente pela fermentação, o equivalente

microbiano da glicólise aeróbia em mamíferos, processo no qual a glicose é

preferencialmente fermentada, mesmo quando o oxigênio é abundante para suportar

fosforilação oxidativa mitocondrial (RUCKENSTUHL et al., 2009).

20

2- REVISÃO BIBLIOGRÁFICA

2.1- Radiação ionizante

Todos os seres vivos estão expostos as radiações ionizantes ou não ionizantes,

sendo as ionizantes mais nocivas aos organismos biológicos. São provenientes tanto de

fontes naturais (ex. raios cósmicos) como por fontes antropogênicas (ex. diagnósticos

médicos). Exposições às radiações ionizantes podem induzir alterações nas

macromoléculas celulares e afetar suas funções (DEVIPRIYA et al., 2008).

Atualmente, a radiação ionizante vem sendo usada para beneficiar a humanidade

de várias maneiras, tornando-se um componente vital da medicina moderna sendo usada

em um largo número de diagnósticos e aplicações terapêuticas. Também é usada para a

geração de energia núcleo-elétrica e possui várias aplicações industriais onde se destaca

a irradiação de alimentos que aumenta significativamente o tempo de conservação e

armazenamento de alimentos (AUSTERLITZ et al., 2006).

A radioterapia emergiu como uma das terapias mais comuns no combate ao

câncer. Irradiadores de Co-60 (aceleradores lineares de cobalto 60) são usados para

tratamento de tumores malignos rotineiramente em hospitais de todo o mundo

(AUSTERLITZ et al., 2006). Eles também podem ser usados para uma grande

variedade de pesquisa em diversas áreas, tais como, irradiação de alimentos, geologia,

efeitos da radiação em sistemas biológicos, esterilização de organismos e solos,

mudanças e melhorias nas propriedades de polímeros, dentre outros (RODRIGUES et

al., 2010). Contudo, a radiação ionizante, empregada na terapia contra o câncer, não é

seletiva em sua ação, afetando tanto a célula tumoral quanto a célula normal (DE &

DEVASAGAYAM, 2011).

Em contraste com substâncias químicas, a radiação penetra em todas as células

indiscriminadamente sem relação com os processos da membrana celular tais como:

receptores, transportadores ou canais. Embora a energia da radiação ionizante seja

depositada aleatoriamente dentro da matéria, a distribuição da dose depende da fonte da

energia da radiação e do meio irradiado. A radiação gama é uma radiação ionizante de

alto LET (do inglês: Linear Transference Energy ou, Transferência linear de energia).

Este tipo de radiação, em geral, deposita maior quantidade de energia por unidade de

21

comprimento no meio em que atravessam, portanto, podem causar mais danos que a

radiação de baixo LET (BLOOMER & ADELSTEIN, 1982).

A radiação ionizante induz a morte celular como resultado da interação de

radicais livres com DNA, mitocôndria, membranas e proteínas celulares. As células

quando expostas à radiação sofrem ação de fenômenos físicos, químicos e biológicos.

Os fenômenos físicos que intervêm são: ionização e excitação dos átomos. Quando a

radiação cede a uma molécula certa quantidade de energia, esta energia pode ser

suficiente para arrancar um elétron orbital e conferir-lhe energia cinética, provocando

assim a ionização (MARTINEZ et al., 1997).

Em outros casos a radiação não tem energia suficiente para provocar ionização,

mas o elétron absorve energia suficiente para mudar de nível energético, acarretando a

excitação ou ativação. Existem situações em que a energia cedida pela radiação é muito

baixa, suficiente apenas para aumentar a velocidade de rotação, translação ou, de

vibração da molécula. Os fenômenos físicos são responsáveis pelo compartilhamento da

energia da radiação entre as células (MARTINEZ et al., 1997).

Os efeitos biológicos caracterizam-se pelas alterações em certas funções

essenciais ou, a morte imediata da célula. Funções metabólicas podem ser modificadas

e a célula perde a capacidade de sintetizar componentes necessários à sua sobrevivência

(OLIVE, 1998). Uma quebra dupla da fita do DNA (DSB ou, “Double Strand Break”) é

sem dúvida uma das lesões mais deletérias. No entanto, apesar de DSBs aparecerem

com menor frequência que lesões de quebra simples da fita do DNA (SSB ou, ‘Single

Strand Break”), elas são potencialmente mais significativas. As duas lesões também

surgem seguidas de exposição à radiação ionizante (DE & DEVASAGAYAM, 2011).

Fungos, especialmente os que contêm altos teores de melanina, respondem a

radiação ionizante de uma maneira diferente das outras formas de vida. Em geral, são

altamente radiorresisitentes quando submetidos a altas doses de radiação ionizante em

condições experimentais. Este fato fez surgir a hipótese de que as propriedades

radioprotetoras da melanina em microrganismos resultou de uma combinação de

blindagem física e extinção de radicais livres citotóxicos. Avanços sobre os efeitos

genéticos da radiação ionizante em fungos foram obtidos de estudos envolvendo S.

cerevisiae (DADACHOVA & CASADEVALL, 2008).

Análises de microarray em leveduras revelaram que tanto exposições aos raios-

X quanto aos raios gama diminuem a expressão de genes relacionados ao ciclo celular e

processamento de DNA, o que resulta em diminuição da defesa da célula, que acarreta

22

danos a proteínas, falhas celulares e interferências no metabolismo. Da mesma forma,

em ambos os tipos de radiação, ocorre também diminuição da regulação da maioria dos

genes de transcrição e síntese de proteínas, diminuição do ciclo celular e do

processamento de DNA, além da diminuição do controle da organização celular, e no

metabolismo de carboidratos (KIMURA et al., 2006).

Benett e colaboradores investigaram os genes de S. cerevisiae envolvidos na

resistência a radiação ionizante e mostraram que muitos desses genes são responsáveis

por importantes funções de reparo (RAD50, RAD51), recombinação (HRP1),

estabilidade cromossômica (CHL1, CTF4), endocitose (VID21), degradação da

ubiquitinona (GRR1), transcrição (BUR2), dentre outros.

Curiosamente, muitos genes que interferem na resistência à radiação

compartilham homologia com genes humanos que podem ser explorados para o

desenvolvimento de novas terapias de câncer. Radiações ionizantes geram quebra de

fitas simples (SSBs), quebra de fitas duplas (DSBs) e à correção dos danos as bases e

quebras pode ser realizada por dois mecanismos: recombinação homóloga e

recombinação não homóloga (DERBYSHIRE et al., 1994).

Estudos sobre recombinação MHMR (microhomologia mediada por

recombinação) em S. cerevisiae irradiada a 50 Gy com raios gama, mostraram grande

indução de DSB que acarretaram rearranjos genômicos de larga escala, finalizando com

uma invasão de um genoma de outro local, levando a hipótese de que indução de

MHMR pode ter sido o mecanismo que levou à evolução adaptativa em eucariotos

(CHAN et al., 2007).

Os fenômenos biológicos da radiação são tanto uma consequência dos

fenômenos físicos quanto químicos. Assim, a radiação causa ionização dos átomos, que

afeta moléculas, que poderão afetar células. As células dos organismos biológicos

possuem grande quantidade de água em sua constituição (estima-se que cerca de 70%

dos constituintes sejam formados de água) e a radiação ionizante incidente leva à

radiólise da molécula de água formando espécies altamente reativas conhecidas como

radicais livres ou, espécies reativas do oxigênio (LEONARDUZZI et al., 2000).

A interação dos radicais livres com o DNA resulta em danos à sua estrutura que

levarão a quebras de uma única fita, ou mesmo quebras de fitas duplas. Estas quebras

levam à parada do ciclo celular e ao recrutamento de enzimas de reparo do DNA para os

sítios danificados (HWANG & MUSCHEL, 1998).

23

Além dos danos da radiação ao DNA, acredita-se que outro alvo importante seja

a membrana citoplasmática das organelas e, a membrana plasmática da célula. O dano

oxidativo às membranas é normalmente mediado pela degradação de fosfolipídeos, que

são os maiores constituintes das membranas plasmáticas (CORRE et al., 2010).

A fluidez da membrana plasmática e sua permeabilidade são diretamente

afetadas pelos danos induzidos pela radiação ionizante. Peroxidação e fragmentação de

lipídios representam as principais modificações observadas após exposição a radiação

ionizante. A fragmentação aparece tanto na seção hidrofílica quanto na hidrofóbica dos

lipídios. O aumento da peroxidação de lipídios, nas primeiras horas após a exposição à

radiação, é um processo de degradação de lipídios que afeta muitos ácidos graxos

poliinsaturados, principalmente por fragmentação de seu componente polar, com

consequente perda da função de barreira da membrana, que é critica para a integridade

celular (CORRE et al., 2010).

As ROS geradas pela radiação ionizante produzem uma rápida peroxidação de

lipídeos da membrana com consequente alteração na bicamada lipídica. As alterações na

bicamada lipídica afetam a permeabilidade e fluidez das membranas causando

modificações estruturais e funcionais das mesmas (MAITY et al., 1994). A homeostase

iônica é de fundamental importância para a manutenção dos principais mecanismos

fisiológicos e, consequentemente, para a viabilidade celular. As concentrações de H+,

Ca+, K

+ e Na

+ são altamente reguladas. Os íons Na

+ e K

+ estão envolvidos em

importantes processos e atividades em sistemas celulares, enquanto altas concentrações

de Na+ são tóxicas para a célula (RODRÍGUEZ-NAVARRO, 2000; ARIÑO et al.,

2010).

O potássio é o cátion mais abundante em S. cerevisiae, e está envolvido em

várias funções celulares tais como: regulação de volume celular, pH intracelular,

manutenção do potencial através da membrana plasmática, compensação de cargas

negativas presentes em várias macromoléculas, síntese de proteína e ativação de

enzimas (Sychrová, 2004; Yenush et al., 2005; ARIÑO et al., 2010). A concentração de

K+ no citoplasma é de aproximadamente 200-300 mM, dependendo da linhagem e das

condições de crescimento (NAVARRETE et al., 2010).

A manutenção desta alta concentração de K+ intracelular é feita graças ao

transporte de K+

que ocorre contra um gradiente de concentração. Existem vários

sistemas envolvidos na translocação do K+

celular, incluindo: transporte ativo via

permeases, co-transporte com prótons via H+-ATPase e transporte passivo de K

+ via

24

canais iônicos. Os transportadores de K+ além do influxo, também participam do efluxo

de K+. A concentração intracelular de K

+ resultante se deve ao balanço entre o influxo e

o efluxo (WALKER, 1998).

2.2- Espécies reativas de oxigênio e estresse oxidativo

A evolução dos organismos que usam a molécula de oxigênio como um aceptor

final de elétrons para a respiração (organismos aeróbios) deu origem a um paradoxo. De

um lado, a respiração aeróbia propicia maior ganho energético quando comparada à

respiração anaeróbia, conferindo a esses organismos maior vantagem competitiva. Por

outro lado, a redução do O2 a H2O, leva a uma gradual formação de espécies reativas de

oxigênio intermediárias tais como, radical superóxido (O2•_), peróxido de hidrogênio

(H2O2) e radical hidroxila (OH•). Na presença de luz, mediadores –fotossensíveis

produzem reações que podem formar o oxigênio singlet (1O2) (SCANDALIOS, 2007).

O oxigênio molecular (O2) pode ser tóxico para os organismos aeróbios. Durante

a respiração, o O2 é progressivamente reduzido a duas moléculas de água que ocorre por

um processo univalente seqüencial que requer quatro elétrons. No entanto, a redução

incompleta dá origem à formação de espécies químicas que são potencialmente

oxidantes, tais como, O2-

(anion superóxido), H2O2 (peróxido de hidrogênio), OH

(radical hidroxila) (LI et al., 2009). A concentração fisiológica de OH in vivo é quase

zero, provavelmente devido a sua alta reatividade. Este radical reage rapidamente,

quase que imediatamente a sua formação, com vários tipos de moléculas, açúcares,

aminoácidos, fosfolipídios, bases do DNA e ácidos orgânicos. Ele também pode ser

gerado pela reação de Fenton a partir do H2O2 na presença de metais de transição. O

O2-

comparado com OH, é menos reativo com espécies não radicais e soluções

aquosas, mas reage rapidamente com outros radicais podendo também reagir com

compostos carregados positivamente e oxidar compostos capazes de doar H+. O anion

superóxido produzido pode ser reduzido a peróxido de hidrogênio via enzima

superóxido dismutase (HALLIWELL & GUTTERIDGE, 2007).

O H2O2 é considerado a espécie menos reativa em relação aos outros, no entanto

é um bom agente redutor. Enzimas que podem gerar H2O2 in vivo incluem a xantina,

urato e aminoácidos oxidases. Em adição, em qualquer sistema biológico que gera O2-

,

25

ocorre produção de H2O2 por dismutação. Ele também parece ser capaz de inativar

algumas enzimas diretamente se for adicionado em concentrações elevadas

(HALLIWELL & GUTTERIDGE, 2007).

Espécies reativas de oxigênio (ROS), normalmente existem na célula em balanço

direto com enzimas e substâncias antioxidantes. A formação de ROS pode ser acelerada

como consequência de várias condições de estresse do meio, incluindo radiação UV,

alta intensidade de luz, exposição a herbicidas, temperaturas extremas, toxinas,

poluentes e metais, etc (HALLIWELL & GUTTERIDGE, 2007).

A geração de ROS também pode ocorrer por meio de processos fisiológicos,

pois são um produto normal do metabolismo celular. Estudos comprovam que a maior

fonte intracelular de ROS é a mitocôndria, onde defeitos na cadeia respiratória

mitocondrial e na maquinaria de síntese de ATP são muitas vezes acompanhados do

aumento dos radicais livres, principalmente o aníon superóxido (O2●-

) e/ou deficiência

de sistemas antioxidantes (WOJEWODA et al., 2010). Reações oxidativas são

utilizadas em respostas a vários tipos de estresse e como mecanismo de defesa por todos

os organismos aeróbios. ROS desempenham um papel significativo na regulação da

expressão gênica e como segundo mensageiro envolvidas em vários processos de

sinalização (SCANDALIOS, 2007).

Apesar de existir vários sítios de formação de ROS em toda a célula, a

mitocôndria parece ser a principal fonte intracelular fisiológica de ROS. Embora a

cadeia transportadora de elétrons mitocondrial seja um sistema muito eficiente, a

própria natureza da alternância da reação um elétron oxidação-redução predispõe cada

transportador de elétron a reagir com o oxigênio molecular (LI et al., 2009).

Os ROS são produzidos de forma tanto enzimatica quanto não enzimatica,

entretanto, todas as células aeróbias possuem uma variedade de mecanismos para

prevenir ou diminuir essas espécies tóxicas. A prevenção ou diminuição das espécies

reativas de oxigênio são realizadas pelo sistema antioxidante (LI et al., 2009). Se os

sistemas antioxidantes celulares não inativarem as ROS, estas podem reagir com

macromoléculas celulares e aumentar o processo de peroxidação lipídica, causar danos

ao DNA e/ou induzir modificações proteicas. Os danos causados a estes componentes

celulares causam a perda de suas funções, podendo, assim, levar à morte celular

(DEVIPRIYA et al., 2008).

26

O termo “estresse oxidativo” é uma expressão usada para descrever vários

processos deletérios que ocorrem dentro das células, resultantes de um desequilíbrio

entre a excessiva formação de ROS e da defesa antioxidante limitada, (LI et al., 2009).

Atualmente, sabe-se que o aumento da produção de ROS, devido à exposição

das células a diferentes formas de estresses, estaria envolvido com ativação da resposta

celular e aquisição de tolerância contra um eventual estresse oxidativo grave (COSTA et

al., 2001).

Para minimizar os efeitos nocivos do ROS, os organismos aeróbios

desenvolveram defesas antioxidantes. As defesas não enzimáticas incluem compostos

com ação antioxidante intrínseca, tais como as vitaminas C e E, flavonóides, β-caroteno

dentre outras moléculas. As defesas antioxidantes enzimáticas incluem a atividade da

superóxido dismutase (SOD), catalase (CAT), glutationa peroxidase (GPx), glutationa

redutase (GR) e glutationa S-tranferase (GTS) (SCANDALIOS, 2005). Dentre as

defesas não enzimáticas, o mais conhecido exemplo é o tripeptídio glutationa (L--

glutamil -L- cistinilglicina). A glutationa reduzida (GSH) apresenta um grupo sulfidril

com ação redox, que reage com oxidantes produzindo glutationa oxidada (GSSG) que

pode novamente ser reduzida, dependendo da presença da enzima glutationa redutase. A

glutationa é, possivelmente, a mais abundante molécula “scavenger” -redox nas células

(MARCHLER et al., 1993) e, consequentemente, é a substância mais importante na

manutenção do estado redox celular (OHTAKE et al.,1991).

2.3- Selênio

O selênio é frequentemente incluído nos "coquetéis" antioxidantes juntamente

com as vitaminas C e E. Esta combinação pode ajudar a proteger o corpo contra uma

série de doenças e também contra o envelhecimento - considerado resultado do acúmulo

de lesões decorrente dos radicais livres.

As formas orgânicas do selênio, selenometionina (SeMet) e selenocisteina (Sec),

são consideradas benéficas para o organismo que o ingere, diferentemente da forma

inorgânica (selenito de sódio) considerada tóxica (RAYMAN, 2004). O selênio é

considerado um elemento antioxidante por ser parte do centro ativo de importantes

enzimas antioxidantes como a glutationa peroxidase e tiorredoxina redutase. A retenção

27

de selênio pelos tecidos varia de acordo com a forma química em que o selênio for

ingerido. Maiores quantidades deste elemento são absorvidos quando este se encontra

na forma de SeMet ao invés de selenito, selenato ou selenocisteína. Isto é devido ao fato

de a SeMet ser químicamente semelhante à metionina, o que lhe permite ser incorporada

no lugar desta. A disponibilidade do selênio nos suplementos alimentares tem como

finalidade reforçar as defesas antioxidantes nos organismos que os ingerem,

combatendo, assim, mais eficazmente os radicais livres (BEHNE et al., 2009).

O selênio (Se) foi descoberto em 1817, pelo químico sueco Jöns Jacob Berzelius

e classificado atualmente como um metalóide da coluna VI na tabela periódica que pode

ser encontrado em quatro estados de oxidação: Se0, Se

+6, Se

+4, Se

-2. Este metalóide e o

enxofre têm propriedades físicas e químicas comuns e tal similaridade permite que o Se

seja substituído pelo enxofre (S) em várias reações químicas dos sistemas biológicos.

No entanto, propriedades físicas e químicas diferentes entre esses elementos lhes

permitem atuações específicas nas reações químicas dos sistemas biológicos. De acordo

com sua química sugere-se que o selênio se encontre na forma de selenol (R-SeH), que

são compostos que correspondem aos tióis (R-SH), onde o átomo de selênio é

substituído pelo átomo de S. Em leveduras o Se é assimilado pela mesma via do

enxofre, com ativação do selenato por ATP sulfurilase e subsequente conversão a

selenometionina (LAMBERTI et al., 2011).

A principal diferença química entre selenóis e tióis está relacionada com suas

respectivas constantes de dissociação e seus caracteres nucleofilícos. Devido ao maior

caráter nucleofílico, os selenóis são capazes de reduzir dissulfetos e sulfóxidos, e ainda,

na presença de agentes oxidantes, serem convertidos em seus respectivos disselenatos

Pouco se sabe sobre o transporte de selênio, que é o primeiro passo para metabolismo

do selênio, que inclui a redução, metilação e incorporação em selenometionina. Selenato

(Se (VI)) é menos tóxica que selenito (Se (IV)) (KLAYMAN & GUNTHER, 1973).

O selênio é um elemento traço universal para todos os mamíferos, sendo muito

importante para vários processos celulares. Até a metade do século XX, o selênio era

considerado um elemento tóxico, sem qualquer função biológica. Experimentos com

dietas deficientes em selênio comprovaram a importância deste na nutrição humana.

Posteriormente, verificou-se que o selênio é componente de aproximadamente 25

proteínas conhecidas como selenoproteinas, dentre elas, várias enzimas antioxidantes

ou, necessárias para a detoxificação celular. A grande mudança com relação aos efeitos

benéficos do selênio foram trabalhos mostrando sua função na prevenção ao câncer.

28

(CLARK, et al., 1996). Clark e colaboradores (1996) observaram que a suplementação

de selênio em pessoas vivendo em áreas deficientes no metal era capaz de reduzir em

50% a morbidade e mortalidade devida ao câncer.

Mamíferos assimilam selênio pela dieta. O metaloide está presente em alimentos

como grãos, cereais e carne. Para evitar à toxicidade, ele deve ser usado em doses

limitadas. A ingestão de selênio recomendada é de 55µg de selênio por dia para adultos

saudáveis, quantidade esta suficiente para garantir as 25 selenoproteínas existentes.

Níveis supra nutricionais de selênio (200-300 µg / dia) estão supostamente envolvidos

na prevenção de vários tipos de câncer incluindo pulmão, colon-reto, e próstata

(BROZMANOVA´ et al., 2010). Em quantidades entre 750-800 µg/dia não foi

observado efeitos adversos, porém uma ingestão em quantidades maiores (1540-1600

µg/ dia) resultou em ocorrência de selenoses e concentrações de 3200-5000 µg/dia

induziu danos no DNA (SCHRAUZER, 2001).

Por outro lado, 40 µg/dia foi sugerida como ingestão mínima e uma ingestão

menor que 11 µg / dia causou problemas de deficiência de selênio. Tanto formas

orgânicas como inorgânicas de selênios podem ser utilizadas como forma de nutrição e

suplementação de selênio (RAYMAN, 2008). É importante também considerar que a

ingestão recomendada de selênio também pode ser alterada de acordo com a localização

geográfica porque a quantidade de selênio nos alimentos é altamente dependente da

quantidade de Se no solo e na água, e isto varia de país para país (Tabela 1) (FOSTER

& SUMAR, 1995).

29

TABELA 1

Ingestão de selênio recomendada para adultos de acordo com a localização geográfica

(µg/dia).

País ou região RDA, RNI, PRI ou

NR*

Mulheres Homens

Austrália 85 70

Bélgica 70 70

Bélgica, Áustria e Suíça 30-70 30-70

França 60 50

Itália 55 55

Japão 55-60 45

Nova Zelândia e Austrália 65 55

Países Nórdicos 50 40

EUA e Canadá 55 55

Reino Unido 75 60

Fonte: Adaptado de Rayman, 2004

*(do inglês RDA, Recommended Dietary Allowance; RNI, Reference Nutrient Intake;

PRI, Population Reference Intake; NR, Nutrient Requirement).

O Se entra na cadeia alimentar pela captação e acúmulo pelas plantas e sua

concentração nos alimentos é determinada por uma série de fatores geográficos e

geológicos, tais como: (i) a forma química do selênio e sua concentração no solo, (ii)

pH, que determina a natureza do Se encontrado, (iii) quantidades de matéria orgânica,

hidróxidos de ferro, compostos de Alumínio e argila que pode vincular-se ao Se,

reduzindo sua biodisponibilidade para plantas, (iv) a quantidade de espécies de S

(enxofre) (por exemplo, de adubos S) que possa competir com Se na absorção, (v) da

precipitação que pode retirar o Se do solo, (vi) microrganismos do solo que convertem

formas insolúveis de Se para formas solúveis (RAYMAN, 2004).

O selênio em mamíferos tem função antioxidante, sendo constituinte das

selenoproteínas, como, por exemplo a selonocisteína. Além disso, o selênio é cofator de

várias enzimas antioxidantes (glutationa peroxidase, glutationa transferase e

tiorredoxina redutase), que protegem as células contra toxinas, poluentes, contaminantes

30

metálicos, entre outros insultos que o organismo possa estar exposto (PONCE DE

LEON et al., 2000).

A atuação do selênio como antioxidante consiste em bloquear moléculas

indesejáveis conhecidas como radicais livres, que prejudicam o DNA (ocasionando a

oxidação de ácidos nucléicos e danos aos reparos); proteínas (causando principalmente

a perda da função catalítica de enzimas e alteração estrutural de proteínas); e lipídeos

(ocasionando a perda das propriedades físicas e químicas, alteração na fluidez e da

permeabilidade, aumento no risco de ruptura e alterações nas propriedades específicas

da membrana) (FOSTER & SUMAR, 1995).

O efeito do selênio é estritamente concentração dependente, com propriedades

antioxidantes nos teores baixos a moderados, principalmente porque ele é um

constituinte de várias selenoenzimas redox ativas (PAPP, 2007). Nas doses

supranutricionais, os compostos de selênio inibem o crescimento celular e tem efeitos

pró-oxidantes. As maiores concentrações, principalmente de formas inorgânicas de

compostos de selênio, por exemplo, selenito (SeO32-

), levam à toxicidade aguda devido

à quebras da fita de DNA (OLM, 2009).

A toxicidade causada por selênio pode gerar ROS que são naturalmente geradas

pela cadeia transportadora de elétrons, na mitocôndria. Níveis baixos de ROS são

importantes na sinalização celular e na proliferação normal da célula. Em excesso,

causam estresse oxidativo, que é responsável pelos danos a vários componentes

mitocondriais (BEHNE et al., 2009).

Atualmente há um interesse crescente no uso de leveduras enriquecidas com

selênio como suplemento alimentar para serem utilizadas na nutrição humana e animal.

Assim como outros organismos biológicos, leveduras têm a capacidade de incorporar

diversos metais tais como ferro, cádmio, zinco, selênio, etc. (FOSTER & SUMAR,

1995).

2.4- Leveduras e selênio

Desde 1961, trabalhos mostram que leveduras (S. cerevisiae) são capazes de

converter selênio inorgânico em selenometionina. A biossíntese de selometionina é

análoga a da metionina utilizando as mesmas enzimas. A quantidade máxima de Se que

células de leveduras são capazes de incorporar depende da quantidade de metionina

31

contida na célula, sendo que quantidade incorporada de selênio não representa a

quantidade total de metionina contida na célula (SCHRAUZER, 2006). Parte do selênio

associa-se fisicamente com macromoléculas, especialmente as que constituem a parede

celular (RAYMAN, 2004).

Leveduras enriquecidas com selênio são frequentemente utilizadas como

suplementos alimentares porque elas contem a maior parte do selênio na forma de

selenometionina (SeMet). Células de leveduras são desprovidas de selenoproteínas,

portanto, o selênio não é essencial para esses organismos, em contraste com as células

humanas que possuem 25 selenoproteínas e, por isso, leveduras são utilizadas como

modelo de estudo da toxicidade de selênio por não possuírem interferência do

metabolismo de selonoproteínas (KRYUKOV et al., 2003; OLM, 2009).

Células de S. cerevisiae e Aspergillus nidulans com mutação nos transportadores

de sulfato em Sul1p e Sul2p, são resistentes a selenato, indicando que o selenato é

acumulado por esta sulfato permease nestes organismos. Mutações em ATPS (sulfato de

adenilil transferase) na levedura Schizosaccharomyces pombe, resultou em aumento da

tolerância ao selenato. O fenótipo mutante resistente a selenato foi correlacionado com a

baixa capacidade de absorção de sulfato e baixa atividade do gene ATPS (ROSEN &

LIU, 2009).

A incorporação de selênio por leveduras demonstraram que altas concentrações

de Se (IV) causam quebra dupla de DNA (DSB) no momento da sua replicação, por

causar um atraso no progresso da mitose que é RAD9-dependente, podendo causar a

parada do ciclo celular. Portanto, leveduras deficientes em mediadores de RAD9

(responsável pelo reparo do DNA) ou mediadores de RAD6/RAD18 (responsáveis pela

tolerância ao dano no DNA) são hipersensíveis ao selenito de sódio, apontando a

importância dos danos ao DNA na compreensão da toxicidade de selênio para as células

de levedura (HERRERO et al., 2008).

Análises de mutantes também têm demonstrado a importância do reparo por

excisão de base na tolerância ao selênio. Análises do transcriptoma em células de S.

cerevisiae tratadas com Se revelam a ligação do Se com estresse oxidativo, pela

regulação comum de genes para oxido-redutase. O Se induz resposta ao estresse

oxidativo por meio de genes GLR1 (gene que codifica a enzima glutationa redutase) e

TRR1 (gene que codifica a enzima tiorredoxina redutase) de maneira YAP1-

dependente (gene que codifica para o fator de transcrição indutor da apoptose). Super

expressão do gene que codifica para a enzima glutationa redutase também confere

32

resistência ao selenito (PINSON et al., 2000). O sistema da glutarredoxina das

leveduras consiste de 5 proteínas: glutarredoxina 1(Grx1), e glutarredoxina 2 (Grx2),

glutarredoxina 3 (Grx3), glutarredoxina 4 (Grx4) e glutarredoxina 5 (Grx5)

(LEWINSKA & BARTOSZ, 2008).

As células de leveduras reagem ao estresse oxidativo sintetizando enzimas para

detoxificação de ROS e, por reparo macromolecular do dano oxidativo (HERRERO et

al., 2008). Glutarredoxinas (GRXs) são tióis oxidoredutases que regulam o estado redox

dos grupos tióis das cisteínas (um alvo principal de proteínas oxidantes) usando GSH

como redutor. As cinco GRXs de S. cerevisiae agem em diferentes compartimentos das

células. Recentemente, foi mostrado que a linhagem mutante de S. cerevisiae com

deleção de Grx1p e Grx2p, é sensível ao aumento de selênio (LEWINSKA &

BARTOSZ, 2008). Grx1p e Grx2p (glutarredoxinas di-tiois) são principalmente

citosólicos, mas uma porção menor de Grx2p está localizada na mitocôndria.

2.5- Selênio e câncer

Trabalhos mostram que os efeitos pró-oxidantes e tóxicos induzidos por

compostos de selênio ocorrem em concentrações mais baixas (1mM) em células

malignas (5 mM) se comparadas às células benignas, dando ao selênio um grande

potencial terapêutico no tratamento do câncer (NILSONNE et al., 2006 & HUSBECK

et al, 2006). Clark e colaboradores (1996) demonstraram que a suplementação de

selênio pode reduzir a incidência de câncer de próstata.

A citotoxicidade do selênio parece ser devido à alta afinidade pelas proteínas

que incorporam selênio, muitas destas proteínas estão relacionadas à resistência contra

drogas como, por exemplo, a tioredoxina redutase (TrxR) que tem um importante papel

no crescimento tumoral e no fenótipo de resistência a drogas (SELENIUS et al., 2010).

Selênio é um antioxidante muito conhecido e este efeito, provavelmente, é um

importante mecanismo na prevenção do câncer. O efeito tóxico do selênio em células

tumorais em concentrações que não tem influência nas células normais é conhecido

como “paradoxo do selênio”. Assim, o selênio tem ação antioxidante em células

normais e, ação pró-oxidante em células tumorais devido a reação com vários fatores

que caracterizam o fenótipo cancerígeno como, por exemplo, os níveis aumentados de

tióis intracelulares (SELENIUS et al., 2010). Este efeito oxidante foi descrito em vários

33

tumores: próstata (ZHAO et al., 2006 & LI et al., 2007), pulmão (BJORKHEM–

BERGMAN et al., 2002), osso (CHUNG et al., 2006), células de carcinoma colo-retal

(KRALOVA et al., 2012), várias linhagens tumorais humanas (SUZUKI et al., 2010) e

mesotelioma (NILSONNE et al., 2006).

Apesar destes importantes achados, grande parte das pesquisas sobre selênio está

focada em seu uso por tempos prolongados para prevenção ao câncer e, só agora a

atenção se volta para o potencial uso em quimioterapia.

A atividade anti-tumoral dos compostos de selênio são dependentes da dose e

forma química. A forma inorgânica do selênio, selenito (SeO32-

), sofre redução tiol-

dependente para selenido (H2Se), que fornece selênio para a síntese de selenoproteínas.

Os efeitos principais são na glutationa (GSH). O selenito altera o estado redox da célula

pela oxidação da glutationa. Além disso, espécies reativas de oxigênio (ROS)

produzidas como resultado do metabolismo de selenito podem sobrecarregar a

capacidade tampão de uma célula e promover apoptose (COMBS & GRAY, 1998). O

mecanismo detalhado para a indução específica de apoptose por selênio ainda não é

compreendido entretanto várias vias foram propostas (OLM et al., 2009).

As ROS agem como mensageiro secundário nas cascatas de sinalização

intracelular que induzem e mantém o fenótipo oncogênico das células cancerígenas. Por

outro lado, ROS também podem induzir a senescência e a apoptose e, assim, funcionar

como espécies anti- carcinogênicas (VALKO, 2006).

2.6- Morte celular em leveduras

As células sofrem tipos distintos de morte celular. O primeiro tipo conhecido é a

necrose, uma forma violenta e rápida de degeneração celular que afeta populações

extensas, caracterizadas por aumento do volume citoplasmático, destruição de organelas

e rompimento da membrana plasmática, levando à liberação de conteúdo intracelular e

inflamação estando associada com respostas às perturbações e inflamações celulares

(MADEO et al. , 1999).

O segundo tipo de morte celular é a morte celular programada (MCP), também

conhecida como apoptose. A morte celular apoptótica é um processo vital em

organismos multicelulares: ela normalmente ocorre durante o desenvolvimento e é

associada com a manutenção da homeostase, eliminação dos danos celulares, respostas

34

a agentes infecciosos, envelhecimento e diferenciação celular, bem como nas respostas

adaptativas das células para estresses bióticos e abióticos (SHARON et al., 2009). A

apoptose é caracterizada por uma série de alterações morfológicas, tais como, a

exposição da fosfatidilserina na superfície da célula, condensação da cromatina nuclear,

fragmentação do DNA, invaginação e fragmentação da membrana formando os corpos

apoptóticos (MADEO et al. , 1999).

A apoptose envolve a participação de várias proteínas que são estritamente

reguladas por uma complexa cascata de sinalização. Quando ocorre de maneira

inapropriada pode interferir na regulação de várias vias de sinalização celular, podendo

estar associada a diversas doenças humanas como, por exemplo, doenças

neurodegenerativas, autoimunes e câncer (SHARON et al., 2009). As funções

mitocondriais são requeridas para indução de apoptose por diferentes agentes, tais

como, peróxido de hidrogênio, ácido acético, aspirina, NaCl, açúcares, ácido fórmico,

hipoclorito, arsênio (IZQUIERDO & HERRERO, 2010). Além destes compostos

químicos, a apoptose pode ser desencadeada pelo esgotamento de fonte de carbono e

energia no meio, ausência de aminoácidos essenciais, como lisina e histidina em células

auxotróficas, danos ao DNA e deleção de alguns genes, como: SRO7/SOP1 homólogo

de um gene que codifica para um supressor de tumor, deleção ou alteração de genes que

codificam para proteínas envolvidas na estabilização do mRNA (COSTA-MOREIRA,

2011).

Além de apoptose existem outras formas de mortes celulares, como morte

celular autofágica, necrose programada, colapso mitocondrial, entre outras (KROEMER

et al., 2009). Madeo e colaboradores (1999) descreveram pela primeira vez em 1997, a

ocorrência de apoptose em linhagens de S. cerevisiae com mutação no gene CDC48

(que codifica uma proteína associada à degradação de retículo endoplasmático em

vesículas). Os autores observaram que a ausência desse gene resultou em apoptose com

características idênticas a de células de mamíferos, tais como exposição da

fosfatidilserina, fragmentação de DNA e condensação de cromatina.

Vários metais e metaloides também causam apoptose em leveduras, o que está

provavelmente relacionado com o seu papel na formação de ROS como, por exemplo, o

selênio. Por outro lado, também pode ocorrer em levedura morte não-apoptótica (por

vezes referido como a morte necrótica), caracterizada por perda da integridade da

membrana plasmática e permeabilidade, quando essas células são expostas a metais e

metalóides, tais como o selênio (IZQUIERDO et al., 2010).

35

2.7- Leveduras e câncer

Na década de 20, Otto Warburg (1927) descreveu o mais comum fenótipo

bioquímico de células tumorais: mesmo na presença de níveis normais de oxigênio, a

glicose é fermentada sendo acompanhada por uma elevada produção de lactato bem

como uma drástica redução da respiração mitocondrial. Leveduras S. cerevisiae em

proliferação rápida apresentam o mesmo tipo de metabolismo, ou seja, fermentam na

presença de oxigênio quando aparentemente deveriam usar o metabolismo respiratório,

assim como as células tumorais uma das razões que nos permite usar S. cerevisiae como

modelo experimental para o câncer.

A morte celular programada, que protege contra a tumorigeneses está

intimamente ligada a processos mitocondriais nas células de mamíferos. Levedura

também pode sofrer morte celular programada de maneira mitocondria-dependente. As

leveduras da espécie Saccharomyces cerevisiae são leveduras Cabtree-positvo, o que

significa que estas leveduras têm a capacidade de alternar o metabolismo de

fermentativo para o fosforilativo, em resposta a mudanças na fonte de carbono. Além

disso, é possível produzir linhagens viáveis de S. cerevisiae com ausência do DNA

mitocondrial (são os chamados mutantes rho0), fatos que permitem a avaliação genética

rigorosa do papel da mitocôndria durante a morte celular (EISENBERG et al., 2007).

Desde o achado inicial Warburg demonstrou que ao contrário dos tecidos normais,

células do câncer tendem a fermentar a glicose a lactato mesmo na presença de oxigênio

suficiente para suportar uma fosforilação oxidativa mitocondrial. Nenhuma explicação

definitiva para a observação de Warburg foi encontrada permanecendo como uma

incógnita, pelo menos em parte, porque as exigências de energia de proliferação da

célula parecem, à primeira vista, serem melhores atendida pelo catabolismo completo da

glicose, usando fosforilação oxidadtiva mitocondrial para maximizar a produção de

adenosina 5'-trifosfato (ATP) (Ruckenstuhl et al., 2009).

É bem conhecido que muitos organismos unicelulares proliferam-se usando

fermentação, o equivalente microbiano da glicolise aeróbica, e análogo a células do

câncer, fato que evidenciam que o metabolismo glicolítico pode promover energia

suficiente para a proliferação celular. Uma possível explicação é que produção de ATP

ineficiente é um problema somente quando os recursos são escassos. Este não é o caso

para a proliferação de células animais, as quais são expostas a uma contínua

36

suplementação de glicose e outros nutrientes em circulação no sangue (HEIDEN et al.,

2009).

A respiração aeróbica consiste na metabolização da glicose a dióxido de

carbono, por oxidação do piruvato, no ciclo do ácido cítrico (TCA), pela mitocôndria.

Essa reação produz NADH (nicotinamida adenina dinucleotídeo), que é usado para a

produção de ATP na fosforilação oxidativa, maximizando a produção de ATP. É apenas

em condições anaeróbias que células diferenciadas produzem grandes quantidade de

lactato.

O metabolismo da glicose a lactato gera apenas 2 ATPs por moléculas de

glicose, enquanto que a fosforilação oxidativa gera 36 ATPs pela completa oxidação

das moléculas de glicose (HEIDEN et al., 2009). Em leveduras, a fonte de carbono

disponível regula o tipo de metabolismo a ser usado pela célula, se oxidativo ou

fermentativo. Quando a fonte de carbono usada é a glicose, a célula fermenta mesmo na

presença de oxigênio, quando o glicerol é usado como fonte de carbono, a célula usa o

metabolismo respiratório para produzir energia pela cadeia transportadora de elétrons

(RUCKENSTUHL et al, 2009).

Várias evidencias em células cancerígenas indicam que ATP não é limitante pois

estas celulas estão em processo de divisão celular e exibem altas taxas de ATP/ADP e

NADH/NAD+. Existem evidencias indicando que o ATP não parece ser limitante nestas

células. As células que utilizam a glicólise aeróbia estão em processo de divisão celular

estimulando também a divisão, e exibem altas taxas de ATP/ADP e NADH/NAD+.

Células deficientes em ATP, muitas vezes sofrem apoptose. Células com proliferação

normal sofrem parada do ciclo celular e reativam o metabolismo catabólico quando sua

capacidade de produzir ATP a partir da glicose está comprometida (HEIDEN et al.,

2009).

Outra característica comum entre leveduras e câncer foi descrita por Wassmann

e Benezra (2001) os quais relatam que a transição de metáfase para anáfase ocorre após

a degradação de um inibidor da anáfase denominado Pds1 em S. cerevisiae e Securin

em células de mamíferos. Seis genes produzidos são essenciais para a execução de

checkpoint da metáfase para a anáfase foram identificados em S. cerevisiae Mps1,

Mad1–3, Bub1 e Bub3. Em células de mamíferos, homólogos de Mad1–3, Bub1 e Bub3

também desempenham papel no controle do checkpoint mitótico.

37

3- JUSTIFICATIVA

As abordagens correntes no combate ao câncer são a radioterapia, a

quimioterapia, o tratamento cirúrgico e/ou, combinação destas modalidades. No

entanto, nenhuma destas abordagens é seletiva, qualquer procedimento terapêutico

implicará em danos às células saudáveis. Existe uma busca incessante por novas

drogas no tratamento do câncer que sejam específicas para células cancerígenas e

que confiram menor efeito tóxico nas células sadias. Resultados da literatura

indicam que o selênio pode desempenhar tanto um papel nocivo como benéfico nos

organismos biológicos. A literatura reporta trabalhos em que o selênio apresenta

efeito pró-oxidante, em baixas concentrações, em células cancerígenas, enquanto

que, células saudáveis não são afetadas por este tratamento. Estes dados sugerem

uma potencial ação terapêutica do selênio como agente sensibilizador de células

tumorais, possibilitando a aplicação de menor dose de irradiação em pacientes com

câncer passível de ser tratado com radioterapia.

O selênio talvez seja um dos agentes antioxidantes mais conhecidos. Alimentos,

suprimentos nutricionais enriquecidos com selênio e, muita propaganda criou no

público a certeza de que o selênio combate radicais livres, retarda o envelhecimento

sendo benéfico e, sem contra indicações, em inúmeras aplicações. Mostramos neste

trabalho, o lado pouco abordado das pesquisas com selênio, ou seja, sua função

como oxidante, quando na forma química inorgânica. A ação oxidante do selênio foi

usada para sensibilizar as células desafiadas com radiação gama e induzir morte

celular. Assim, destacamos dois aspectos importantes neste trabalho: o primeiro

aspecto é o fato que o selênio pode agir como oxidante e não exclusivamente como

antioxidante e, o segundo aspecto, é o papel radiosensibilizador do selênio.

A resposta ao tratamento com irradiação e selênio foi avaliada na levedura S.

cerevisiae. A levedura é sensível ao selênio e, um importante modelo de estudo para

o câncer, particularmente, nos estudos metabólicos. S. cerevisiae realiza

fermentação da glicose em presença de oxigênio, da mesma forma que as células

tumorais. Além disso, as células de S. cerevisiae apresentam mecanismo de reparo e

morte celular semelhante ao de células de mamíferos e células tumorais.

38

4- OBJETIVOS

4.1- Objetivo geral

Estudar a influência da incorporação de selênio na levedura S. cerevisiae e o

efeito desta suplementação prévia em células posteriormente tratadas pela radiação

ionizante (radiação gama, 60

Co).

4.1.1- Objetivos específicos 1

Quanto a Incorporação de selênio:

- Determinação da quantidade de selênio incorporado e dessorvido por células de S.

cerevisiae;

- Determinação da quantidade de potássio e sódio presente na célula antes e depois da

incorporação de selênio;

- Avaliação da influência da concentração crescente de selenito de sódio na curva de

crescimento;

- Determinação da tolerância das células a diferentes concentrações de selenito de sódio;

- Determinação da influência do selenito de sódio sobre a quantidade de lipídeos

peroxidados;

- Determinação da influência do selenito de sódio sobre a quantidade de resíduos

sulfidrílicos totais;

- Avaliação qualitativa da geração de radicais livres após incubação com selenito de

sódio;

- Verificação de morte celular após o tratamento com selenito de sódio

4.1.2- Objetivos específicos 2

Quanto ao tratamento das células submetidas à irradiação gama após enriquecimento

com selênio:

39

- Monitoramento da dose recebida utilizando dosímetro Fricke;

- Determinação da quantidade de lipídeos peroxidados, resíduos sulfidrílicos totais,

ocorrência de geração de radicais livres em função da dose absorvida.

40

5- METODOLOGIA

5.1- Organismo experimental

Neste trabalho foi utilizada a linhagem de S. cerevisiae BY4741 (linhagem

selvagem), genótipo MATa; his3Δ1; leu2Δ0; met15Δ0; ura3Δ0 obtida da European

Saccharomyces cerevisiae Archive for Functional Analysis (EUROSCARF), no

Instituto de Biociências na Universidade de Frankfurt na Alemanha.

5.2- Meios de cultura

O crescimento das células foi realizado nos seguintes meios:

- YPGlicose (2% glicose, 2% peptona e 1% extrato de levedura) acrescido de ágar (2%)

quando necessário o uso de meio sólido.

-YPGlicerol (3% glicerol, 2% peptona e 1% extrato de levedura) acrescido de ágar

(2%) quando necessário o uso de meio sólido.

- YNB (Yeast Nitrogen Base with aminoacids: 0,67% YNB, 2% glicose, 0,52% citrato

de sódio, 0,7% ácido cítrico).

5.3- Solução de selenito de sódio

Foi utilizado o sal selenito de sódio Na2SeO3 de peso molecular 172,94 g que foi

adquirido da Sigma. O sal foi pesado, diluído em água destilada estéril, previamente

autoclavada. O armazenamento foi feito a 4°C em vidro âmbar previamente esterilizado.

As concentrações utilizadas foram de acordo com a quantidade de selênio presente no

selenito de sódio (2.19 g/L de Na2SeO3 contém 1 g/L de Se).

5.4- Avaliação do crescimento celular

Para curva de crescimento, um pré inóculo foi crescido por 24 horas a 30ºC, a

150 rpm (rotação por minuto), em meio YPGlicose. Após este período, foi verificada a

densidade óptica da cultura em espectrofotômetro, a 600 nm. Os experimentos foram

41

iniciados com uma D.O. de 0,15 e as células foram crescidas em 10 mL de meio

contendo 0,25 mM, 0,5 mM, 1,0 mM, 2,5 mM e 5 mM de selenito de sódio, além do

grupo controle (ausência de Na2SeO3). Nos tempos 0 hora, 3 horas, 6 horas, 9 horas e

24 horas, uma alíquota de 100 L, foi retirada e colocada em 900 L de PBS. O

crescimento foi seguido pela medida da turbidez da suspensão a 600 nm, em

espectrofotômetro.

5.5- Avaliação da tolerância ao selênio em meio sólido suplementado com selenito

de sódio

As células foram crescidas em meio YPGlicose líquido e, a partir do pré-

inoculo, as células foram contadas em Câmara de Neubauer e, em seguida, foram

realizadas diluições sucessivas em PBS, contendo 108, 10

7, 10

6, 10

5, 10

4 e 10

3

células/mL. Em seguida, retirou-se 5 µL de cada diluição, que foram inoculadas em

meio sólido YPGlicose acrescido de 0, 1 mM, 0,25 mM, 0,5 mM, 1,0 mM, 2,5 mM e

5mM de selenito de sódio, além do grupo controle (ausência de Na2SeO3). As placas

foram incubadas durante 48 horas a 30º C e fotografadas. A tolerância foi determinada

pelo crescimento de colônias nas placas após este período.

5.6- Tratamento das células com selenito de sódio

As células foram pré-incubadas a uma temperatura de 30ºC, agitadas a 150 rpm,

por um período de aproximadamente 24 horas, em meio líquido YPGlicose. Após este

período, o meio foi centrifugado por 5 minutos a 3000 rpm, o sobrenadante descartado,

e as células foram transferidas para um novo meio líquido YPGlicose, por um período

de 4 horas, para que as células entrassem em fase exponencial de crescimento. As

células foram pré-incubadas a uma temperatura de 30ºC, agitadas a 150 rpm por um

período de aproximadamente 24 horas, em meio líquido YPGlicose. Após este período,

o meio foi centrifugado por 5 minutos a 3000 rpm, o sobrenadante descartado e as

células foram transferidas para um novo meio líquido YPGlicose, por um período de 4

horas, para que as células entrassem em fase exponencial de crescimento. Em seguida o

meio foi centrifugado por 5 minutos a 3000 rpm o sobrenadante descartado e as células

42

transferidas para meio YNB suplementado com de selênio, além do grupo controle (sem

adição de selenito de sódio. O volume de meio e a concentração de selênio variava de

acordo com a necessidade experimental. Em qual que fosse a situação, a incubação em

presença de selenito de sódio foi realizada durante 24h a uma temperatura de 30ºC, sob

agitação de 150 rpm.

5.7- Influencia das concentrações crescentes de selenito de sódio na quantidade de

selênio incorporado pelas células

Após o tratamento das células como descrito no item 5.6, as células foram

incubadas em meio (30 mL de meio YNB) acrescido de selenito de sódio nas

concentrações de 0,1 mM, 0,25 mM, 2,5 mM, 5,0 mM de selênio e também na situação

controle (ausência de selenito de sódio).

5.8- Determinação da Incorporação e dessorção de selênio e concentração de

potássio

As células foram incubadas em 90 mL de meio YNB acrescido de solução de

selenito de sódio nas concentrações pré-estabelecidas de selênio (0,1 mM e 0,25 mM) e

também na situação controle (ausência de selenito de sódio) durante 24 horas. Após este

período, foram retirados 30 mL para determinar o selênio incorporado e a concentração

de potássio. Em seguida as células foram incubadas em 60 mL de meio YNB a 30ºC e

após 24 horas foram retirados 30 mL para determinação do selênio dessorvido. O

mesmo procedimento foi realizado com os 30 mL restantes para determinar se houve

dessorção de selênio após 48 horas de incubação em meio YNB a 30ºC, sob agitação a

150 rpm.

43

5.9- Determinação do selênio presente na célula

Após a incorporação de selênio pelas células, a massa celular foi coletada por

filtração a vácuo usando filtros de nitrocelulose de 0,45 m de porosidade e 47 mm de

diâmetro. As células foram lavadas três vezes com água destilada gelada e transferida

para tubos apropriados para análise por ativação neutrônica que permaneceram por três

dias a 70ºC. Após este período, as amostras foram pesadas para determinação do peso

seco, e enviadas ao Reator Triga (CDTN/CNEN).

Foi utilizada a análise por ativação neutrônica para determinação do selênio

incorporado pelas células. A técnica tem como princípio a indução de radioatividade

artificial, em uma amostra, por meio da irradiação com nêutrons e, posterior medida da

atividade induzida mediante a detecção dos picos gama característicos do isótopo que se

deseja determinar por meio da espectrometria gama. Os fenômenos físicos na qual está

fundamentada esta análise são as propriedades do núcleo, radioatividade e a interação

da radiação com a matéria, via reação de nêutrons-gama (n, ). Os raios gama emitidos,

denominados de raios gama de decaimento, possuem energias que são características de

cada radionuclídeo. Assim, quando detectados por espectroscopia gama, podem ser

utilizados para identificar e quantificar os elementos químicos presentes em uma

amostra.

A técnica tem capacidade de análise de matrizes no estado sólido, líquido e

gasoso: a reação nuclear (n, ) independe do estado físico da matriz e é realizada em

reatores de pesquisa ou em fonte de nêutrons. No Brasil, apenas dois Centros de

Pesquisa realizam a ativação neutrônica em reatores de pesquisa: o Centro de

Desenvolvimento de Tecnologia Nuclear (CDTN) em Belo Horizonte, e o Instituto de

Pesquisas Energéticas e Nucleares (IPEN), em São Paulo, ambos pertencentes à

Comissão Nacional de Energia Nuclear (CNEN).

O CDTN/CNEN possui o reator TRIGA MARK I IPR-R1 fabricado pela GULF

GENERAL ATOMIC, dotado de mesa giratória e dispositivo de irradiação

especialmente apropriado para esta técnica analítica. O reator opera a uma potência de

100kW e, nesta potência, o fluxo de nêutrons térmicos atinge um valor médio de 6,69 x

1011

neutrons cm-2.s-1

(MENEZES et al., 2006). A meia-vida do 75

Se é de 119,77 dias. A

irradiação foi realizada durante 8 horas, nas condições do reator anteriormente

especificadas. Posteriormente, as amostras foram submetidas à espectrometria gama, os

44

picos característicos do selênio são de 121 KeV (17% de abundância), 136 KeV, 264,6

KeV (59% de abundância), 279,5 KeV (25% de abundância) e foram usados para a

determinação da quantidade do metal presente na célula. Os valores foram expressos em

g de Se incorporado/grama de peso seco.

5.10- Análise da viabilidade celular

A viabilidade celular foi determinada pelo número de unidades formadoras de

colônia (UFC). As amostras foram coletadas em diferentes tempos: 0 hora (no momento

inicial da incubação com selenito) e também 4, 8, 24 e 48 horas de incubação com

selênio. As UFCs foram determinadas pelo plaqueamento da suspensão das células de

levedura em meio YPG acrescido de ágar, e depois de 48 horas de incubação a 30°C, o

número de colônias foi contado. Os dados foram expressos em UFC / mL.

5.11- Análise da atividade metabólica com uso da Floxina B

A viabilidade das células foi avaliada utilizando o corante fluorescente floxina B

(FIG. 01). Este marcador é absorvido pelas células de forma passiva e é, então,

ativamente excretado pelas células metabolicamente ativas (ROUX et al., 2006). Após

24 horas de incubação com selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM e 0,25 mM

de selênio e na situação controle (ausência de selenito de sódio no meio), as células

foram lavadas com PBS estéril por duas vezes. As células então foram incubadas com

0,4 mg/mL de floxina B durante 2 horas a 30C. A análise foi iniciada com todas as

amostras contendo 5 x 109

células/mL. Após a incubação as células foram lavadas três

vezes com PBS e então colocadas em lâminas (EISLER et al, 2004; adaptado por Costa-

Moreira, 2011) e visualizadas em microscópio de fluorescência Zeiss Axionplan

acoplado a uma câmera digital.

45

FIGURA 01: Estrutura química da floxina B.

5.12- Obtenção de extratos celulares para dosagem da quantidade de lipídeos

peroxidados e resíduos sulfidrilicos totais

Após a realização da incubação descrita no item 5.6 utilizando um volume de 30

mL de meio YNB e concentrações de 0,1 mM, 0,25 mM de selênio, obtido de uma

solução de selenito de sódio e situação controle (ausência de selenito de sódio no meio),

a massa celular foi coletada por filtração a vácuo. As células foram lavadas três vezes

com água destilada fria. A massa celular foi removida do filtro com espátula e,

transferida para papel alumínio, congelada em nitrogênio líquido e estocadas em freezer

a - 20ºC. O pellet obtido foi ressuspendido em tampão de lise (Tampão Fosfato de Sódio

50 mM, pH 7,0; EDTA 1 mM e PMSF 1 mM), adicionou-se, em seguida, pérolas de

vidro. A ruptura das células foi realizado por seis ciclos de 30 segundos com agitação

vigorosa em vortex, intercalados com períodos de repouso em gelo. Após a lise celular,

a suspensão foi centrifugada a 3000 rpm por 5 minutos. Utilizou-se este sobrenadante

(extrato bruto) para a realização das dosagens necessárias.

5.13- Determinação da quantidade de lipídios peroxidados

A determinação da peroxidação lipídica foi realizada pelo método TBARS (do

inglês Thiobarbituric Acid Reactive Species), ou substâncias reativas com o ácido

tiobarbitúrico de acordo com LUSHCHAK e colaboradores (2005) e adaptado por

COSTA-MOREIRA (2007). A concentração dos peróxidos lipídicos foi realizada pela

http://pt.wikipedia.org/wiki/Ficheiro:Phloxine.png

46

reação com o ácido tiobarbitúrico. As substâncias reativas ao ácido tiobarbitúrico

(TBARS) são compostas de diversos produtos finais de baixo peso molecular formados

via decomposição de certos produtos primários e secundários da peroxidação lipídica. A

análise da quantidade de TBARS é utilizada como um índice de estresse oxidativo. O

cálculo foi realizado usando-se uma curva padrão de malondialdeído (MDA), um dos

produtos da peroxidação lipídica.

Após obtenção do extração celular de acordo com o item 5.12, retirou-se 720

µL do sobrenadante previamente separado e adicionou-se 80µL de ácido tricloracético

(TCA, concentração final de 10%), e a suspensão foi deixada em gelo durante 30

minutos. Após este período, foi centrifugada (3000 rpm por 5 minutos), e retirou-se 700

µL do sobrenadante ao qual se adicionou 700 µL de solução de TBA (0,5% de ácido

tiobarbitúrico preparado em TCA 20%), e aqueceu-se por 60 minutos a 100ºC. Em

seguida, a amostra foi deixada à temperatura ambiente para resfriamento. Após esta

etapa, a absorbância foi determinada espectofotometricamente a 532 nm. As medidas

foram corrigidas para turbidez inespecífica pela subtração da absorbância a 600 nm. A

quantidade de lipídios peroxidados foi expresso em picomoles de malondialdeído

(produto da reação) por miligrama de proteína (picomoles MDA/ mg proteína).

5.14- Determinação de resíduos Sulfidrílicos Totais

Os resíduos sulfidrílicos totais foram determinados pelos métodos de ELLMAN

(1959) e DAVIDSON e colaboradores (2001), adaptado por COSTA-MOREIRA

(2007), usando 5-5´dithio-bis 2-ácido-nitrobenzoico - DTNB. Na presença do

grupamento tiol livre a solução de DTNB forma 5-Mercapto-2-Nitrobenzoico,

produzindo uma coloração amarela característica que pode ser determinada

espectrofotometricamente a 412 nm (FIG. 02).

Os extratos celulares foram preparados de acordo com o item 5.12 e a partir

deste retirou-se 0,5 mg de proteína diluída em tampão 0,1 M de fosfato de sódio com

pH 7,0. Retirou-se uma alíquota de cada preparação e, adicionou-se tampão 0,01 M

fosfato de sódio, pH 8,0 e reagente Ellman (0,01 M DTNB preparado em tampão 0,1M

de fosfato de sódio pH 7,0) (FIG. 02). A absorbância foi determinada a 412 nm, após 20

minutos de incubação à temperatura ambiente. O coeficiente de extinção molar para o

47

DTNB é 13.600 M-1

cm-1

, e foi usado para determinar a concentração de resíduos

sulfidrílicos totais. Os resultados foram expressos em micromoles de resíduos

sulfidrílicos por miligrama de proteína (moles/ mg proteína).

FIGURA 02: Fórmula química e reação do reagente de ellman (5-5´dithio-bis 2-ácido-nitrobenzoico

DTNB). FONTE: ELLMAN, 1959

5.15- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio

A avaliação da geração de ROS foi realizada utilizando a sonda fluorescente 2,7-

diclorodihidrofluoresceína diacetato (DCFH-DA). Esta molécula penetra na membrana

celular por difusão passiva. No interior da célula, a molécula perde acetatos pela ação

das esterases intracelulares formando a diclorodihidrofluoresceína (DCFH). Na

presença das ROS na célula, esta molécula é oxidada formando a diclorofluorescína

(DCF), que é uma molécula fluorescente (FIG. 03) (RHEE et al., 2010).

O número de célula utilizada foi igual a 5 x 109 células/mL. Após 24 horas de

incubação com selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM e 0,25 mM de selênio e

na situação controle as células foram lavadas uma vez com PBS estéril e incubadas com

0,05 mM de DCFH-DA durante duas horas a 30ºC no escuro (RHEE et al., 2010;

adaptado por COSTA-MOREIRA, 2011).

Após a incubação, as células foram lavadas, ressuspensas em PBS e foi retirado

10µL do sobrenadante, colocado em lâminas e visualizadas em microscópio de

fluorescência Zeiss Axionplan acoplado a uma câmera digital.

48

FIGURA 03: Esquema mostrando a oxidação da sonda fluorescente 2,7-diclorodihidrofluoresceína

diacetato.

5.16- Dosagem de proteínas

Para o teste de resíduos sulfidrílicos e peroxidação de lipídios o conteúdo

protéico dos extratos brutos de cada amostra foi determinado de acordo com o método

descrito por Lowry et al (1951), utilizando uma solução de soroalbumina bovina (BSA)

como padrão.

5.17- Avaliação das alterações nucleares via coloração com DAPI

O núcleo de células apoptóticas apresenta cromatina condensada que pode ser

corada por 4´6-diamidino-2-phenyllindole, dihydrochloride (DAPI – Molecular Probes).

O DAPI é um marcador amplamente utilizado para técnicas fluorescentes corando

núcleos especificamente, com pouca ou nenhuma marcação de citoplasma.

A coloração com DAPI procedeu-se utilizando o método descrito em Madeo

(1997), adaptado por COSTA-MOREIRA (2011). A quantidade de célula utilizada foi

de 5 x 109 células/mL. Após incubação com selenito de sódio nas concentrações de 0,1

e 0,25 mM de selênio as células foram lavadas uma vez com PBS estéril e, então,

incubadas com 0,5 g/mL de DAPI durante 15 minutos.

Após a incubação, as células foram lavadas, e transferidas para PBS Em seguida,

foram retirados 10 µL do sobrenadante, colocado em lâminas e a visualização dos

núcleos das células corados com DAPI foi feita em microscópio de fluorescência Zeiss

Axionplan acoplado a uma câmera digital.

49

5.18- Avaliação das alterações nucleares por meio da coloração com Laranja de

Acridina/Brometo de Etídio

A laranja de acridina (LA) é um corante fluorescente catiônico seletivo para

ácidos nucléicos utilizado para a determinação do ciclo celular. Trata-se de um corante

permeável à membrana celular que interage com o DNA e RNA por intercalação ou

atrações eletrostáticas, respectivamente. Quando ligado ao DNA, possui uma excitação

máxima de 502 nm e emissão máxima a 525 nm (verde), e quando associada com o

RNA, a excitação máxima é 460 nm (azul) e a emissão máxima é de 650 nm (vermelho)

(TOMITA, 2005).

A quantidade de células utilizadas foi igual a 5 x 109 células/mL. Após

incubação com selenito de sódio nas concentrações de 0,1 e 0,25 mM de selênio, as

células foram lavadas uma vez com PBS estéril. As células foram então incubadas com

tampão de lise, composto por 15U de liticase, 5,5% de glusolase e 1M de Tampão

Sorbitol (para lise da parede celular) durante duas horas a 30ºC e lavadas três vezes com

PBS. As células foram incubadas com 0,1µg/mL de brometo de Etídio e 10µL de

Laranja de Acridina em 1mL de PBS durante 15 minutos no escuro.

Após a incubação, as células foram lavadas, ressuspensas em PBS e foi retirado

10µL do sobrenadante, colocado em lâminas e a visualização dos núcleos das células

corados com Laranja de Acridina e Brometo de etídio foi feita em microscópio de

fluorescência Zeiss Axionplan acoplado a uma câmera digital.

5.19- Atividade mitocondrial

Para investigar a funcionalidade mitocondrial das células de levedura após

tratamento com selenito de sódio, estas foram crescidas em condições que permitam o

funcionamento do metabolismo respiratório. Assim, o substrato usado como fonte de

carbono foi o glicerol. Quando necessário o metabolismo fermentativo, a fonte de

carbono usada era a glicose.

Para curva de crescimento, um pré inóculo foi crescido por cerca de 24 horas a

30ºC, a 150 rpm, em meio com glicose e outro em meio com glicerol. Após este

50

período, foi verificada a densidade óptica da cultura em espectrofotômetro, a 600 nm.

Os experimentos foram iniciados com uma D.O de 0,15 e as células foram crescidas em

meio contendo selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM, 0,25 mM de selênio,

além do grupo controle (ausência de Na2SeO3). Nos tempos de 0, 4, 8, 24 e 48 horas,

uma alíquota de 100 L, foi retirada e colocada em 900 L de PBS. O crescimento foi

seguido pela medida da turbidez da suspensão a 600 nm, em espectrofotômetro.

5.20- Avaliação da interação do selênio com a irradiação gama e seu efeito nas

células da levedura Saccharomyces cerevisiae BY4741

5.20.1- Irradiação das células com cobalto Co60

Para este trabalho utilizamos um Irradiador Panorâmico Multipropósito modelo

IR-214, fabricado por MDS Nordion, e instalado no Laboratório de Irradiação Gama

(LIG/CDTN/CNEN), equipado com uma fonte de Cobalto-60 estocada a seco.

.

5.20.2 Determinação da viabilidade de células após irradiação gama

Um pré inóculo foi crescido a 30ºC sob agitação de 150 rpm e, após 24 horas,

retirou-se 200 µL que foram inoculados em placas contendo meio YPG sólido, e

incubadas em estufa a 30ºC por 48 horas. Após este período as placas foram acopladas

em fileiras a uma placa de isopor 27x19 cm e 2cm de espessura, presa a um suporte de

PVC com 53 cm de altura e 20 cm de diâmetro (figura 04) e em seguida foram levadas

ao laboratório de Irradiação gama do CDTN para serem irradiadas a 50 cm da fonte de

Co60

em diferentes doses pré estabelecidas, e em seguida foi medido a absorbância da

solução de Fricke.

Após o tempo estipulado de irradiação, as células foram raspadas das placas,

transferidas para PBS estéril. As células foram contadas em câmara de neubauer e

diluídas até obtenção de uma concentração celular de 1,0 x 104 células/mL. Em seguida

100 µL foram inoculadas em meio YPG sólido e incubadas a 30ºC por 48 horas. A

tolerância foi determinada após contagem do número de UFC formadas. O resultado foi

51

expresso em (%) da fração de células sobreviventes após irradiação gama, sendo o

número de UFCs do grupo controle 100%.

5.20.3 Irradiação de células tratadas com selenito de sódio

Após tratamento com selênio de sódio de acordo com o item 5.6 em um volume de 10

mL de meio YNB e nas concentrações de 0,1 mM e controle, foi retirado 200 µL dessa

suspensão que foram inoculadas em placa contendo meio YPG sólido. As placas foram

incubadas em estufa a 30ºC por 48 horas, após este período, foram acopladas ao suporte

(FIG. 01, Anexo II) e, em seguida, transportado ao laboratório de Irradiação Gama do

CDTN para serem irradiadas. Após o tempo adequado de irradiação, essas células foram

coletadas por raspagem da superfície sólida com espátula e, transferidas para PBS

estéril. Em seguida, foram submetidas às seguintes análises: determinação da

quantidade de lipídios peroxidados( item 5.13), resíduos sulfidrílicos totais (item 5.14),

e avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio (item 5.15). A obtenção dos

extratos celulares para avaliar a quantidade de lipídios peroxidados e resíduos

sulfidrílicos livres, foi feita de acordo com o item 5.12 e a dosagem de proteína de

acordo com o item 5.16.

5.20.4- Dosimetria Fricke

Para se utilizar as radiações ionizantes como ferramenta de pesquisa é

fundamental que se faça uma dosimetria apropriada. Dentre os diversos tipos de

dosímetros existentes para a avaliação de altas doses, foram escolhidos dosímetros

químicos que são compostos por uma solução aquosa de sulfato ferroso e que são

utilizados como padrão de referência. Para estes dosímetros, a determinação da dose

baseia-se na conversão de íons Fe2+

para Fe3+

, por meio de uma reação desencadeada

pela absorção de radiação ionizante. Esse efeito foi observado inicialmente por H.

Fricke e S. Morse e os dosímetros baseados nesse princípio são chamados dosímetros

Fricke. A faixa de aplicação para avaliação de dose pelas soluções Fricke padrão varia

de 20 a 400 Gy (KONZEN, 2006). O dosímetro baseado em soluções Fricke é

classificado como dosímetro padrão de referência, ou seja, apresenta alta qualidade

metrológica que assegura a sua confiabilidade para a utilização na calibração de outros

52

dosímetros, podendo ser utilizado com dosímetro de transferência ou de rotina. (IAEA,

2002).

Para este trabalho escolhemos a dosimetria Fricke, por ser um dosímetro bem

caracterizado, de preparo simples e de fácil manuseio, bastante preciso e que pode ser

utilizado como dosímetro absoluto (RODRIGUES et al., 2010).

Algumas características do dosímetro Fricke incluem elevada exatidão e

precisão na determinação da dose absorvida, relativa estabilidade antes e após a

irradiação, baixa dependência com a taxa de dose absorvida para valores de até 2 MGy/s

e equivalência aproximada à água e tecidos biológicos macios, em termos de

propriedades de absorção de fótons e elétrons, número atômico efetivo e densidade. O

sistema Fricke pode ser aplicado à dosimetria de feixes de raios-X (E ≥ 2 MeV) e

radiação gama (E > 0,6 MeV), feixes de elétrons ou partículas beta (E > 8 MeV)

(ASTM E–1026, 2004)

A medida da dose absorvida, fornecida por meio do dosímetro Fricke é

praticamente equivalente à dose na água, o que dispensa, na maior parte das vezes, a

utilização de fatores de correção para a determinação da dose no meio de interesse. As

soluções de sulfato ferroso podem ser utilizadas para determinação de dose absoluta se

não for necessária a rastreabilidade a padrões nacionais (Konzen, 2006). Caso contrário,

o dosímetro pode ser facilmente correlacionada à absorbância, parâmetro que pode ser

medido por espectrofotômetro UV, na região do pico de absorção em 303 nm.

A temperatura de irradiação dos dosímetros deve ficar limitada a valores entre

10 e 60ºC e as taxas de dose não devem exceder valores de 106 Gy/s, respeitando-se em

todas as circunstâncias as condições de equilíbrio eletrônico. A faixa de registro de dose

varia entre 20 e 400 Gy (IAEA, 2002). Os principais fatores que influenciam a

qualidade da solução do Fricke são relacionados a impurezas de natureza orgânica ou

inorgânica alteram sensivelmente a estimativa de dose em virtude da reação dessas

espécies com os radicais produzidos na radiólise, diminuindo a conversão de íons

ferrosos para férricos.

53

5.20.5 Preparo da solução Fricke

Adicionou-se lentamente 22,5 mL de ácido sulfúrico concentrado em um balão

volumétrico contendo aproximadamente 500 mL de água tri-destilada. Em seguida,

completou-se o volume com água tri-destilada e o sistema ficou em repouso até atingir a

temperatura ambiente. Em seguida o volume foi acertado e homogeneizado para que se

obtivesse uma solução de ácido sulfúrico 0,4 M. Pesou-se 0,392 g de sulfato ferroso

amoniacal hexahidratado (Fe (NH4)2(SO4)2.6H2O) e 0,058 g de cloreto de sódio (NaCl)

e esses sais foram dissolvidos em 12,5 mL de solução de ácido sulfúrico (H2SO4) 0,4 M,

a 25ºC, e diluídas para 1 L, com a mesma solução de ácido sulfúrico, em balão

volumétrico apropriado, obtendo-se assim uma solução dosimétrica padrão com a

seguinte concentração: 1 mM de Fe(NH4)2(SO4)2.6H2O, 1 mM de NaCl e 0,4 M de

H2SO4. As soluções recém-preparadas são transferidas para frascos âmbar, fazendo-se

previamente o ambiente nestes reservatórios, e armazenados em geladeira para

minimizar a oxidação dos íons ferrosos pela presença de luz ambiente e aumento da

temperatura (KONZEN, 2006). Os dosímetros foram preparados cerca de 17 horas antes

da irradiação e a solução de Fricke foi armazenada em tubos de vidro, os quais foram

fixados em duplicatas em frente às placas de Petri contendo meio de cultura e células de

leveduras pré-enriquecidas com selenito.

5.20.6 Análises químicas para determinação de íons Fe2+

e Fe3+

dos dosímetros Fricke

As análises foram feitas em espectrofotômetro Shimadzu UV 1240 no mesmo

dia de irradiação. As medidas espectrofotométricas foram realizadas utilizando-se

cubeta de quartzo, preenchida com aproximadamente 2 mL da solução Fricke, após

fazer ambiente por pelo menos duas vezes. As leituras são feitas na região do

ultravioleta, de 303nm, contudo, para maior precisão foram feitas varreduras na faixa

de 200-400 nm. A dose é determinada pelo aumento da absorbância ∆A, a uma dada

temperatura t, e, a partir de valores conhecidos para o rendimento químico na

temperatura de irradiação t’, G(Fe3+)t’, coeficiente de extinção molar na temperatura

de medida no espectrofotômetro t, (ᵋm)t, comprimento do caminho óptico, l (usualmente

1 cm), e densidade da solução, (1,024 kg/dm3), com a seguinte expressão (ASTM E–

2004):

54

Para temperaturas diferentes de 25ºC, o valor do produto pode ser

corrigido através da seguinte expressão:

5.21- Análise estatística

Os resultados foram expressos como média desvio padrão de pelo menos três

experimentos diferentes. A diferença estatística dos resultados foi realizada utilizando

teste t de Student e Análise de variância (ANOVA) com níveis de significância de 0,05.

Os testes foram realizados com o auxilio do software estatístico Minitab®.

5.22- Descarte de Rejeitos

Todos meios de cultivo contendo selenito de sódio foram estocados no

laboratório de Radiobiologia do CDTN, em bombonas plásticas colocadas dentro de

caixas plásticas, devidamente etiquetadas. Quando esgotada a capacidade de

armazenamento, as bombonas foram enviadas ao Serviço de Gerência de Rejeitos do

CDTN, que o manteve sob sua guarda até a destinação final do rejeito. Substâncias

químicas como brometo de etídio também foram segregados em recipientes plásticos.

55

6. RESULTADOS E DISCUSSÃO

6.1- Curva de crescimento

Para avaliar a influência do selenito de sódio no crescimento da levedura S.

cerevisiae foi realizado primeiramente uma curva de crescimento. O resultado está

apresentado na FIG.4 onde se pode observar que em ausência de selenito de sódio

(situação controle) as células apresentam o perfil de crescimento esperado.

Concentrações crescentes de selenito de sódio tendem a diminuir o crescimento,

entretanto, este fato só fica perceptível nas células que ficaram mais de 9 horas de

incubação na presença de selênio. Na concentração de 5 mM de selenito de sódio (a

maior usada) existe total inibição do crescimento. A inibição do crescimento de

leveduras também foi observada por meio da medida da absorbância em concentrações

de selênio entre 1mM e 10mM por Lewinska e Bartosz (2008).

FIGURA 4: Curva de crescimento de células da levedura S. cerevisiae, em diferentes concentrações de

selenito de sódio durante 24 horas

0

2

4

6

8

0 3 6 9 24

D.O

60

0 n

m (

24 h

ora

s)

Controle

0,25 mM

0,5 mM

1,0 mM

2,5 mM

5,0 mM

56

6.2- Tolerância ao selenito de sódio

A presença de concentrações crescentes de selenito de sódio no meio de

incubação levou à inibição do crescimento celular. Essa inibição é maior com o

aumento da concentração de selenito de sódio. Na diluição de 103 células/mL não há

crescimento de colônias em nenhuma das concentrações de selênio empregada, o que

pode ser observado na FIG. 5. Observa-se também que, concentrações crescentes de

selenito de sódio e, aumentos da diluição celular empregada levam à redução

progressiva no tamanho das colônias até ao total desaparecimento. A ausência de

colônias significa que as células foram incapazes de se dividirem e formarem novas

colônias na presença de selênio. Resultado similar foi obtido por Lewinska e Bartosz

(2008) que mostraram a formação de colônias menores que as observadas na situação

controle na levedura S. cerevisiae com suplementação de 2 mM de selenito de sódio ao

meio sólido. Izquierdo e colaboradores (2010), também mostraram inibição da formação

de colônias na presença de um suplemento de 6 mM de selênio em meio sólido.

FIGURA 5: Crescimento da levedura S. cerevisiae BY4741 em placa contendo selenito de sódio em

diferentes concentrações.

(número de células/mL)

108

107

106

105

104

103

controle

0,1 mM

0,25 mM

0,5 mM

1,0 mM

2,5 mM

5,0 mM

57

6.3- Análise da viabilidade celular

Em todas as concentrações de selênio usadas para a realização da curva de

crescimento, com exceção de 5 mM, foi determinado aumento da turbidez, fato que

indica crescimento. Entretanto, foi observada grande diminuição na formação de

colônias (FIG 5) quando as células foram incubadas com 1,0 e 2,5 mM (o aparecimento

de colônias aconteceu apenas quando foi usada a maior densidade de células/mL). Para

esclarecer estes dois resultados aparentemente conflitantes foi realizado o experimento

mostrado na FIG. 6. Neste caso, células foram incubadas em meio líquido suplementado

com selenito de sódio nas concentrações de 0,1 e 0,25 mM de selênio (concentração

onde a célula apresentou crescimento satisfatório) e após 4, 8, 24 e 48 horas uma

amostra era retirada e inoculada em placas contendo apenas meio YPG. Após incubação

a 300C por 48 horas, as colônias formadas foram contadas e o resultado apresentado na

FIG. 6.

Observou-se que, quando células foram retiradas do meio líquido contendo selenito de

sódio e, em seguida, foram inoculadas em placas sem a presença de selenito de sódio,

ocorreu uma diminuição no número de colônias formadas. A diminuição do número de

colônias está relacionada ao tempo em que as células ficaram expostas ao selenito de

sódio e à concentração de selênio usada. Quanto maior o tempo de contato e maior a

concentração de selênio, menor a quantidade de colônias formadas. Após 48 horas (FIG.

6) de incubação na presença de 0,25mM de selênio não houve formação de colônias. O

resultado apresentado na FIG. 6 indica que as células vão gradativamente perdendo a

capacidade de dividir à medida em que ficam mais tempo expostas à concentrações

crescentes de selênio.

58

FIGURA 6: Capacidade de formação de colônias após incubação por tempos crescentes na presença de

0,1 e 0,25 mM de selênio.

6.4- Análise da atividade metabólica com uso da Floxina B

Outra maneira para comprovarmos que as células vão gradativamente perdendo

a capacidade de dividir foi pela análise da atividade metabólica. Para avaliar se as

células permanecem metabolicamente viáveis após incubação com selenito de sódio, foi

realizado o teste com a floxina B. A Floxina B entra passivamente nas células e é

ativamente excretada somente quando a célula está metabolicamente ativa. Assim, as

células mortas apresentam se coradas em vermelho e podem ser visualizadas e contadas

em microscópio de fluorescência (Roux et al., 2006; adaptado por Costa-Moreira,

2011).

Observa-se que, na situação controle (ausência de selenito de sódio)

praticamente não foram observadas células coradas em vermelho, fato que indica que a

quase totalidade das células estavam viáveis metabolicamente. Após o tratamento das

células com selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM de selênio durante 24

horas, 17,7% apresentaram-se coradas em vermelho, fato que indica que 82,3% das

células mantiveram a capacidade metabólica integra quando comparadas à situação

controle. Quando foram usados 0,25 mM de selênio durante 24 horas observou-se que

uma proporção menor de células (61,2%) continuava metabolicamente ativa. Esse

resultado demonstra que mesmo não sendo capaz de dividir e formar colônias, algumas

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20

4 horas 8 horas 24 horas 48 horas

x 10

5 U

FC

controle

0,1 mM

0,25 mM

59

células permanecem metabolicamente ativas como foi demonstrado na TAB. 2 pela

coloração com a floxina B.

TABELA 2 – Análise da viabilidade celular pela porcentagem de células coradas por floxina B na

linhagem BY4741.

Situação (%) de células coradas por Floxina B

controle 0,99 ± 0,34

0,1 mM de selênio 17,7 ± 0,99

0,25 mM de selênio 38,8 ± 2,38

6.5- Determinação do selênio incorporado pela levedura

Para determinar se a levedura S. cerevisiae tem capacidade de incorporar selênio

e se após a incorporação ocorre dessorção do selênio incorporado (saída do selênio para

o meio extra celular), foi usada a análise por ativação neutrônica.

Inicialmente, observou-se que célula de S. cerevisiae tem capacidade de

incorporar selênio, sendo que a incorporação aumenta com o aumento da concentração

embora não mantenha nenhuma relação linear. Quando foi utilizada a suplementação de

5 mM de selenito de sódio no meio extracelular foi obtido uma incorporação da ordem

de 2,7 mg de selênio/g de célula (FIG.7).

Para verificar se após a incorporação de selênio, este seria mantido nas células,

foi realizado o experimento da dessorção de selênio. Para tanto foram utilizadas as

concentrações de 0,1 mM e 0,25 mM, previamente selecionadas dos resultados

anteriores. Primeiramente, a incorporação de selênio, após 24 horas, foi determinada nas

células que foram incubadas com selenito de sódio nas concentrações de 0,1mM e 0,25

mM de selênio. Após 24 horas, realiza-se a transferência das células que estavam em

presença de 0,1 e 0,25 mM para meio sem adição de selenito de sódio. Após 24h na

ausência de selenito de sódio estas células foram coletadas e novamente enviadas para

determinação da quantidade de selênio presente. Observou-se que, no período de tempo

estudado, a célula não perde o selênio acumulado quando a incorporação foi realizada

em meio suplementado com 0,1 mM. Existe maior incorporação de selênio pelas células

que foram incubadas com 0,25 mM, porém, existe maior perda de selênio após 24 horas

60

nesta condição, atingindo concentração de selênio equivalente à obtida nas células

incubadas com 0,1 mM de selênio (FIG. 8).

As células de leveduras demonstraram boa capacidade de incorporar selênio e

também de mantê-lo no interior da célula. Entretanto, parte do selênio incorporado na

concentração de 0,25 mM foi liberada pela célula, demonstrando que, possivelmente, a

levedura tem um limite de metabolização de selênio. Schrauzer (2006) descreveu que

leveduras incorporam selênio de acordo com a quantidade de metionina, pois, o selênio

ficará ligado ao aminoácido metionina formando a selenometionina. Assim, se todo o

selênio estivesse ligado à metionina a incorporação deveria ser da ordem de 75,95 mM

de Se. No entanto, a total substituição de metionina por selenometionina não ocorre e, a

maior incorporação de selênio foi de 37,97 mM. Sendo assim, é possível que o selênio

que não foi metabolizado pela célula seja dessorvido pela célula.

FIGURA 7: Determinação da incorporação de selênio após 24 horas de incubação.

0

500

1000

1500

2000

2500

3000

3500

controle 0,1 mM 0,25 mM 2,5 mM 5,0 mM

ug

de

selê

nio

/ g

pes

o se

co

Célula incubadas durante 24 h em presença de Selenito de sódio

61

FIGURA 8: Determinação da incorporação de selênio após 24 horas de incubação (colunas azuis) e

determinação do selênio dessorvido (colunas vermelhas) após 24 horas de incubação em meio

sem adição de selenito de sódio.

6.6- Determinação da quantidade de potássio após incorporação de selênio

Com o objetivo de determinar alterações na homeostase iônica foi realizada a

determinação de potássio na célula. A homeostase iônica é de fundamental importância

para mecanismos fisiológicos e, consequentemente, viabilidade celular. A determinação

de potássio foi realizada na mesma amostra empregada para a determinação de selênio,

sendo essa uma das grandes vantagens da análise por ativação neutrônica. Analisando

os resultados apresentados na FIG.9, pode-se observar que houve perda de potássio após

a célula incorporar selênio. Howlett e Avery (1997) observaram uma perda de potássio

em S. cerevisiae após exposição ao cádmio e relacionaram este efluxo com perda da

permeabilidade da membrana plasmática. Possivelmente o mesmo ocorre com

exposições de S. cerevisiae ao selênio.

0

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

controle 0,1mM 0,25mM

ug

de

se

lên

io/

g p

eso

se

co

Concentração de selênio

24 horas incorporação

24 horas dessorção

62

FIGURA 9: Determinação de potássio após 24 horas de incorporação de selênio pela linhagem de

levedura BY4741. Sendo (a) significativo em relação ao controle valor p< 0,05.

6.7- Determinação da quantidade de lipídios peroxidados

Membranas são constituintes celulares ricos em lipídeos e são alvos comuns das

ROS gerados no estresse oxidativo e, em geral, o maior dano causado a esses lipídios é

a peroxidação. A oxidação da membrana lipídica ocorre por uma cadeia de reações com

radicais livres (LI et al., 2009).

Para avaliar se a incorporação de selênio pelas células leva à peroxidação dos

lipídeos, foi feita a determinação da quantidade de lipídios peroxidados. As

concentrações de selênio utilizadas foram previamente selecionadas de acordo com os

resultados apresentados anteriormente. Observou-se que ocorre um aumento da

peroxidação de lipídios apenas na concentração de 0,25 mM de selênio, como pode ser

observado na FIG 10. Portanto, o aumento da concentração o selênio parece gerar

estresse oxidativo na célula e, consequentemente, peroxidação de lipídeos, Assim, o

aumento da concentração de selênio parece exercer um papel pro-oxidante nas células

de levedura.

0

1

2

controle 0,1mM Se

µg

de

po

táss

io/g

pes

o s

eco

a

63

FIGURA 10: Determinação da peroxidação lipídica após incorporação por 24 horas de selenito de sódio

com diferentes concentrações de selênio. Sendo (a) significativo em relação ao controle e (b)

significativo em relação a 0,1 mM, ambos valor p< 0,05.

6.8- Resíduos Sulfidrílicos Totais

O balanço entre os pro-oxidantes e antioxidantes é crítico para a sobrevivência e

funcionalidade dos organismos aeróbios. Um desequilíbrio a favor dos pro-oxidantes

e/ou desfavorável aos antioxidantes, leva ao estresse oxidativo. No contexto da ação

antioxidante, a glutationa é a molécula principal. A determinação dos resíduos

sulfidrílicos livres é, essencialmente, a determinação da glutationa reduzida (GSH). A

diminuição dos resíduos SH livres representa uma diminuição da GSH, sendo oxidada a

GSSG (ARTEEL & SIES, 2001). Portanto, para avaliar se ocorreu alteração na

quantidade de glutationa reduzida foi feita a determinação dos resíduos sulfidrílicos

livres nas células da levedura. A presença de selenito de sódio no meio extra celular

promove uma diminuição na quantidade de resíduos SH livres na concentração de 0,1

mM em relação ao controle. Quando a concentração de selênio aumenta para 0,25 mM

diminui ainda mais os resíduos sulfidrílicos livres, como apresentado na FIG.11. Esse

resultado indica que o selenito de sódio teve um papel pro oxidante nas células de

levedura. Kice e colaboradores (1980) observaram que em uma solução aquosa

tamponada contendo ácido acético e dioxano, o selênito de sódio oxida tióis

transformando a GSH (glutationa reduzida) em GS-Se-SG (selodiglutationa). Esta

oxidação da glutationa parece se repetir nas células S. cerevisiae BY4741.

0

10

20

30

40

50

60

Controle 0,1 mM 0,25 mM

pic

om

ole

s d

e M

DA

/mg

de

pro

teín

a

a,b

64

FIGURA 11: Determinação de Resíduos sulfidrílicos totais após incubação em meio suplementado com

selenito de sódio. Sendo (a) significativo em relação ao controle e (b) significativo em relação a

0,1 mM, ambos valor p< 0,05.

6.9- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio

A presença de vários agentes químicos no meio, tais como metais e metalóides,

podem gerar radicias livres nas células. Com o intuito de verificar a formação de

radicias livres nas células após exposição ao selenito de sódio, as células foram

incubadas com diacetato de diclorofluoresceina (DCFHDA). O DCFHDA pode ser

captado pelas células de levedura e é transportado para o citoplasma onde é deacetilado

por esterases formando a diclorofluoresceína (DCFH) que fica aprisionada na célula. Ao

ser deacetilada DCFH pode reagir com os radicais livres resultando em oxidação desta

e, produção de um composto fluorescente (GOMES et al., 2005). Ao se avaliar a

formação de radicais livres após tratamento com selenito foi verificado um aumento na

formação de radicais livres verificado pelo aumento da intensidade de fluorescência nas

concentração de 0,1 mM e 0,25 mM, quando comparada às células em situação controle

(FIG. 13). Esse resultado demonstra que as células quando incubadas na presença de

selenito de sódio geram radicais livres, em grande proporção. O teste da

diclorofluoresceina não é quantitativa mas sim qualitativo (CIGUT et al., 2011) assim, o

aumento na intensidade da fluorescência é correlacionado com o aumento na geração de

radicais livres, situação potencialmente danosa para estas células.

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

controle 0,1 mM 0,25 mM

nan

om

ole

s d

e S

H li

vre

/ m

g d

e

pro

teín

a a

a,b

65

FIGURA 12: Formação de radicais livres na linhagem BY4741. Coluna (A) campo claro e (B)

diclorofluoresceína. Na linha (1) controle, na linha (2) 0,1 mM e na linha (3) 0,25 mM de

selênio.

6.10- Determinação do tipo de morte celular

Resultados apresentados anteriormente mostram que o selenito de sódio induz

morte celular (FIG. 7 e 8). Como a literatura reporta que existem diversos tipos de

morte celular (MADEO et al., 1999), foi de interesse verificar que tipo de morte celular

A B

1

2

3

66

o selenito de sódio induziria. Para tanto, foi usado corantes fluorescentes laranja de

acridina e brometo de etídeo.

O laranja de acridina é usada para caracterizar sinais de apoptose tais como,

cromatina condensada, e o brometo de etídeo caracteriza a integridade de membrana. A

laranja de acridina é permeável à membrana e cora o núcleo de verde, já o brometo de

etídeo se liga ao DNA sendo absorvido pelas células quando a membrana perde sua

integridade, nestas condições, sob microscopia de fluorescência, as células aparecem

coradas em vermelho (KALVELYTE, 2006).

Foi observado que na concentração de 0,1 mM apenas 6,5 % das células foram

coradas por laranja de acridina, concentração de 0,25 mM de selênio apenas 3% das

células foram coradas por laranja de acridina, sugerindo que estas células estão viáveis.

Usando a coloração por brometo de etídio, foi observado que nas duas concentrações,

mais de 90% das células são visualizadas coradas em vermelho, sugerindo que as

células apresentaram danos à membrana resultante do tratamento com selenito de sódio.

Após o tratamento das células com 0,1 mM de selênio, observou-se maior

quantidade de células coradas de verde por laranja de acridina (TAB. 3), o que indica

que estas células podem estar mortas por apoptose, evento que pode ser relacionado à

perda de potássio (quando as células foram incubadas na mesma concentração de

selênio, vide figura 10). A perda da homeostase, com o consequente desequilíbrio hidro-

iônico, é subsequente à saída de potássio sendo também uma consequência da geração

de ROS. A geração de ROS é considerada crítica para os eventos que levam à apoptose

em células animais (BORTNER & CIDLOWSKI, 2007). Também foi observado dano à

membrana, evidenciado pela coloração das células com brometo de etídio que poderia

levar a morte por necrose (TAB. 3).

Quando a concentração de selênio aumenta para 0,25 mM ocorreu uma

diminuição de células coradas por laranja de acridina. Apesar da integridade da

membrana da maioria das células terem sido alteradas (TAB. 3), algumas dessas células

não perderam a função metabólica e nem a capacidade de formar colônias após a

exposição ao selênio durante 24 horas, como foi visto nos testes de viabilidade (FIG.6).

Davey e Hexley (2010) ao corarem células com iodeto de propídio (que tem os

mesmos principios do brometo de etídeo), obsevaram que algumas células não estão

mortas, pois essas células mesmo tendo sua membrana danificada conseguem executar

reparos, não perdendo a capacidade de se dividirem.

67

TABELA 3 – Marcação com Laranja de Acridina e Brometo de Etídeo em células da linhagem

BY4741 tratadas por 24 horas com selenito de sódio para avaliação do tipo de morte celular.

Situação Laranja de acridina (% de

células coradas)

Brometo de etídio (% de

células coradas)

Controle 75 5 ± 0,23

0,1 mM de selênio 6,5 93,5 ± 0,04

0,25 mM de selenio 3 97± 0,12

6.11- Avaliação das alterações nucleares via coloração com DAPI

Células apoptóticas apresentam várias características morfológicas, uma destas

características é a condensação da cromatina. O núcleo das células apoptóticas apresenta

cromatina muito condensada que pode ser corada por 4,6’-diamino-2-fenilindol (DAPI),

substância capaz de penetrar as membranas de células apotóticas e corar a cromatina

(MADEO et al., 1999; PISON et al., 2000), sendo bem visualizada sob microscopia de

fluorescência. Para avaliar se a leveduras S. cerevisiae, após a incubação com selenito

de sódio, pode estar induzindo morte apoptótica, foi realizada a coloração com (DAPI).

Ao avaliarmos a célula após a coloração com DAPI, foi verificado que 1,4 % das

células apresentaram cromatina condensada no grupo controle. Quando incubadas com

selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM de selênio, ocorreu um aumento de 33,6

% na quantidade de células que apresentaram cromatina condensada. Quando a

concentração aumentou para 0,25 mM, o número de células com a cromatina

condensada diminuiu em 23,2% em relação a concentração de 0,1mM, porém

permaneceu 10,3 % maior que a situação controle.

Após o tratamento das células com 0,1 mM de selênio, visualiza-se um número

elevado de células coradas por laranja de acridina (TAB. 3) e aumento na intensidade da

fluorescência ocasionada pelo DAPI evidenciando maior proporção de células com

condensação da cromatina (TAB. 4) quando comparado com as células tratadas com

0,25 mM. Estas observações sugerem um maior número de morte com características

apoptóticas na concentração de 0,1mM. Também foi observado dano a membrana,

evidenciado pela coloração das células com brometo de etídio.

68

Quando a concentração de selênio aumentou para 0,25mM ocorreu uma

diminuição de células coradas por DAPI, e concomitantemente, ocorreu um aumento

nas células coradas por brometo de etídeo (TAB. 4). O fato de ser observada maior

quantidade de células coradas por brometo de etídeo indica que o corante conseguiu

passar pela membrana plasmática e, provavelmente, nestas condições, a membrana não

estava íntegra. Este fato indicaria um aumento no número de células sofrendo morte

celular com características necróticas.

Em trabalhos realizados por Izquierdo e colaboradores (2010) observou-se que a

presença de selenito inibe a indução de apoptose causando um maior índice de dano a

membrana e morte por necrose.

TABELA 4: Tratamento com DAPI – Porcentagem de células com cromatina condensada.

Situação (%) de células coradas por DAPI

controle 1,40 ± 1,63

0,1 mM de selênio 39,5 ± 1,15

0,25 mM de selênio 11, 69 ± 0,65

6.12- Atividade mitocondrial

As células de leveduras, em presença de glicose, realizam respiração anaeróbica

(fermentação), e em presença de glicerol (ou outra fonte de carbono não fermentável),

realizam respiração aeróbica, ou seja, necessitam da cadeia transportadora de elétrons

presente na mitocôndria (LUDOVICO et al., 2001).

Para avaliar se ocorreu dano às mitocôndrias quando as células foram incubadas

com selênio, realizou-se o experimento apresentado na FIG.13. Neste caso, as células

foram incubadas em meio contendo glicose como fonte de carbono (indução da

fermentação), e em meio contendo glicerol como fonte de carbono (indução do

metabolismo fosforilativo, ou respiração aeróbica). Nas duas condições (crescimento

em glicose e glicerol) houve suplementação com 0,1 e 0,25 mM de selenito de sódio.

Observou-se que as células que usavam o metabolismo fermentativo

(crescimento em glicose) foram capazes de crescer na presença de selenito de sódio, no

69

entanto, o crescimento é diminuído à medida em que a concentração de selênio

aumentou de 0,1 mM para 0,25 mM (FIG 13A).

Nas células que usavam o metabolismo respiratório (incubadas em glicerol como

fonte de carbono) a presença de selenito de sódio inibiu completamente o crescimento

independente da concentração de selênio usada (FIG.13B).

Os resultados obtidos demonstraram que em meio contendo glicose, as células

de leveduras foram capazes de crescer, mesmo em presença de 0,25 mM de selênio, no

entanto, o crescimento celular não ocorreu quando as células foram inoculadas na

presença de selênio em meio contendo glicerol como fonte de carbono. Assim, a

incorporação de selênio pelas células afetou a função mitocondrial levando a

interrupção na cadeia transportadora de elétrons, ou seja, na capacidade respiratória das

células. Esse comportamento sugere que a diminuição da morte por apoptose, tenha sido

ocasionada pela perda da funcionalidade mitocondrial.

De acordo com IZQUIERDO e colaboradores (2010) o selênio causa inibição da

apoptose e induz a morte por necrose com o aumento de sua concentração. A inibição

de apoptose causada por selênio e consequente morte por necrose, está relacionada a

danos na Aif1p. As funções mitocondriais são requeridas para indução de apoptose por

diferentes agentes. Assim, mutações que levam a interrupções na cadeia transportadora

de elétrons da mitocôndria de S. cerevisiae reduzem a morte por apoptose.

A proteína Aif1p de leveduras é homóloga ao AIF (fator de indução da

apoptose) de mamíferos, uma flavoproteína mitocondrial que sob estímulos apoptóticos

transloca para o núcleo, onde desempenha importante papel na indução da apoptose

independente de caspase. IZQUIERDO e colaboradores (2010) reportam que Aif1p é

uma proteína que faz a intermediação da apoptose induzida pelo estresse oxidativo em

S. cerevisiae.

A função mitocondrial é requerida para indução de apoptose por diferentes

agentes. Assim, mutações que levam a interrupções na cadeia transportadora de elétrons

da mitocôndria de S. cerevisiae reduzem a morte por apoptose. Essa redução na

apoptose foi observada no tratamento de leveduras com agentes como o cobre e

magnésio por LIANG & ZHOU (2007), utilizando ácido acético (LUDOVICO et al.,

2002), amiodarona (POZNIAKOVSKY et al., 2005), em estresse hiperosmótico

(SILVA et al., 2005) e em envelhecimento cronológico (LI et al., 2006).

70

A B

FIGURA 13: (A) Crescimento da levedura S. cerevisiae na presença de selenito de sódio em meio com

glicose, durante 24 horas, (B) crescimento da levedura S. cerevisiae na presença de selenito de sódio em

meio com glicerol, durante 24 horas.

6.13- Viabilidade de células após irradiação gama

A determinação de uma dose na qual a fração de células sobreviventes fosse de

0,01%, foi realizada pela determinação da viabilidade através da contagem do número

de colônias formadas em placas contendo meio sólido após incubação por 48 horas a

300C.

Foi observado que o aumento na dose de radiação gama diminuiu a capacidade

de formação de colônias de levedura. Quando a célula recebe doses entre 100 Gy e 250

Gy (a uma taxa de dose de 750 Gy/h aproximadamente) a capacidade de formar

colônias variou entre 40% a 15% em relação ao grupo controle (FIG. 14).

As células de leveduras toleram doses aproximadas de 400 Gy conseguindo

ainda formar colônias. No entanto, com dose inferior a 250 Gy, como demonstrado na

FIG.14, a levedura apresentou número expressivo de sobreviventes, fato importante

neste trabalho, pois era necessário encontrar valores de dose que não fosse letal, uma

vez que teríamos de realizar os experimentos com a fração de células sobreviventes.

As doses toleradas pelo S. cerevisiae foram superiores às toleradas por células

de mamíferos. De acordo com trabalhos deste laboratório, células de adenomas

pituitários não formaram colônias após serem irradiadas a 12 Gy (SOARES &

SANTOS, 2005). De acordo com Dadachova e Casadevall (2008), muitos fungos,

incluindo a levedura S. cerevisiae, e em especial os melanizados são muito

radioresistentes com valores de LD10 aproximando ou excedendo 1 kGy. Essa

71

radioresistência provavelmente se deu pela evolução desse grupo de microrganismos

que habitaram a Terra quando sua atmosfera era extremamente radioativa, no início do

período Cretáceo (HULOT & GALLET, 2003).

FIGURA 14: Fração de células sobreviventes após a irradiação gama.

6.14 - Peroxidação de lipídios após irradiação gama

Para avaliar se a peroxidação de lipídios sofreu alterações após a célula ser

submetida à irradiação gama, foi realizada a determinação da peroxidação de lipídios

em células incubadas com selenito de sódio na concentração de 0,1 mM de selênio e

células controle (sem selenito de sódio no meio). A concentração de selênio usada (0,1

mM) foi previamente selecionada observando-se os resultados anteriores (FIG.10).

Após a adição de 0,1 mM de selênio, não foi observado oxidação dos lipídios da célula.

Quando essas células foram irradiadas nas doses de 100, 165 e 200 Gy

(aproximadamente) não foram observadas alterações significativas entre as células sem

adição de selenito de sódio e submetidas apenas à irradiação, com as células do grupo

controle. Também não houve diferença significativa entre as células tratadas apenas

com irradiação e o grupo que recebeu apenas selenito de sódio. Ao comparar o grupo

que recebeu selenito de sódio e posteriormente radiação ionizante, observamos que a

dose de 100 Gy não alterou significativamente a quantidade de lipídios peroxidados em

relação aos demais grupos, porém, quando essa dose aumentou para 165 Gy ocorreu um

aumento na peroxidação lipídica quando se compara com as três situações (controle,

0

10

20

30

40

50

100 Gy 250 Gy 400 Gy

% d

a Fr

açã

o d

e c

élu

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revi

ven

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apó

s ir

rad

iaçã

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a e

m U

FC

Dose aproximada (Gy)

72

células apenas irradiadas e, célula tratada com selenito de sódio). Com o aumento da

dose para 200Gy, observou-se que os danos aos lipídios foram maiores que os danos nas

demais situações (controle, células apenas irradiadas e, células tratadas com selenito de

sódio). O dano observado com a dose de 200 Gy não é maior que o observado nas

células que receberam 165Gy (FIG.15). Observou-se pelo teste ANOVA que há

interação significativa entre o tratamento com selenito de sódio e a radiação nas doses

de 165 Gy e 200 Gy (Anexo I).

FIGURA 15: Determinação da peroxidação de lipídios após irradiação gama em células pré-tratadas com

selenito de sódio. Sendo (a) significativo em relação ao controle, (b) significativo em relação as

células submetidas à radiação gama, (c) significativo em relação as células incubadas com

selenito de sódio, (d) significativo em relação ao 100Gy, onde valor p < 0,05.

6.15- Resíduos sulfidrílicos livres após irradiação gama

Para avaliar a influência da irradiação gama nos grupamentos tióis livre

foi realizada a determinação da quantidade de resíduos sulfidrílicos em células após

tratamento com selenito de sódio nas concnetrações de 0,1 mM de selênio e irradiação.

A concentração de selênio foi previamente selecionada observando-se os resultados

anteriores (FIG. 11). Os resíduos sulfidrílicos totais foram determinados pelo método de

Ellman. O reagente de Ellman (5-5'-Dithio-bis (ácido 2-nitrobenzóico, DTNB) reage

com a cadeia lateral das sulfidrilas livres de cisteína para formar uma ligação S-S entre

a proteína e um ácido tionitrobenzóico (TNB) a modificação é geralmente rápida e

seletiva (ELLMAN, 1959).

0

20

40

60

80

100

100 Gy 165 Gy 200 Gy

pic

olm

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DA

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de

pro

teín

a


controle

radiação gama

0,1 mM de selênio

0,1 mM+ radiação

a, b,c, d

a, b,c,d

73

Cabe ressaltar que a maior proporção dos resíduos SH livres, encontrados nas

células se deve a presença de glutationa reduzida (GSH), além de outras proteínas que

apresentam resíduos cisteína, como por exemplo, as proteínas do sistema antioxidante

como tioredoxina e glutaredoxina. As concentrações intracelulares de GSH (glutationa

reduzida) são, geralmente, muito altas, da ordem de micromolar, assim, muitos autores

consideram que a determinação de resíduos SH é essencialmente uma determinação de

glutationa reduzida (GSH) (SHARMA et al, 2000).

Os resultados mostram que após a adição de 0,1 mM de selênio no meio

extracelular, ocorre uma diminuição dos resíduos sulfidrílicos livres. Quando as células

foram irradiadas nas doses de 100, 165 e 200 Gy (aproximadamente) não foram

observadas alterações significativas entre as células submetidas à radiação com o

controle, mas, houve diferença significativa entre as células irradiadas e o grupo que

recebeu apenas selênio (Figura 16). Ao comparar o grupo que foi incubado na presença

de selenito de sódio e posteriormente submetido à radiação gama, observamos que as

doses de 100 Gy e 165 Gy não alteram a quantidade de resíduos SH livres em relação

aos demais grupos, porém, quando a dose aumentou para 200 Gy, observamos que

ocorreu uma diminuição dos resíduos sulfidrílicos livres em relação ao grupo controle,

células irradiadas, e células tratada com selenito de sódio, o mesmo não ocorreu nas

irradiações realizadas com 100 Gy e 165 Gy. Observa-se pelo teste ANOVA que há

interação significativa entre o selênio e a radiação na dose de 200 Gy (Anexo I).

A incubação com selenito de sódio durante 24h foi capaz de diminuir,

significantemente, a quantidade de grupamentos tióis livres nos grupos tratados com

selenito de sódio (Na2SeO3) com ou sem radiação (FIG. 16), indicando um possível alvo

em proteínas do sistema de controle redox celular. Este resultado sugere que o selênio

agiu em proteínas que contem tais grupos SH como a glutationa, tioredoxina,

glutaredoxina, tioredoxina redutase, entre outras. Estas proteínas fazem parte do sistema

de controle redox celular indicando que selênio interfere no balanço redox pela

oxidação de grupamentos tióis (SKALSKA et al, 2009).

74

FIGURA 16: Determinação dos Resíduos sulfidrílicos totais após irradiação gama e tratamento com

selenito. Sendo (a) significativo em relação ao controle, (b) significativo em relação as células submetidas

à radiação gama, (c) significativo em relação ao 0,1 mM, (d) significativo em relação ao 0,1mM Se

irradiada 200Gy, onde valor p < 0,05.

6.16- Avaliação da geração de espécies reativas de oxigênio após tratamento com

selenito de sódio e radiação gama.

Radicais livres podem ser formados após a exposição de células à radiação

ionizante, agentes químicos presentes no meio ambiente e metais (HALLIWELL &

GUTTERIDGE, 2007). Espécies reativas de oxigênio (ROS) também são produzidas

naturalmente em células eucariotas pelo metabolismo celular. As defesas antioxidantes

tais como superóxido dismutase, catalase, tiorredoxina entre outras são responsáveis por

detoxificar essas espécies. Quando ROS são produzidas excessivamente e a capacidade

antioxidante diminui, as células ficam sujeitas a uma condição conhecida como estresse

oxidativo (HALLIWELL & GUTTERIDGE, 2007).

Células da levedura S. cerevisiae durante o crescimento incorporam diacetato

diclorofluoresceína (DCFHDA) e no citoplasma é deacetilada por esterases formando a

diclorofluoresceína (DCFH). Sem as moléculas de acetato, DCFH é susceptível ao

ataque de radicais livres, resultando na oxidação de DCFH e produção de um composto

altamente fluorescente (GOMES et al., 2005).

0

1

2

3

4

100 Gy 165 Gy 200 Gy

nan

om

ole

s d

e S

H /

mg

pro

teín

a


controle

radiação gama

0,1 mM de selênio

0,1mM Se + radiação

a,b a,b,d

a,b,c

a,b,d

a,b

a,b,d

75

Analisando-se a FIG.17 verificou-se, na situação controle, que praticamente não

houve geração de radicais livres, pois, quase não se observa fluorescência. O mesmo

fenômeno foi observado em todas as condições testadas.

Quando foi avaliada a formação de radicais livres após o tratamento com

selenito de sódio nas concentrações de 0,1 mM e 0,25 mM de selênio (FIG. 12) usando-

se a mesma metodologia, observou-se aumento na formação de radicais livres indicado

pelo aumento da intensidade de fluorescência. No entanto, nas condições de irradiação

na presença e ausência de selenito de sódio, o fenômeno não foi observado (FIG. 17).

76

FIGURA 17: Análise da formação de radicais livres na linhagem BY4741. Coluna (A) campo claro e (B)

diclorofluoresceína. Na linha (1) controle, na linha (2) irradiação a 200Gy, na linha (3) 0,1mM

de Se, na linha (4) 0,1mM de Se e irradiação a 200Gy.

A B

1

2

3

4

77

7- CONCLUSÃO

- A curva de crescimento das células da levedura S. cerevisiae (linhagem

selvagem) realizada em meio líquido, durante 24 horas, demonstrou que as células

crescem em presença de selenito de sódio em concentrações que variam de 0,25 a 2,5

mM. Células incubadas em meio contendo selenito de sódio 5 mM tem o crescimento

totalmente inibido;

- Células inoculadas em meio sólido suplementado com concentrações

crescentes de selenito de sódio, não apresentaram formação de colônias a partir da

concentração de 0,25 mM, em todas as diluições empregadas;

- As células mantiveram a capacidade de divisão celular evidenciada pela

formação de colônias até 48 horas após exposição a 0,1 mM de selenito de sódio.

Exposição a 0,25 mM impede a formação de colônias após 24 horas;

- Avaliação da viabilidade metabólica realizada com o uso do corante floxina B

em células incubadas em presença de 0,1 e 0,25 mM mostrou que uma fração das

células mostra viabilidade metabólica mesmo na concentração de 0,25 mM de selenito

de sódio;

- As células da levedura S. cerevisiae quando incubadas por 24 h na presença de

0,1 mM de seleênio incorporaram 900 g de Se/g de peso seco. Com suplementação de

0,25mM de selênio a incorporação foi de 1200 g Se/g de peso seco.

- Testes de retenção do selênio incorporado demonstraram que após 24 horas na

ausência de selenito de sódio, parte do selênio incorporado na concentração de 0,25 mM

não permanece na célula.Por outro lado, todo o selênio incorporado na concentração de

0,1 mM é mantido pelas células;

- Exposição de células em meio suplementado com 0,25 mM de selênio promove

danos aos lipídios. Na concentração de 0,1 mM de selênio não foi observado aumento

da peroxidação lipídica quando comparado com a situação controle;

- Exposição de células em meio suplementado com 0,1 mM de selenito de sódio

provocou a diminuição dos resíduos sulfidrílicos. A diminuição dos resíduos tióis foi

mais acentuada nas células incubadas em presença de 0,25 mM de selenito de sódio;

- A presença de selenito de sódio no meio leva as células a iniciarem o processo

de morte celular. Exposição de células em meio suplementado com 0,1 mM de selênio

parece iniciar um processo de morte com sinais que caracterizam a apoptose. Com o

78

aumento da concentração de selênio para 0,25 mM existe maior dano a integridade da

membrana e as células aparentemente exibem características de morte necrótica;

- O selênio parece causar danos à mitocôndria das leveduras, pois estas, na

presença de selenito de sódio, cresceram somente em meio contendo glicose como fonte

de carbono;

- Quando a célula é apenas irradiada, ou quando ela recebe somente 0,1mM

selênio, não foi observado aumento na peroxidação lipídica. Após a incubação com

selenito de sódio a presença de selênio deixa as células mais sensíveis à radiação

ionizante levando a um aumento nos danos aos lipídios quando essas células são

tratadas com selênio e posteriormente irradiadas a 165Gy e 200Gy. Este efeito não foi

observado em células irradiadas a 100Gy;

- A incubação das células na presença de selenito de sódio e a radiação gama

usados isoladamente promovem diminuição dos resíduos sulfidrílicos livres;

- O tratamento com 200 Gy de radiação gama nas células que foram incubadas

com selenito de sódio previamente, promoveu maior redução dos resíduos tióis, quando

comparado com os mesmos tratamentos realizados isoladamente (somente dose de 200

Gy ou somente incubação com selenito de sódio).

- Células tratadas com selenito de sódio, ou irradiadas, não apresentaram

diferenças na geração de radicais livres como mostrado pelo teste da

diclorofluoresceina.

Em resumo a levedura S. cerevisiae apresenta boa capacidade para incorporar

selênio. O selênio não é liberado da célula quando a incorporação foi realizada em meio

contendo 0,1 mM. Concentração igual, ou maior que 0,25 mM, impedem o crescimento

e levam a morte celular. A incubação das células com selenito de sódio, na concentração

de 0,1 mM de selênio, induz morte com características apoptóticas, em células que estão

usando o metabolismo fermentativo. O tratamento das células com 0,25 mM de selênio

ocasiona maior oxidação de lipídeos, perda da integridade de membrana, diminuição

dos grupamentos tióis livres e, inibição da função mitocondrial. Nesta situação as

células apresentam características de morte por necrose. A morte por necrose também é

um indício de dano à mitocôndria, já que a mitocôndria desempenha um importante

papel na morte por apoptose.

Células que incorporaram previamente o selênio foram mais susceptíveis ao

tratamento com radiação ionizante. A consequência do pré-tratamento com selenito de

sódio foi o aumento nos danos aos lipídios e diminuição nas defesas antioxidantes da

79

célula evidenciada pela diminuição dos grupamentos tióis livres em células submetidas

à radiação gama. O conjunto dos resultados obtidos indica que o selênio poderia agir

como radiossensibilizador, o que poderia sugerir que a suplementação de selenito de

sódio, seria benéfica em protocolos de radioterapia por induzir a morte celular,

preferencialmente, a morte apoptótica. A possibilidade da indução de apoptose em

células submetidas à radiação com doses menores é sempre importante para minimizar

os efeitos nocivos infligidos às células e tecidos normais.

80

8- REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ARTEEL, G. E.; SIES, H. The biochemistry of selenium and the glutathione system.

Environmental Toxicology and Pharmacology. v. 10 , p 153–158, 2001.

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91

ANEXO I

1. Interações entre os fatores selenito de sódio e radiação na peroxidação

lipídica e resíduos sulfidrílicos livres.

O estudo da influência do selênio nas células submetidas à radiação gama foi

avaliado observando-se a variação na peroxidação de lipídios, resíduos sulfidrílicos

livres e formação de radicais livres, após a incubação por 24 horas com selenito de

sódio a uma concentração de 0,1 mM de selênio. Como o teste da diclorofluoresceina

(formação de radicais livres) realizado foi apenas qualitativo, este não foi usado para

esta análise estatística. Assim, foram testados dois fatores (radiação e selenito de sódio)

cada um com dois níveis de fator (presença ou ausência de radiação/presença ou

ausência de selenito de sódio).

Quando vários fatores são de interesse em uma análise experimental, um

experimento fatorial deve ser usado, ou seja, todas as combinações possíveis dos níveis

dos fatores são investigadas. Quando a diferença na resposta entre os níveis de um fator

não é a mesma entre os níveis dos outros fatores, há uma interação entre estes fatores

(MONTGOMERY & RUNGER, 2009). Os gráficos a seguir demonstram onde ocorreu

interação entre os fatores quando avaliou-se a peroxidação lipídica e os resíduos

sulfidrílicos livres. Quando não há interação entre os fatores as retas apresentam

inclinações próximas, caso contrário há interação.

Observa-se, na Figura 1, que fixando-se o nível de um fator, como ausência de

radiação (linha preta), e alterando os níveis do fator selênio (de controle para 0,1 mM)

há uma pequena alteração na concentração de MDA/mg de proteína, mas fixando-se o

outro nível do fator radiação (presença de radiação, linha vermelha) e alterando

novamente os níveis do fator selênio (também de controle para 0,1 mM) há um aumento

significativo na concentração de MDA/mg de proteína, ou seja, existiu variação na

resposta concentração de MDA/mg proteína.

Observando-se apenas o fator selenito de sódio (de controle para 0,1 mM de selênio)

é diferente quando analisada em diferentes níveis do fator radiação. Análise semelhante

também pode ser feita para as figuras 2 e 3.

92

FIGURA 1: Análise entre os fatores selênio e radiação na peroxidação lipídica com dose de

165Gy. Sendo (165) adição de selenito de sódio, (165i) selenito de sódio e radiação,

sendo que a concentração de selênio foi de 0,1mM, onde valor p<0,05 (em destaque).

93

FIGURA 2: Análise entre os fatores selênio e radiação na peroxidação lipídica com dose de


sendo que a concentração de selênio foi de 0,1mM, onde valor p<0,05 (em destaque).

94

FIGURA 3: Análise entre os fatores selênio e radiação nos resíduos sulfidrílicos com dose de


sendo que a concentração de selênio foi de 0,1mM onde valor p<0,05 (em destaque).

95

ANEXO II

FIGURA 01: Placas de Petri acopladas ao suporte de PVC e isopor para serem irradiadas no Laboratório

de Irradiação Gama (LIG).

FIGURA 02: Posicionamento do suporte com as placas de Petri à 50 cm da fonte.

96

FIGURA 03: Vista lateral do posicionamento do suporte em relação a fonte de 60Co.

FIGURA 04: Suporte posicionado com as placas de Petri em frente à fonte de Co60.

Influência da ação oxidante do selênio na indução da ......

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