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Ce guide a été réalisé par :

- Dr Abderrahmane LAAMRANI EL IDRISSI : Chef du Service des MaladiesParasitaires

- Dr Mohammed LAKRANBI- Dr Souad BOUHOUT- Mr Mohammed ELABANDOUNI- Mr Haddou NHAMMI

- Mme Btissam AMEUR : Chef du Service de la Lutte AntiVectorielle- Mr Tachfine HERRAK- Mr El Hassane NACHI- Mr Mohamed BOUHRARA

- Mr Mohamed RHAJAOUI : Chef du Département de Parasitologie àl’Institut National d’Hygiène

- Mme Chafika FARAJ- Mme Hajiba EL FELLAH

Sous la Direction des :- Dr Omar EL MENZHI : Directeur de l’Epidémiologie et de Lutte

contre les Maladies- Dr Abderrahmane BENMAMOUN : Chef de la Division des Maladies

Transmissibles


5....................

SommairePréface...................................................................................................................................7

1 - Description des leishmanioses-maladies..............................................................9

1.1. La leishmaniose viscérale.............................................................................................11

1.1.1. La leishmaniose viscérale de l’enfant .......................................................................11

1.1.2. Autres formes cliniques de la leishmaniose viscérale...............................................13

1.2. Les leishmanioses cutanées ..........................................................................................13

1.2.1. La leishmaniose cutanée à L.tropica .........................................................................14

1.2.2. La leishmaniose cutanée à L.major ...........................................................................16

1.2.3. La leishmaniose cutanée à L infantum ......................................................................18

1.3. Diagnostic des leishmanioses.......................................................................................18

1.3.1. La leishmaniose viscérale..........................................................................................18

1.3.2. Les leishmanioses cutanées .......................................................................................19

1.3.3. Les techniques de diagnostic.....................................................................................19

1.4. La prise en charge thérapeutique..................................................................................23

1.4.1. La leishmaniose viscérale..........................................................................................23

1.4.2. Les leishmanioses cutanées .......................................................................................26

2. Considérations éco-épidémiologiques..............................................................................29


2.2. La leishmaniose cutanée à L.major ..............................................................................32

2.3. La leishmaniose cutanée à L.tropica ............................................................................33

3 - Action sur le parasite ..................................................................................................35


3.1.1. Action chez l’homme.................................................................................................37

3.1.2. Action sur le réservoir de parasites animal ...............................................................38

3.2. Les leishmanioses cutanées ..........................................................................................40

3.2.1. Activités de surveillance............................................................................................40

3.2.2. Action sur les rongeurs..............................................................................................44

4 - Action sur le phlébotome vecteur....................................................................51

4.1. Caractéristiques des vecteurs........................................................................................53

4.2. Surveillance entomologique .........................................................................................61

4.3. Lutte contre les vecteurs...............................................................................................66

5 - Fiches techniques..............................................................................................69

Fiche technique n°1 : Le prélèvement et le diagnostic biologique des leishmanioses ......71

Fiche technique n°2 : Traitement de la leishmaniose viscérale .........................................78

Fiche technique n°3 : Traitement des leishmanioses cutanées...........................................80

Fiche technique n°4 : Fiche synthétique du traitement des leishmanioses ........................82


....................6

Fiche technique n°5 : Conduite à tenir devant la découverte d’un nouveau cas de

leishmaniose cutanée..............................................................................................................83

Fiche technique n°6 : conduite à tenir devant un nouveau foyer

de la leishmaniose cutanée .................................................................................................84

Fiche technique n°7 : Technique d’imprégnation des moustiquaires ...............................85

Fiche technique n°8 : Organisation des opérations d’aspersions intra domiciliaires dans le

cadre de la lutte contre les leishmanioses ..............................................................................88

Fiche technique n°9 : Insecticide à base de l’alphacypermethrine100 G/litre Suspension

Concentrée..............................................................................................................................96

Fiche technique n°10 : schéma organisationnel des activités de la lutte contre les

leishmanioses..........................................................................................................................98

Fiche technique n° 11 : Structure organisationnelle chargée de la gestion du Programme de

lutte contre les Leishmanioses ...............................................................................................99

6 - Indicateurs d’évaluation ............................................................................................101

7 - Système d’Information...............................................................................................109

7.1. Bon individuel de prélèvement ...................................................................................111

7.2. Bon collectif de prélèvement ......................................................................................112

7.3. Dépistage de masse ................................................................................................... 114

7.4. Enquête épidémiologique autour d’un cas de leishmaniose ......................................118

7.5. Registre des cas......................................................................................................... 121

7.6. Liste des cas de leishmaniose (cutanée et viscérale) .................................................122

7.7. Rapport Trimestriel ....................................................................................................123

7.8. Feuille d’enregistrement des examens de laboratoire................................................126

7.9. Evaluation des méthodes de piégeage........................................................................127

7.10. Evaluation de l’introduction des moustiquaires imprégnées de la Déltaméthrine au

niveau de la localité................................................................................................................129

7.11. Evaluation de la surveillance des phlébotomes vecteurs ..........................................132

7.12. Evaluation de la surveillance mammalogique...........................................................133

7.13. Evaluation de la lutte contre les phlébotomes vecteurs des leishmanioses ..............136

7.14. Evaluation de l’introduction des moustiquaires........................................................137

7.15. Rapport sur l’aspersion des localités.........................................................................139

Liste des figures .............................................................................................................. 140

Bibliographie...........................................................................................................141


7....................

Préface

Les leishmanioses, qui représentent des entités d'une grande diversité

clinique et épidémiologique, constituent un problème de santé publique dans

notre pays. Ce problème ainsi identifié est actuellement intégré dans les

priorités du ministère de la Santé.

Le lancement du programme de lutte contre les leishmanioses en 1997, a

été le couronnement de plusieurs années de recherches éco-épidémiologiques

dans les différentes régions du pays. Ces recherches ont permis de cerner la

problématique des leishmanioses et d’élaborer une stratégie de lutte traduite

en directives visant à asseoir les bases techniques du programme de lutte. Tout

cet arsenal technique a fait l’objet d’un guide des activités de lutte qui a été

édité en 1997.

Après plus de dix ans de lutte, il s’avère nécessaire de réadapter les

activités à la situation épidémiologique actuelle qui connaît non seulement

une extension des aires de transmission mais aussi une morbidité croissante.

Ainsi, le guide des activités de lutte contre les leishmanioses « Edition

2010», qui est une mise à jour de la précédente édition, a pour objectif

d’ajuster les directives pour les rendre mieux adaptées au contexte

épidémiologique actuel. Cette édition contient les aspects cliniques,

parasitologiques et entomologiques ainsi que des fiches techniques pratiques

concernant les différents aspects de la lutte.

Ce document constitue donc, une référence et un outil de travail

indispensable pour le personnel de santé afin d’améliorer la gestion des

activités de lutte dans un cadre stratégique intersectoriel adapté au contexte

épidémiologique local.

Yasmina BADDOU

Ministre de la Santé


....................8


9....................

1- DESCRIPTION

DES LEISHMANIOSES - MALADIES


....................10


11....................

Les leishmanioses sont des parasitoses communes à l’homme et auxanimaux. Elles sont dues à des protozoaires flagellés ( les leishmanies) et transmisespar les piqures d’insectes, les phlébotomes.

Les leishmanies sont des parasites endo-cellulaires du système cellulairephagocytaire mononuclée des vertébrés. Au Maroc, selon leur localisation profondeou superficielle, elles vont déterminer deux entités cliniques : la leishmanioseviscérale et les leishmanioses cutanées.

1-1- La leishmaniose viscérale

La leishmaniose viscérale, dont le réservoir est le chien (Fig.1), est fréquente chezl’enfant mais peut toucher l’adulte.

1-1-1- La leishmaniose viscérale de l'enfant

La leishmaniose viscérale est caractérisée par une hyperplasie histiomonocytaireatteignant la rate, la moelle osseuse, les ganglions lymphatiques, le foie et parfois lamuqueuse du grêle. Elle est surtout l'apanage de l’enfant. Au Maroc, le parasiteresponsable est L.infantum MON1.

Figure. 1 : Cycle évolutif de la Leishmaniose viscérale


....................12

• Période d’incubation

Elle est silencieuse et dure 1 à 2 mois, parfois davantage.

• Période d’invasion

Elle est insidieuse. A l'interrogatoire, le patient présente une pâleur, unamaigrissement, une fatigue et des troubles du caractère et du sommeil. Cessymptômes sont suivis des accès de fièvre intermittents et capricieux dans leurdurée comme dans leur intensité.Le diagnostic à ce stade est difficile, même en zone d’endémie, d’autant plus quemanque encore l’hépato-splénomégalie.

• Période d’état

Quelques semaines ou mois plus tard, le tableau se complète et associe unsyndrome général à un syndrome spléno-hépato-ganglionnaire.

• Syndrome général

La fièvre est constante, "folle", anarchique, désarticulée, avec souvent plusieursclochers thermiques dans la journée, rebelle à tous les traitements habituels.

La pâleur extrême, "vieille cire"; traduit l’anémie qui s’accompagne demanifestations corollaires habituelles.

L’amaigrissement des membres et du thorax contraste avec l’augmentation duvolume de l’abdomen.

• Syndrome spléno-hépato-ganglionnaire

La rate est palpable, souvent énorme, atteignant ou dépassant l’ombilic, ferme, lisse,mobile, indolore. Elle est classiquement marquée d’une profonde incisure du bordantérieur.

L’hépatomégalie est plus discrète; le foie est ferme, indolore et ne s’accompagne nid’ascite ni d’ictère.

Les adénopathies souvent tardives parfois inaugurales sont inconstantes. Lesadénopathies superficielles sont fermes, mobiles, indolores. Les adénopathiesprofondes, notamment médiastinales, n’ont aucune traduction fonctionnelle et sontdécouvertes à la radiographie.


13....................

• Autres signes

On peut encore noter une diarrhée aiguë, un syndrome hémorragique (purpurathrombopénique).

• Evolution

En l’absence de traitement, la maladie est mortelle. L’enfant, cachectique meurtemporté par une surinfection bactérienne, un syndrome hémorragique ou unépisode dysentérique.

1-1-2- Autres formes cliniques de la leishmaniose viscérale

La leishmaniose viscérale de l’adulte

Bien que fréquente chez l'enfant, la leishmaniose viscérale peut toucher l'adulte. Ledébut de la maladie est plus brutal avec des accès fébriles pseudo-palustres. Lesyndrome spléno-hépato-ganglionnaire est moins net. L'évolution est aussi gravemais plus lente.

Une sérologie HIV doit être recherchée systématiquement.

La leishmaniose viscérale de l'Immunodéprimé

L'immunodéprimé, quelque soit la cause (greffé, chimiothérapie, SIDA..) présentedes formes particulières de leishmaniose viscérale.

La symptomatologie à la phase d'état est grave parfois trompeuse.

Les signes digestifs sont plus fréquents. Le diagnostic parasitologique est aisé parcontre le diagnostic sérologique est fréquemment négatif.

Les résistances aux antileishmaniens usuels sont fréquentes.

1-2- Les leishmanioses cutanées

Au Maroc actuellement, les leishmanioses cutanées sont provoquées par troisespèces de leishmanies :

L. major, L. tropica et parfois L. infantum.


....................14

1-2-1- La leishmaniose cutanée à L.tropica

Elle est due à L. tropica MON 102. C’est la forme de leishmaniose, dont le réservoir estl’Homme, qui se transmet entre les humains à travers la piqure d’un phlébotome .Cetteforme dite sèche, est retrouvée dans les zones arides et semi-arides du pays.(Fig .2)

Figure. 2 : Cycle évolutif de la leishmaniose cutanée à L tropica MON102


Elle varie de 20 jours à 8 mois, mais peut atteindre 2 ans.


Les lésions sont uniques ou multiples et siègent au point d'inoculation.Les parties atteintes sont les zones découvertes du corps, accessibles auxphlébotomes (la face, les membres supérieurs et inférieurs…).

La lésion débute par une tache rouge, devenant vite une papule qui persiste,s'accroît, se recouvre de fines squames et repose sur une base infiltrée. Elles’entoure d’une auréole rouge mais demeure parfaitement indolore, parfoisprurigineuse (Fig .3).


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La peau s’ulcère au centre de la papule, un liquide jaunâtre s’écoule et devient unecroûte. Cette croûte s’épaissit, adhère à l’ulcération sous-jacente qu’elle recouvreentièrement tandis que la lésion s’agrandit. Elle peut alors atteindre quelquescentimètres de diamètre (Fig .4).Sous la croûte, on découvre un cratère peu profond, à bords taillés à pic, à fondsuintant, papillomateux, rouge reposant sur l’induration qui en forme la base.Il est rare que cette lésion s’accompagne d’adénopathies satellites. A coté de cetteforme clinique typique, il existe d'autres formes nodulaires non ulcérées ou desformes extensives ulcéro-végétantes (tuberculoides).

N.B : La couverture de la lésion au cours du traitement est une mesure obligatoiredans la forme de leishmaniose cutanée à L.tropica car une lésion non couverte estune source d’infestation du phlébotome et de transmission de la maladie.

Figure. 3 : Lésion unique de la leishmaniose cutanée à L tropica


....................16

• Evolution

En l’absence de traitement, les lésions inflammatoires sont souvent surinfectées etguérissent très lentement (en plusieurs mois) laissant ainsi une cicatrice indélébile,glabre, dépigmentée, ressemblant aux traces de la vaccination antivariolique.

1-2-2- La leishmaniose cutanée à L.major

La leishmaniose cutanée à L.major, dont le réservoir est le rongeur, se distingue parl’évolution plus rapide, la multiplicité, la grande taille et le caractère plus creusantet plus inflammatoire des lésions (Fig. 5).

Figure. 5 : Cycle évolutif de la Leishmaniose cutanée à L major

Figure. 4 : Lésion unique ulcérée de la leishmaniose cutanée à L tropica


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Elle est nettement plus courte, en moyenne 10 à 45 jours et dépasserarement 4 mois.


Elle correspond à la phase de la papule non ulcérée. Elle est brève, n’excédant pasune semaine.


Elle commence avec l’ulcération de la lésion

primaire. Cette ulcération, indolore,

s’agrandit rapidement pour atteindre un

diamètre de 2 à 8 cm. Parfois, il se forme un

cratère entouré d’un bourrelet périphèrique

infiltré. L’ulcération repose sur une base

indurée qui n’adhère pas au plan profond.

Dans d’autres cas, la lésion prend un aspect

fungiforme et se surélève (Fig. 6).

Souvent, il existe une réaction lymphangitique avec des adénopathies dont la taillevarie de celle d’un pois à celle d’une noisette.

• Evolution

En dehors du traitement, l’évolution estchronique, aboutissant à la guérison dansmoins de 6 mois, au prix d’une cicatriceinesthétique particulièrement au niveau dela face (Fig. 7).

Figure. 7 : cicatrice de leishmaniosecutanée à L. Major

Figure. 6 : lésion ulcéro-végétante duvisage


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1-2-3- La leishmaniose cutanée à L. infantum Des formes cutanées sporadiques de leishmaniose , dues à L. infantum MON 24 ontété observées. Il s’agit, en général d’une lésion unique, ulcéro-croûteuse ou lupoïde,siégeant souvent dans les parties découvertes et pouvant évoluer pendant au moinsdeux années ( Fig. 8).

1-3- Diagnostic des leishmanioses

1-3-1- La leishmaniose viscérale

• Diagnostic clinique

Il est difficile même en zone d’endémie. La leishmaniose viscérale simule toutes les affectionsfébriles avec splénomégalie : paludisme, salmonelloses, certaines viroses, tuberculosehépatosplénique et surtout hémopathies malignes et lymphomes.

• Diagnostic biologique

- Signes de présomption

• L'hémogramme met en évidence une insuffisance médullaire :- une anémie normochrome- une leuconeutropénie constante parfois importante autour de 2000 GB/mm3

- une thrombopénie modérée.• La vitesse de sédimentation est augmentée dépassant 100 mm à la première

heure.• L’intradermoréaction à la leishmanine est généralement négative au cours de la

maladie, par contre celle-ci est positive dans les cas subcliniques et aprèsguérison.

• Les tests sérologiques permettent de détecter des taux élevés d’anticorps anti-leishmaniens au cours de la maladie.

Figure. 8 : La leishmaniose cutanée à L. infantum


19....................

- Examen direct de certitude

Il est apporté essentiellement par la mise en évidence des leishmanies dans un frottisde moelle osseuse et/ou éventuellement dans une culture sur milieu NNN (Novy-Nicolle-McNeal).

Dans certains cas particuliers, le parasite est retrouvé dans une biopsie du foie oude l'intestin grêle.

1-3-2- Les leishmanioses cutanées

• Diagnostic clinique

Le polymorphisme des leishmanioses cutanées est tel qu’elles peuvent simuler denombreuses autres dermatoses : furoncle, tuberculose, syphilis, lèpre, mycose,épithélioma.

L’absence de douleurs, sauf en cas de surinfection, le siège aux zones découverteset la chronicité sont les caractères cliniques distinctifs.

En pratique, chez une personne ayant séjourné ou habitant en zone d’endémie,toute lésion cutanée persistant plus de 2 semaines et rebelle aux traitementsclassiques doit faire évoquer le diagnostic de la leishmaniose.

• Diagnostic biologique

• L’intradermoréaction de Monténégro, effectuée avec un antigèneleishmanien de culture, est positive dans 70 à 100% des cas, mais le resteindéfiniment, ce qui lui ôte toute valeur diagnostique en zone d’endémie, ellea néanmoins un intérêt dans le diagnostic rétrospectif devant des lésionscicatricielles ou atypiques et dans les enquêtes épidémiologiques.

• Le parasite est mis en évidence sur un frottis du produit de raclage de la lésionou une biopsie de celle-ci.

1-3-3- Techniques de diagnostic

a- Diagnostic parasitologique direct :

C'est la mise en évidence des leishmanies dans :- Un prélèvement cutané dans le cas des leishmanioses cutanées.- Un prélèvement de moelle osseuse ou parfois dans le produit de ponction debiopsie hépatique dans le cas de la leishmaniose viscérale. Il est à noter que laponction de la rate est déconseillée car le risque de rupture traumatique iatrogèneest trop important.


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‡ Le prélèvement

• Les leishmanioses cutanées :

Raclage des lésions :

L’ulcération cutanée est soigneusement désinfectée après avoir enlevé les croûtesqui la recouvrent.

Le raclage est réalisé avec un vaccinostyle

stérile à usage unique avec la partie non

piquante dans la partie infiltrée loin des

zones surinfectées et du centre de la

lésion. Le produit de raclage et le recueil

des sérosités serviront à la confection des

frottis ainsi que pour la réalisation des

cultures (Fig. 9).

Biopsie cutanée :

Elle se fait à l'aide d'un punch. Elle permet de réaliser des coupes histologiques, desappositions sur lame ou des cultures après broyage du prélèvement. La biopsie estindiquée lors de lésions papulo-nodulaires non ulcérées.

• La leishmaniose viscérale

C'est le prélèvement de moelle osseuse qui est indiqué en première intention. Il sefait soit par ponction sternale ou de la crête iliaque.Le prélèvement est douloureux et doit être réalisé par un personnel médicalexpérimenté en milieu hospitalier avec observation scrupuleuse des règlesd'asepsie.La moelle osseuse prélevée servira à la confection de frottis mince et/ou pour laculture.

‡ La mise en évidence des parasites sur le frottis

Les frottis de moelle osseuse ou des sérosités cutanées sont fixés puis colorés auGiemsa.Les leishmanies sont recherchées au microscope optique (objectif 100).Ils se présentent sous forme amastigotes ou micromastigotes qui sont des élémentsimmobiles strictement intracellulaires. Lors de la confection du frottis, les cellulesmacrophagiques hôtes peuvent éclater et les leishmanies se trouvent éparpillées surle frottis.

Figure. 9 : Technique du prélèvementcutané


21....................

Ce sont des éléments ronds ou ovoïdes de 2 à 6 µm de diamètre. Le cytoplasme estbleu contenant 2 ponctuations : l'une est grosse excentrée, rouge violacéecorrespondant au noyau, l'autre est bacilliforme rouge vermeil correspondant aublépharoplaste.

‡ La culture

La culture est réalisée, entre autres, sur milieu NNN ( Novy-Nicolle-Mc Neal), avecajout ou non de suppléments nutritifs.Le milieu NNN est un milieu biphasique constitué par la gélose au sang frais delapin décomplémenté ou non.

La culture est utile pour :

• Le diagnostic par la mise en évidence de la forme promastigote après 7 à 30jours de culture. Ce sont des formes flagellées mobiles et libres.

• L’identification d'espèces et des zymodèmes. Elle peut être réalisée avec destechniques de biologie moléculaire et enzymatique.

‡ L'identification des espèces

L'identification des espèces est primordiale pour la lutte contre les leishmanioses etnécessite des techniques plus sophistiquées (PCR et typage enzymatique, testsimmunologiques).

L'identification des espèces est impossible à faire au microscope optique. Il estnécessaire d'utiliser d'autres techniques plus sophistiquées. L'intérêtépidémiologique de cette identification est d'adapter les méthodes de lutte auréservoir de parasites qui diffère d'une espèce à l'autre.

La technique de référence reste l'identification enzymatique qui permet de trouverl'espèce et le zymodème en cause. Par ailleurs, la technique PCR (Polymerase ChainReaction) permet une approche de l'identification d'espèce directement sur leprélèvement.

b- Immunodiagnostic des leishmanioses :

Concernant les leishmanioses cutanées, l'immunodiagnostic est peu opérantpuisque la sérologie est rarement positive et à des taux d'anticorps très faible. L'IDRde Monténégro, malgré sa sensibilité, a peu de valeur diagnostique en zoneendémo-épidémique car elle reste indéfiniment positive après une contamination.Elle garde toutefois un intérêt épidémiologique.


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Par contre pour la leishmaniose viscérale, la sérologie offre une approchediagnostique très appréciable.

Les techniques les plus utilisées sont l'Immunofluorescence indirecte (IFI) qui restele test de référence et la technique ELISA qui a les mêmes qualités que laprécédente. Le DAT et le FAST sont un excellent test de dépistage, d'utilisation plusfacile et donc à la portée de laboratoires périphériques.

‡ Intérêt : La sérologie, méthode moins invasive que les prélèvements de moelleosseuse, présente plusieurs avantage. elle permet :

• Le diagnostic précoce d’orientation à confirmer par l’examen parasitologique.• La Réalisation des études séro-épidémiologiques.• Le suivi sérologique de l'évolution sous traitement.

‡ Principales techniques :

• L'IFI : c'est la technique la plus fiable. Elle utilise des antigènes figurés. Les titresd'anticorps sont élevés dans la majorité des cas de leishmaniose viscérale. Saspécificité reste très élevée. Elle présente une bonne complémentarité avec l'ELISA.Néanmoins, c'est une technique qui nécessite la disponibilité des réactifs et d'unmicroscope aux ultraviolets.

• L'ELISA : elle utilise des antigènes purifiés. Elle a les mêmes qualités de sensibilitéet de spécificité que l'IFI. Elle permet une lecture objective et le traitement d’unegrande quantité de sérum lors d'une étude séro-épidémiologique. Mais ellenécessite un appareillage spécial et côuteux.

• Le DAT et FAST : se sont des tests d'agglutination directe.

La technique est plus simple et elle peut être pratiquée dans un laboratoirepériphérique peu outillé.

Leur sensibilité élevée leur confère la qualité de test de dépistage malgré unespécificité modérée.


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1-4- La prise en charge thérapeutique

1-4-1- La leishmaniose viscérale

a) Les dérivés pentavalents de l'antimoine

Antimoine de méglumine ou Glucantime® est le traitement de choix au Maroc.

• Le principe actif est l'antimoine pentavalent (Sb5+) d'où l'expression des doses enmg de Sb5+/kg/j conformément aux recommandations internationales.

• Présentation : ampoule de 5 ml de solution dosée à 1,5 g d'antimoniate deméglumine soit 85 mg de Sb5+/ ml ou 425 mg de Sb5+/ampoule.

• Tolérance et effets secondaires :

Elle est meilleure chez l'enfant que chez l'adulte. Les effets secondaires sont pour laplupart en rapport avec l'intoxication à l’Antimoine de méglumine et apparaissent doncle plus souvent après le 10ème jour du traitement. Ce rappel exhaustif des effetsindésirables n'indique pas systématiquement l'arrêt du traitement mais une surveillanceétroite.

• Tolérance cardiaque :

Les signes sont électrocardiographiques :

• Aplatissement ou inversion de l'onde T qui se normalise 1 à 3 semaines aprèsl'arrêt du traitement ;

• Allongement de l'espace QT et un sous-décalage du segment ST ;• Des cas rares de mort subite, surtout chez l'adulte, ont été décrits.

Une surveillance ECG est indispensable. Pour éviter des arythmies graves,l'apparition d'un allongement de l'espace QT et un sous-décalage du segment STjustifie une diminution des doses ou l'arrêt du traitement.

• Tolérance hépatique :

• Élévation des taux de transaminases (ALAT, ASAT) ;• Rares cas d’hépatites toxiques sévères.

• Tolérance pancréatique :

• Nausées, anorexie et douleurs abdominales. Ces symptômes sont corrélés àune augmentation des taux sériques d'amylase et de lipase qui peut justifierl'interruption du traitement si l'élévation est précoce et les taux élevés (3 fois lanormale).

• Rares cas de pancréatites aiguës.


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• Tolérance hématologique :

• Insuffisance médullaire pouvant atteindre les trois lignées ;• Rares cas d'agranulocytose.

• Tolérance liée à la voie d'administration :

• Douleurs ;• Induration voire abcès au point d'injection qui peuvent être prévenus par lavariation du point d'injection.

• Effets secondaires allergiques :

• Eruptions urticariennes ;• Apparition ou aggravation de réactions de type anaphylactique.

• Autres :

• Myalgies, arthralgies, céphalées, toux, diarrhées ;• Elévation de la créatininémie.

• Contre-indications :

• Insuffisance rénale ou hépatique ;• Atteinte cardiaque grave ;• Tuberculose pulmonaire ;• Grossesse.

• Conduite du traitement

• Posologie : la dose préconisée est de 20 mg de Sb5+/kg /jour sans jamaisdépasser 850 mg/jour (2 ampoules).

• Eviter l'ancienne recommandation qui consiste à augmenter progressivementles doses car elle n'est pas justifiée et risque d'induire des résistances desleishmanies à l'antimoine.

• Durée de la cure : 20 jours sans interruption si bien tolérée. Cette cure peut êtreprolongée ou répétée selon l'évolution clinique et biologique du patient.

• Mode d'administration : en injection intramusculaire profonde quotidienne.

• Surveillance avant et au cours du traitement :

ß Hémogramme.ß Bilan hépatique, rénal et pancréatique.ß Electrocardiogramme.


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- La guérison est affirmée sur :

ß L'amélioration des signes cliniques (fièvre, courbe de poids corporel,réduction de la splénomégalie).

ß Biologique (hémogramme).

ß Un deuxième examen parasitologique de la moelle ne se justifie qu’en cas denon amélioration.

• En cas d'échec thérapeutique : une seconde cure peut être proposée ou untraitement de deuxième intention par l'Amphotéricine B est à envisager.

b) Amphotéricine B

• Nom commercial : Fungizone®

• Voie d’administration : Intraveineuse.

• Posologie : 1 mg/kg 1 jour sur 2 à atteindre progressivement pour limiter leseffets secondaires.

• Durée du traitement : est fonction de la réponse clinique.

c) Amphotéricine B liposomale

Amphotéricine B liposomale (Nom commercial : Ambisome®) est le traitement de

deuxième intention

• Le principe actif : Amphotéricine B liposomale.

• Présentation : poudre pour suspension de liposomes pour perfusion à 50 mg.Flacons unidoses de 30 ml et de 15 ml avec filtre stérile, boite de 10.

•Tolérance et effets secondaires :

- Fièvre, frissons, hypokaliémie, nausées, vomissements.

- Troubles rénaux et hépatiques, diarrhée, dyspnée, convulsions.

•Contre-indications :

Patient présentant une hypersensibilité connue à l’amphotéricine B ou à tout autreconstituant.

• Conduite du traitement :

• Posologie : la dose cumulative est de 18 à 25 mg/kg en 6 perfusions :

Chez l’enfant et l’adulte immunocompétent : une perfusion par jour pendant 5 joursconsécutifs et une 6ème perfusion au 10ème jour.


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Chez l’immunodéprimé : une dose allant jusqu’à 40 mg/kg , sur 10 à 20 jours detraitement consécutifs, peut être administrée.

• Durée de la cure : 20 jours sans interruption si bien tolérée. Cette cure peutêtre prolongée ou répétée selon l’évolution clinique et biologique du patient.

• Mode d’administration : en injection intraveineuse stricte de 30 à 60 minutes.La concentration recommandée pour la perfusion intraveineuse est compriseentre 0,2 et 2 mg/ml d’Ambisome.

• Evolution post-thérapeutique :

Sous l’effet du traitement, l’apyrexie apparait en quelques jours, la splénomégalierégresse rapidement, l’examen parasitologique se négative en quelques semaines.Cependant, le syndrome humoral persiste plusieurs mois après le traitement(l’anémie doit être corrigée par les transfusions et la dénutrition par un régimehypercalorique et hyperprotidique).

La guérison est affirmée sur l’amélioration des signes cliniques et biologiques.

Un deuxième examen parasitologique de moelle n’est justifié qu’en cas de nonamélioration.

1-4-2- Les leishmanioses cutanées

Les indications thérapeutiques varient selon la forme clinique et l’espèce deleishmanie en cause.

• Médicament : Les dérivés pentavalents de l'antimoine ou Glucantime®(voir1-4-1-a ).

• Buts :

• permettre une cicatrisation rapide

• réduire la transmission du parasite dans les foyers à L.tropica dont leréservoir à présent est l'homme.

• Eviter les cicatrices inesthétiques.

• Eviter la viscéralisation dans la leishmaniose cutanée à L.infantum.

• Conduite thérapeutique :

a. Méthodes thérapeutiques

a-1. Traitement local :

• les antiseptiques et pommade antibiotique :

La lésion cutanée est traitée par des solutions antiseptiques : (Eosine ou Bétadine) et


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des pommades antibiotiques 3% : (Tétracycline® , Auréomycine® ...) jusqu'à lacicatrisation complète.

En effet, l'ulcération cutanée non traitée est source de surinfection, par conséquentla guérison est très lente et laisse une cicatrice inesthétique.

• L'injection péri-lésionnelle du Glucantime®

Elle se fait pour toutes les lésions de leishmaniose cutanée dont :

- le nombre est inférieur à 5 lésions, dont le diamétre est inférieur à 4 centimètreschacune.

Elle consiste en une injection péri-lésionnelle en peau saine, à 1cm du bord de lalésion au moyen d'une seringue munie d'une aiguille fine (type seringue à insuline),de 1 à 3 ml du produit par séance. La quantité à injecter dépend de la taille de lalésion. La cure sera répétée 2 fois par semaine jusqu'à guérison complète qui estobtenue généralement en 2 à 4 semaines.L'infiltration doit concerner toute la zone périphérique indurée à la base de la lésionoù la densité en leishmanies est trés importante. (Figures 10 et 11)

.

a-2. Le traitement général :

Il fait appel aux dérivés pentavalents de l’antimoine : Glucantime®(voir 1-4-1-a).

b. Indications

l Zones où sévit la leishmaniose à L.major

• La désinfection locale et l’utilisation de pommade antibiotique.

• Le traitement intra-lésionnel par le Glucantime.

• Le traitement par voie générale pendant 2 semaines sera réservé aux casprésentant :

ß Une lésion de grande taille dépassant 4 centimètres de diamètre ;et / ou

Figures. 10. 11 : Technique d’injection péri-lésionnelle du glucantime


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ß Des lésions multiples (plus de quatre lésions) ;et / ouß Lésion (s) périorificielles ou périarticulaires ;ß Lésion (s) au niveau des doigts et des orteils.

l Zones où sévit la leishmaniose à L.tropica / L.infantum

• La désinfection locale et l’utilisation de pommade antibiotique.

• Le pansement est obligatoire en raison du risque de la transmission interhumainepour la leishmaniose à L.tropica.

• Le traitement par glucantime par voie générale doit être exceptionnel et restepréconisé selon les mêmes indications que celles de la leishmaniose à L.major

sauf pour la durée du traitement qui est de 3 semaines.

• Pour la leishmaniose à L.infuntum, le traitement doit être urgent par crainte deviscéralisation.


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2 - CONSIDERATIONS ECO-EPIDEMIOLOGIQUES


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L’étude des concepts et théories de l’écologie ainsi que des méthodes etstratégies de l’épidémiologie est importante pour la compréhension des complexespathogènes de la leishmaniose. A signaler que la présence et la densité desphlébotomes vecteurs des leishmanioses sont en étroite relation avec les étagesbioclimatiques. Ainsi l’étude du graphique relatif au profil des indices de fréquencecorrigées (Fig. 12) montre que le phlébotomus ariasi est très dominant dans lesrégions humides et subhumides, le phlébotomus pérniciousus et phlébotomus

sergenti sont dominants des les régions sub-humides, semi-arides et arides ; parcontre le phlébotomus papatasi est très répandu dans les régions arides et per-arides.


A travers les différentes études réalisées et l’exploitation des dossiers des maladesatteints de leishmaniose viscérale, on constate que cette affection d’allurehypoendémique se localise dans les régions du Rif et du pré-Rif (Al Hoceima,Tétouan, Chefchaouen, Taza, Taounate, Sidi Kacem, Fès, Meknès et Nador) sanspour autant exclure d'autres régions du pays.

La leishmaniose viscérale au Maroc est due à L.infantum MON1 dont les principauxvecteurs sont le Phlebotomus perniciosus et le Phlebotomus ariasi et dont leréservoir du parasite est le chien.

Figure. 12 : Phlébotomes du Maroc: Profil des indices de fréquence corrigée


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2-2- La leishmaniose cutanée à L. major

Au Maroc, la leishmaniose à L. major est localisée dans un macro-foyer s'étendantde la côte atlantique au Sud de l'Anti-Atlas jusqu'à la région d'Oujda passant parles zones sahariennes au Sud du Haut et de l'Anti Atlas et à l'Est du Moyen Atlas enparticulier au niveau des provinces d’Errachidia (Ghriss), Figuig (Ghir, Ziz), Jerada,Ouarzazate, Tata et Zagora (Vallée de Draâ).

Il s’agit de palmeraies bien délimitées formées de douars ou de ksours de petite oumoyenne importance longeant des oasis ou de zones périurbaines formées d’habitatinsalubre.

Dans ce biotope caractérisé par des conditions de transmission de la maladie, laleishmaniose évolue sous forme endémo-épidémique dont les cas sont dépistésentre la fin de l’automne et de l’hiver.

A ces épisodes épidémiques succèdent des périodes d’accalmie, la populationautochtone étant protégée par une immunité acquise.

Au niveau des zones touchées, il est démontré le rôle vecteur de Phlebotomus

papatasi qui est infesté du mois de juillet au mois d’octobre, avec une tendance àl’augmentation en fin de la saison chaude où les femelles infestées deviennentendophiles et endophages.

L’infestation humaine se fait à partir d’un seul réservoir : Meriones shawi (Fig.13)chez qui l’infestation dure toute la vie (1 à 3 ans). Ce gerbillidé vit en contact étroitavec l’homme dans les palmeraies. Son développement et sa multiplication sontfavorisés par l’existence des terriers et des ordures ménagères à proximité desmaisons (Fig. 14) (micro-foyer).

Figure. 13 : Mériones shawi grandis Figure. 14 : Terrier actif du rongeur


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2-3- La leishmaniose cutanée à L. tropica

Cette forme de leishmaniose sévit dans les zones semi-arides du pays allant de larégion d’Agadir à l’Ouest aux plateaux péri-Rifain de Taza à l’Est en passant par leversant Ouest de la chaîne de l’Atlas touchant le centre du pays dans les régions dedu centre du pays (Al Haouz, Azilal, Chichaoua, Béni Mellal, Settat, Meknès, Fès)et au Nord du pays (Taounate, Sidi kacem, Sefrou, Chefchaouen). Dans ces zonesla maladie s’observe dans des localités rurales situées entre 400 et 1000 mètresd’altitude au voisinage de vastes Forêts de Thuya (Fig.15).

Dans ce biotope, commun à plusieurs régions du Maroc, la maladie évolue sousforme hypo-endémique avec un nombre réduit de cas et parfois avec des pousséesépidémiques.

Actuellement plusieurs foyers de transmission active ont été identifiés soit dans lesagglomérations périurbaines ou dans des localités rurales où les facteurs de risquepersistent.

A signaler que la leishmaniose cutanée à L.infantum est identifée dans les provincesoù il y a prédominance de la leishmaniose viscérale.

Les IDR à la leishmanine, réalisées dans quelques régions, ont montré des taux depositivité très élevés parmi les populations âgées témoignant ainsi d’une évolutionancienne et à bas bruit de la maladie.

En définitif, il s’agit d’une parasitose dont le vecteur est Phlebotomus sergenti et leréservoir est l'Homme. L’infestation débute en milieu de l’été et atteint sonmaximum au début de l’automne.

Figure. 15 : Forêt de Thuya


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3- ACTIONS SUR LE PARASITE


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Les leishmanioses au Maroc, constituent actuellement quatre entités noso-géographiques et cliniques bien différenciées nécessitant des actions de lutte biencodifiées et adaptées à chacune d’elles.

Les réservoirs de parasites diffèrent selon les espèces de parasites :

• Le chien est le réservoir de la leishmaniose viscérale et de la leishmaniosecutanée à L.infuntum.

• L’Homme est le réservoir de la leishmaniose cutanée à L.tropica.

• Le rongeur (Mériones Shawi) est le réservoir de la leishmaniose cutanée àL.major.

Les actions à entreprendre contre les réservoirs du parasite sont conditionnées par :

• Zones à risque : elles sont délimitées selon la densité vectorielle exprimée parétage bioclimatique et sont conditionnées par la présence du parasite, duvecteur et du réservoir ;

• Période à risque : c’est la période de densité vectorielle élevée (transmissionélevée) exprimée selon un rythme pluriannuel ou saisonnier ;

• Population à risque : elle est définie par un état de réceptivité (populationexposée non immunisée).


3-1-1- Actions chez l'homme

• Dépistage :

Le dépistage actif ou passif des cas de leishmaniose viscérale n’est pas aisé à faireen raison de la similitude du tableau clinique avec les affections fébriles associantune splénomégalie.

En zone d’endémie ou devant tout tableau clinique comportant, une fièvreprolongée, une pâleur, un amaigrissement, une splénomégalie, une hépatomégalie,il faut référer le malade à une consultation médicale.L’interrogatoire du malade ou des parents et l’examen clinique permettent d’orientercelui-ci vers un centre hospitalier pour des investigations beaucoup plus poussées,d'établir le diagnostic de certitude et de traiter la maladie.


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• Traitement :

Sans traitement le pronostic des leishmanioses viscérales est sombre. Les dérivés del’antimoine permettent la guérison des patients dans la grande majorité des cas.

• Enquête Epidémiologique :

Elle doit être réalisée :

• chez les populations cibles, dans les zones à risque ;

• à la suite de déclaration de nouveaux cas dans une région jusque là indemne ;

• dans les zones limitrophes à une autre touchée par la maladie.

• Modalités d’organisation :

Elles seront arrêtées en pleine concertation avec les services vétérinaires locaux.

• Education Sanitaire :

Elle consiste à éduquer et sensibiliser les populations exposées pour une meilleureconnaissance de la maladie, de sa transmission et des moyens de prévention, ainsipour permettre un diagnostic précoce de la maladie.

Cette action sera basée sur :

• la communication interpersonnelle par le personnel de santé ;

• la communication de masse en utilisant les moyens audiovisuels (films,diapositives, dépliants, affiches et capsules télévisées).

3-1-2- Actions sur le réservoir animal du parasite (le chien)

• Dépistage :

- Chien asymptomatique :

Au début, le chien présente des leishmanies dans sa peau et ses sécrétions nasaleset oculaires sans aucun signe caractéristique.

- Chien malade :

Le chien a l’air vieux, amaigri et perd sespoils (Fig.16). Cette dépilationaccompagnée de desquamationfurfuracée prédominant en certaineszones : (régions orbitales dépilation enlunettes, museau, dos, siège).

Plus tardivement, apparaissent desulcérations de la truffe et de la région

Figure. 16 : chien suspect de leishmanioseviscérale


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génito-anale. Entre les doigts existent également des ulcérations et ceci s’accompagned’un allongement des griffes (onychogriffose) donnant un bruit sonore trèscaractéristique lorsque il marche sur un plan dur. L’adénopathie poplitée et lasplénomégalie sont également de bons signes.

• Elimination ou traitement :

- Chien errant sans propriétaire : abattage systématique recommandé ;

- Chien à propriétaire : abattage ou le cas échéant traitement médical à prescrire età administrer par le vétérinaire local.

• Enquête Epidémiologique :

Il n’est pas commode d’organiser une enquête épidémiologique au niveau de lapopulation canine chaque fois qu’un cas de leishmaniose viscérale est mis enévidence. Par contre des études séro-épidémiologiques ponctuelles peuvent êtreréalisées dans un foyer connu ou virtuel.

Elles concerneront un échantillon représentatif de la population canine d’une zoneou d’une région bien déterminée.

Ces études porteront sur :

- L’examen des chiens :

L’examen clinique systématique portera sur la recherche de signes caractéristiques.

Les ponctions ganglionnaires seront faites pour l’isolement des parasites qui serontmaintenus en culture. Les isolats seront identifiés dans un laboratoire qualifié.

Les chiens symptomatiques ou séropositifs seront déclarés et notifiés au serviced’hygiène communal pour un suivi ou une éventuelle élimination.

- Tests sérologiques :

La sérologie a pour intérêt de cerner la zone à risque et une éventuelle extensiongéographique de la maladie.

Les réactions immunologiques ont une grande valeur diagnostique du fait de larareté des parasites dans les différents prélèvements. Les techniquesd’hémaglutination et de l’immunofluorescence indirect pour la détection desanticorps sériques peuvent être réalisées. Actuellement, les étudesépidémiologiques utilisent de plus en plus les tests rapides qui ont montré unegrande efficacité et une simplicité de réalisation.


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• Lutte contre le réservoir canin

- Objectif :

Contrôler la population canine afin d’éliminer les chiens malades et rompre lachaîne de transmission.

- Stratégie :

L’abattage des chiens errants est une opération intégrée dans une stratégie globalede lutte contre les zoonoses (Echinococcose et la Rage). C’est une activité difficileà réaliser qui ne doit être menée qu'en concertation avec les services vétérinaires etles autorités locales.

3-2- Les leishmanioses cutanées

3-2-1- Activités de surveillance

Les actions sur le parasite consistent à mettre en évidence des cas de leishmanioseà partir de tableaux cliniques révélateurs ou d’antécédents épidémiologiques.

• Dépistage

Afin de pouvoir mesurer l’importance de la maladie, le dépistage des cas de laleishmaniose doit être systématisé et intégré dans les activités normalisées dechaque formation sanitaire.

- Principe :

Le dépistage est basé sur l’examen clinique des parties découvertes eventuellementle prélèvement et la recherche des leishmanies dans le suc dermique. Il est :- Actif lors des circuits de surveillance effectués par l’équipe mobile ; - Passif effectué dans les formations sanitaires fixes ;- De masse au niveau des écoles, des localités ou dans l’entourage d’un cas dépisté.

- Objectifs :

- Confirmer l’existence ou l’absence de la maladie ;- Identifier et traiter les malades porteurs de parasites pour assurer un contrôle de

la maladie ;- Estimer la prévalence ou l’incidence de la maladie.


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- Organisation

a. Le dépistage :

Il permet l’examen clinique et le diagnostic par un prélèvement fait pour tout patientprésentant une lésion cutanée révélatrice.

- Qui doit faire l’examen clinique et le prélèvement ?

Le personnel médical et paramédical exerçant au niveau des formations sanitairessont chargés d’examiner les parties découvertes de la population exposée et defaire le prélèvement selon la technique illustrée ci-dessous.

- A qui doit-on faire le prélèvement ?

Pour toute personne présentant la lésion caractéristique. Il s’agit de lésions uniquesou multiples, indolores, chroniques (rebelles aux antibiotiques), papulo-nodulairesparfois ulcérées et recouvertes de croûtes, siégeant au niveau des parties exposéesaux piqures de phlébotome (la face ou les membres).

Indications• Cas sporadique ;• Poussée épidémique.

b. Le dépistage de masse :

Ce mode de dépistage par examen clinique se fait :• dans le cadre d’une enquête autour d’un cas ;• dans les écoles et les localités dans le cadre d’une enquête organisée pour

estimer la prévalence ou l’incidence de la maladie.

Il est assuré par le personnel de la formation sanitaire ou par des équipes désignéespour mener l’enquête de masse dans la population cible.

Eléments de programmation d’une opération de dépistage de masse :

La logistique de l’opération (personnel et moyens matériels) sont à déterminer enfonction du type de leishmaniose (cutanée ou viscérale), de la population cible(enfants, adultes) et de la durée d’exécution de l’opération.

• Devant un cas sporadique : il faut faire un prélèvement dans les parties infiltréesde la lésion, en évitant celles où la surinfection bactérienne est manifeste et lecentre de la lésion.


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• Devant une épidémie : Les prélèvements doivent être nombreux pour augmenterles chances de mise en évidence de leishmanies, ils ne doivent pas être excessifsmais doivent être représentatifs de la population enquêtée.

Une fois la transmission autochtone confirmée la présence de la lésion cliniquetypique suffit pour la prise en charge du malade.

Matériel nécessaire

• Vaccinostyles stériles à usage unique ;• Lames porte objet en verre ;• Coton hydrophile ;• Compresse de gaze ;• Un désinfectant (éthanol 70 degré, l’eau iodée, Bétadine…) ;• Sparadrap ;• Boite à rainures ;• Bons de prélèvements.

Technique du prélèvement

• Remplir le bon d’examen en prenant soin de noter les informations sur la ou leslésion (s), les circonstances de la découverte de la maladie ;

• Enlever les croûtes soigneusement ;

• Désinfecter la lésion ;

• Faire des scarifications à la périphérie de la lésion dans ses parties infiltrées avecle vaccinostyle , en évitant le centre de la lésion dont l’examen parasitologiqueest souvent négatif et les zones surinfectées (Fig.17) ;

• Racler le revêtement cutané en allant au plus profond jusqu’à ce que suinte unesérosité ;

• Prélever la quantité de suc dermique nécessaire au frottis ;

• Déposer le suc sur la lame ;

Figure. 17 : Technique du prélèvement


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• Pratiquer l’étalement à l’aide d’une seconde lame ou à l’aide du vaccinostyle ;• Préparer au moins 3 lames par lésion ;• Inscrire le numéro du bon du prélèvement sur la lame (crayon diamant) ;• Désinfecter et couvrir la lésion par un pansement protecteur ;• Envoyer toutes les lames au laboratoire provincial ou régional.

• Traitement : (voir traitement des leishmanioses cutanées 1-4-2).

• Enquête épidémiologique (voir formulaire annexes)

L’enquête épidémiologique est entreprise systématiquement chaque fois qu’un casde leishmaniose est dépisté dans une zone considérée indemne.

- Objectifs :

• déterminer l’origine probable de l’infection ;

• dépister d’autres cas et éventuellement identifier un foyer de transmission ;

• évaluer la situation épidémiologique, en vue d’entreprendre les mesurescorrectives qui s’imposent.

- Comment conduire l’enquête :

L’enquête autour du cas est justifiée devant tout cas de leishmaniose confirmé parla présence de leishmanies dans l’examen du prélèvement.L’enquête se fait sur le lieu de résidence du malade par le personnel du secteur oupar l’animateur des maladies parasitaires aidé par celui de l’hygiène du milieu.

Pour aider l’enquêteur à mener les investigations nécessaires auprès du malade, unminimum de questions a été normalisé dans le formulaire d’enquête modèle.L’exploitation et l’analyse des renseignements recueillis auprès du malade,permettent de déterminer l’origine probable de l’infection et de donner uneclassification du cas enquêté.

Trois situations sont à considérer :ß Cas autochtone :

C’est le cas pour lequel l’enquête a révélé que le malade réside dans une localitéoù existe déjà d’autres cas ou connue par ses antécédents épidémiologiques et quele malade ne s’est pas déplacé ailleurs au cours de la période de transmission.

ß Cas importé :

C’est celui pour lequel l’enquête a prouvé que dans la localité où le malade a étédépisté, il n’existe pas d’autres cas et que le malade a séjourné probablement avant


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son atteinte dans une zone connue comme endémique au cours de la période detransmission.

ß Cas paradoxal :

Est considéré comme tel, tout cas dont l’origine n’a pas pu être déterminée ou celuipour lequel l’enquête n’a pas pu être effectuée.

3-2-2- Actions sur les rongeurs

La surveillance et la lutte contre les rongeurs réservoirs de la maladie est unecomposante de la lutte contre les vecteurs qui nous permet de bien rentabiliser lesactions de lutte, surtout dans les régions rurales où la leishmaniose à leishmania

major continue à constituer un problème de santé publique.

Une surveillance régulière dans le temps et dans l’espace nous permet d’avoir desdonnées fiables sur l’évolution de la densité des rongeurs, la période de leurreproduction ainsi que l’évaluation de toutes les actions de lutte.

a- Classification des rongeurs :

Parmi les 2000 espèces de rongeurs identifiés dans le monde, deux familles peuventêtre retenues comme ayant une implication médicale : les Muridae et lesGerbillidae.

Les Gerbillidae sont reconnaissables par leur queue arrondie sans revêtementécailleux, couverte de poils et présentant un pinceau apical. Ils sont représentés pardeux genres incriminés dans la transmission de la leishmaniose.Genre Mériones (Illiger 1811)

M. shawiM. crassusM. libycus

Genre Psammomys (Cretzschmar)P. obesus

Le Mériones shawi grandis, hôte réservoir de la leishmaniose cutanée zoonotique àL.major, s’observe uniquement au Maroc. Ce petit rongeur présente lescaractéristiques suivantes :Aspect morphologique du Mériones shawi adulte (Fig. 18)• Longueur du corps : 140-200 mm ; • Longueur de la queue : 140-180 mm ;• Oreille : 19 mm ; • Poids : 250 gr ;


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• Pelage dorsal gris ou fauve, généralement assez pâle ;• Ventre blanc avec parfois des marques jaunes ;• Oreilles pigmentées, longées d’une bordure sombre ;• Ongles et pieds blancs ;• Queue bicolore, base grise, terminée par une touffe de poils bruns ou noirs.

Figure. 18 : Clé d’identification des rongeurs

Biologie : Le rongeur réside dans un biotope varié, de préférence dans les solsargileux ou sableux, quelque fois rocheux. Il s’installe souvent dans les cultures(palmeraies présahariennes) aussi il s’observe dans les décharges et les dépôtsd’ordures. Son besoin en eau lui interdit de sortir des palmeraies et conditionne soncomportement domestique.


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Au Maroc, les milieux qui lui sont favorables sont constitués par les bas fondscolmatés argilo-sableux représentés par les grandes cuvettes d’épandage situées auxdébouchés des oueds du haut Atlas et de l’Anti Atlas.

Terrier : Il est installé dans une butte au pied du buisson d’une plante pérenne, quisert d’abri, généralement un épineux (palmier figuier de barbarie, jujubier etc...). Dans les zones intermédiaires, entre le désert et les steppes humides qui le bordent,cette espèce peut cohabiter dans une même butte ou un même talus avec l’espèceM. libycus. Seule dans son biotope, elle peut gîter dans n’importe quel sol meubléà la façon de Ratus rattus qu’elle remplace souvent aux abords des villages.

b- Surveillance mammalogique :

Les actions aussi bien de surveillance que de lutte contre les rongeurs doivent êtremenées en collaboration avec les Services de la Protection des Végétaux, lesCollectivités Locales, les Bureaux Communaux d'Hygiène et les Autorités Locales.La population doit être informée et sensibilisée durant toutes les étapes desurveillance et de lutte.

b-1. Objectifs de la surveillance :

• Identifier et recenser les terriers ;

• Connaître la répartition des terriers dans l’espace ;

• Identifier les facteurs ayant une influence sur le comportement du rongeur(période de reproduction, éléments nutritifs etc...) ;

• Connaître les variations saisonnières des populations de rongeurs ;

• Déterminer la période probable de transmission ;

• Définir les mesures appropriées pour la destruction des rongeurs ;

• Evaluer les opérations de lutte ;

• Déterminer la période favorable de la lutte chimique.

b-2. Les méthodes de la surveillance mammalogique :

Méthode directe

La méthode directe est basée sur la capture au piège. Les techniques utilisées sontplus élaborées et plus précises et peuvent servir pour calibrer les mesures effectuéespar les méthodes indirectes. L’utilisation de pièges est efficace pour capturer desrongeurs vivants, plusieurs modèles peuvent être utilisés pour les rongeursdésertiques :


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• Les distances entre les pièges varient de 5 à15 m ;

• Le temps de piégeages varie selon les espèces étudiées 3 à 10 jours de piégeagespar mois.

Méthode indirecte

Utilisée pour détecter, dénombrer et identifier les rongeurs présents dans le milieuobservé, par les traces de leurs activités : pistes, terriers, crottes, tracesd’alimentation etc.

- Comptage par observation visuelle

Utilisable pour les rongeurs diurnes (ex.Psammomys obesus).

Cette méthode peut être perturbée par lesvents et les pluies.

- Comptage des terriers (Fig. 19)

• Observation des terriers actifs et inactifs ;

• Fermeture des terriers dans le but de déceler une réactivation.

- Examen des fèces

Une méthode qui consiste à enlever les fèces dans la zone colonisée par lesrongeurs et compter les nouveaux apparus.

- Évaluation par la consommation d’appâts non empoisonnés

Le comptage des appâts consommés après plusieurs jours d’appâtage. Cetteméthode est adaptée pour les Meriones mais pas pour les Psammomys à cause deleur régime alimentaire (chenopodiace).

- Analyse des données de surveillance des rongeurs

L’analyse des données de surveillance comprendra, outre les résultats de captures etd’examens des rongeurs, les variables concernant le milieu où vivent ces animaux(climat, sol, végétation). Les informations sur le milieu peuvent aider l’interprétationdes résultats de la surveillance.

b-3. Activités de surveillance mammalogique :

Une surveillance régulière des rongeurs doit être instaurée au niveau desprovinces et préfectures touchées par la leishmaniose cutanée à L.major.

Figure. 19 : Terriers du rongeur


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les activités à mettre en place sont les suivantes :

• Recenser tous les terriers existants ;

• Délimiter la zone infestée ;

• Cartographier la zone infestée et faire un relevé par GPS ;

• Porter sur la carte l’emplacement des terriers ;

• Choisir les stations de surveillance. Chaque station de surveillance doit êtrecaractérisée par sa situation, sa surface et son biotope (nature du sol, de lavégétation…). Les stations choisies doivent être représentatives des surfacesinfestées. Leur nombre et leur surface dépendent des biotopes existants auniveau de la province, de l’accessibilité du terrain et des moyens disponibles ;

• Etablir le calendrier des prospections des stations de surveillance qui doivent sefaire au moins une fois par trimestre. Au cours de ces prospections le nombre deterriers actifs et inactifs doivent être comptés et des piégeages effectués afin dedéterminer la ou les espèces existant et leurs état de santé.

Porter sur une courbe le nombre de terriers actifs par prospection et par station desurveillance. Le pic correspond à la période de forte densité.

c- Lutte contre les rongeurs :

c - 1. Lutte préventive et activités de communication :

La lutte préventive doit se faire tout au long de l’année dans les agglomérations etautour des habitations. Elle porte sur l’amélioration des conditions d’hygiène(évacuation hygiénique des déchets) et la promotion des mesures de rat-proofing.Ces activités doivent être accompagnées par des séances d’éducation et desensibilisation de la population afin qu’elle apporte un soutien aux activités desurveillance et de lutte

c - 2. Lutte chimique :

Elle doit être programmée pendant la période de faible densité en se basant sur lacourbe d’évaluation des terriers actifs. Elle doit intéresser toute la surface infestée etconsiste en l’utilisation de rodenticides anticoagulants au niveau péridomestique.Loin des habitations, les grains empoisonnés doivent être appliqués dans les terriersactifs en collaboration avec les services de protection des végétaux , les autorités ,les collectivités locales et les associations.


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• Méthode de lutte :

La lutte contre les rongeurs est particulièrement difficile car il s'agit d'animauxdoués d'une très grande intelligence et sont très prolifiques. En effet, il arriveque les pullulations soient tardivement décelées, ce qui permet dedéclencher les opérations de lutte après constatation de sérieux dégâts.

Le moyen de lutte le plus utilisé et qui s'avère le plus efficace, est basé surl'emploi des appâts empoisonnés (blé mélangé aux rodenticides) ou lesanticoagulants prêts à l’emploi. Il s'agit d'un moyen qui se prête à une applicationcommode sur une grande surface (Fig. 20).

• Organisation des chantiers de traitement :

Lors des opérations de grandes envergures, les traitements s'effectuentcollectivement par des équipes d’ouvriers encadrés par les techniciens d’hygiène.La mise en place de ces équipes dans les différentes régions infestées nécessitedes moyens humains et matériels importants. Au niveau de chaque zoneinfestée, l’opération de dératisation nécessite les moyens suivants :

Moyens humains :

- Technicien d’hygiène chef d'équipe pour l'encadrement des opérations delutte) ;

- Ouvrier (gestion et distribution des appâts) ;

- Ouvriers pour la pose des appâts au niveaux des terriers.

Moyens matériels :

- Véhicule pour le transport des ouvriers, produits et matériel ;

- Kits de protection individuelle (tenue, gants, masque botte…) ;

- Seaux et cuillères en bois.

Ces opérations de lutte se font enprésence des autorités locales. Avantchaque opération, les ouvriers assistentà une démonstration sur l'utilisationde l'appât et les précautions àprendre au cours des traitements.

Figure. 20 : Pose d’appâts au niveaudes terriers


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c - 3. Dispositions à prendre avant l’opération :

• Entreprise d’une campagne de propreté et d’hygiène au niveau desagglomérations touchées pour affamer les rongeurs ;

• Délimitation des zones infestées (cartographie des zones infestées) ;

• Vérification des signalisations des populations (zones déclarées infestées) ;

• Préparation d'une quantité suffisante d'appât ;

• Préparation de la logistique nécessaire (moyens humains et matériels) ;

• Programme de l’opération avec echéancier temps/espace.

c - 4. Evaluation des opérations de lutte :

Toute opération de lutte contre les rongeurs doit être suivie d’une évaluation quise fait par la comparaison de la densité avant et après traitement . Ainsi, on peutjuger de l’efficacité des actions entreprises ou de la nécessité de remédier auxanomalies du traitement.


51....................

4 - ACTIONS SUR LE PHLEBOTOME VECTEUR


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53....................

4-1- Caractéristiques des vecteurs

Les phlébotomes sont des insectes cosmopolites mais sont plus abondants dans lesrégions chaudes. Ayant une activité crépusculaire et nocturne, ils se réfugient lajournée dans des crevasses, trous d’arbres , terriers… . Leur vol est de courte durée,silencieux et saccadé ; les phlébotomes ne s’éloignent pas loin de leur gîte etcraignent le vent.

a- Aspect morphologique

* L’adulte : C’est un petit moucheron très fragile de 2 à 3 mm, fortement velu decouleur pâle (jaune, grisâtre ou brunâtre) et d’aspect bossu.

La tête est dotée :

• de pièces buccales permettant de lacérerdes parois vasculaires puis d’absorberle sang accumulé dans le micro-hématome ainsi formé (telmophagie);d’une paire d’antennes comportant 16segments velus portant souvent du 3ème

au 15ème segment des " ascoides" ouépines géniculées plus ou moinstransparentes (Fig. 21) ;

• de yeux généralement gros et sombres.

Le thorax présente :

• une paire d’ailes, également velues de forme lancéolée, habituellement relevéeschez l’insecte au repos sur une surface ;

• trois paires de pattes longues et grêles.

L’abdomen est composé :

• de 10 segments dont les trois derniers, constituent les organes génitaux. Ceux-ci sont particulièrement développés, sous forme de coxites et de styles, chezles mâles.

Dans les pays tempérés, les adultes n’apparaissent que vers le mois de mai, sontactifs pendant les mois chauds puis disparaissent à l’automne. Dans les zonesintertropicales, ils sont plus ou moins actifs toute l’année.

* L’oeuf : de forme allongée et légèrement incurvée, il mesure de 300 à 400 µm detaille, il est blanc à la ponte puis devient brun, sa surface est ornementée d’unréseau de granulations délimitant des cellules polygonales.

Figure. 21 : photo d’un phlébotomeadulte Imago


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* La larve : elle est vermiforme et eucéphale, mesurant au 4ème stade de sonévolution 8 mm environ. Sa capsule céphalique, munie de pièces buccalesbroyeuses, est reliée à trois segments thoraciques et neuf segments abdominaux. Sestéguments sont ornés de petits tubercules portant chacun une soie plus ou moinsépineuse. Les sept premiers segments abdominaux sont munis de fausses patteslocomotrices et sur le dernier sont insérés au 4ème stade larvaire deux paires de soiesfortes très longues de couleur foncée.

Les larves se développent dans le sol, dans les terriers et les nids, dans la poussièredes anfractuosités des rochers et dans des vieux murs et les tas de débris végétaux.

* La nymphe : son corps, long de 3 mm, comprend un céphalothorax (tête + troissegments thoraciques) et un abdomen comportant neuf segments dont les deuxderniers, habituellement cachés dans la dépouille larvaire résultant de la dernièremue, lui servent de support et lui permettent de se maintenir fixée, verticalement,au substrat.

b- Biologie

La figure 22 représente schématiquement le cycle biologique d'un phlébotome. Lesoeufs, les larves et la nymphe se développent dans des micro-biotopes terrestreshumides. Il est difficile de localiser ces formes à l'état naturel, de sorte qu'on ignoreencore les lieux de ponte et de reproduction de ces vecteurs.

La durée du cycle dépend de l'espèce, de la température et d'autres facteurs maiselle est en général inférieure à 45 jours.

Figure. 22 : Cycle biologique du phlébotome

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Deux phases biologiquement distinctes, caractérisent le développement desphlébotomes :


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* La phase pré - imaginale (oeufs, larves et nymphes)

Un phlébotome femelle pond de 50 à 100 oeufs à la fois par cycle, le site de ponte esten général un sol suffisamment humide, riche en matières végétales et animales endécomposition.

Les oeufs sont pondus un à un, leur incubation varie avec la température, et donc avecla saison : elle nécessite en moyenne 4 à 17 jours.

La larve est terricole, sédentaire, saprophage. Les gîtes larvaires varient selon lesespèces : fissures du sol, terriers de petits mammifères, nids d’oiseaux, creux etanfractuosités de la base des arbres, fentes des murs et du sol des abris humains etanimaux, etc. Tous ont en commun de constituer des micro-habitats caractérisés par desconditions particulièrement constantes : lieux calmes, sombres, humides et abrités descourants d’air. Les larves s’y nourrissent de débris organiques variés, le plus souventd’origine végétale (fragments végétaux, litières des rongeurs ...), leur évolution connaîtquatre stades larvaires et leur quatrième mue débouche sur le stade nymphal.

La nymphe, fixée en position verticale par son extrémité postérieure, se rencontre auniveau des mêmes gîtes et ne se nourrit pas.

La durée des quatre stades larvaires et du stade nymphal ultérieur varie énormément enfonction des données climatiques. D’une manière générale d’après des observationsréalisées dans la nature et dans les élevages expérimentaux, le cycle de développementpré-imaginale (de l’éclosion de l’oeuf à l’émergence de l’adulte) semble varier de 20 à75 jours. La durée du seul stade nymphal serait de 6 à15 jours.

* L’adulte, se rencontre dans des sites caractérisés par trois conditions :

• calme et tranquillité des gîtes de repos ;

• proximité d’hôtes vertébrés nécessaires aux repas de sang ;

• existence de gîtes de ponte propices à la vie des larves.

L’activité de l’adulte commence dès le jour de l’éclosion des oeufs, où il naît autant demâles que de femelles, les adultes quittent leurs gîtes pour satisfaire leurs besoinsvi taux : les femelles prennent leurs repas sur un hôte vertébré et recherchent un lieude repos pour digérer puis pondre, alors que les mâles prennent leurs repas sur dessucs végétaux.

Leur activité est généralement crépusculaire et nocturne. Leur vol, silencieux et decourte portée, s’effectue par petits bonds entrecoupés de périodes de repos plus oumoins longues. Leur déplacement n’a lieu que par temps calme, en l’absence devent et de forte pluie, à une vingtaine de centimètres du sol, devant des obstacles


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ils peuvent s’élever jusqu’à 5 à 12 mètres de hauteur. La portée habituelle du voln’excède pas une vingtaine de mètres (25 à 200 m), les plus grandes distances sontparcourues par des individus à jeun et dépassent rarement 700 mètres.

En dehors de ces heures d’activité, ils se tiennent cachés dans des crevasses desmurs, des terriers. Certaines espèces gîtent dans les recoins obscurs des habitationshumaines, des étables, des clapiers et des niches des chiens. Seules certainesespèces qui piquent l’homme sont des vecteurs de leishmanioses.

Seule la femelle est hématophage, sa piqûre est douloureuse mais ne laissegénéralement aucune trace.

Cet insecte Nématocère de la famille des Phlebotomidae est représenté au Marocpar deux genres: Phlebotomus et Sergentomyia.

CLEFS DE DETERMINATION POUR LES PHLEBOTOMES DU MAROC

A - Détermination du genre

Cibarium inerme ; soies des tergites abdominaux II à IV dressées ; chez le mâle, style porteur de 4 à 5 épines insérées à des niveaux différents : Phlebotomus, B & C

Cibarium inerme ; soies des tergites abdominaux II à VI couchées ; chez le mâle, style porteur de 4 épines terminales . . . . . . . . . . . .Sergentomyia D & E

Genre Phlebotomus Genre Sergentomyia

- P. (Phlebotomus) bergeroti - P. (Phlebotomus) papatasi - P. (Paraphlebotomus) alexandri- P. (Paraphlebotomus) chabaudi- P. (Paraphlebotomus) riouxi - P. (Paraphlebotomus) kazeruni - P. (Paraphlebotomus) sergenti - P. (Larroussius) chadlii - P. (Larroussius) mariae - P. (Larroussius) perfiliewi- P. (Larroussius) langeroni- P. (Larroussius) ariasi- P. (Larroussius) longicuspis- P. (Larroussius) perniciosus

- S. (Sergentomyia) antennata

- S. (Sergentomyia) fallax

- S. (Sergentomyia) minuta

- S. (Sergentomyia) schwetzi

- S. (Parrotomyia) africana

- S. (Parrotomyia) lewizi

- S. (Grassomyia) dreyfusi

- S. (Sintonius) christophersi

- S. (Sintonius) clydei

Tableau 1: la famille des Phlebotomidaes


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B - Détermination des espèces du genre Phlebotomus : mâles

1. Style à 4 épines.....................................................................................................2

Style à 5 épines ....................................................................................................5

2. Apex du pénis effilé, en forme de dague .............................P. chabaudi/P.riouxi

Apex mousse, en forme de bec de corbin...........................................................3

3. Tubercule de la base du coxite aussi long que large, pourvu de nombreuses

soies (environ 25)............................................................................P. alexandri

Tubercule basal plus long que large, digitiforme et soies peu nombreuses.......4

4. Style enflé, au plus 3 fois plus long que large ....................................P. sergenti

Style élancé, plus de 3 fois plus long que large .................................P. kzeruni

5. Paramètre trifide, à appendice supérieur arciforme, abondamment pourvu desoies ; un petit tubercule porteur de soies à la base du coxite .........................6

Paramètre simple ; pas de tubercule sur le coxite.............................................7

6. Style élancé, 10 à 14 fois plus long que large ; face interne du coxite pourvuedans sa partie supérieure d'un placard ayant en moyenne 11 soies (7-14)

.............................................................................................................P. papatasi

Style seulement 6 à 8 fois plus long que large ; face interne du coxite pourvued'un placard de 5 soies (4-7) ...........................................................P. bergeroti

7. Pénis à apex bifide.......................................................................P. perniciosus

Pénis non bifurqué. ........................................................................................8

8. Extrémité du pénis denticulée sur son bord supérieur .................P. perfiliewi

Extrémité du pénis dépourvue de denticulation ...............................................9

9. Pénis éffilé .....................................................................................................10

Phlébotomes Leishmanies

- Phlebotomus sergenti - Leishmania tropica

- Phlebotomus papatasi - Leishmania major

- Phlebotomus perniciosus- Phlebotomus ariasi- Phlebotomus longicuspis

- Leishmania infantum

Tableu 2 : Espèces vectrices des leishmanies au Maroc


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Pénis à extrémité mousse ..................................................................................11

10. Extrémité du pénis régulièrement rétrécie .................................P. longicuspis

Extrémité biseautée ...................................................................P. langeroni

11. Coxite pourvu d'une plage interne de 60 à 80 soies .........................P. chadlii

Coxite pourvu d'une plage interne de 20 à 40 soies ...................................12

12. Pénis en battant de cloche ...............................................................P. ariasi

Pénis en baguette de tambour .........................................................P. mariae

C - Détermination des espèces du genre Phlebotomus : femelles

1. Tête de la spermathèque sessile ..................................................................2

Tête pédonculée ..........................................................................................7

2. Réservoir ne comportant que 2 segments ....................................P. kazeruni

Réservoir ayant plus de 2 segments .............................................................. 3

3. Dernier segment de la spermathèque en forme d'entonnoir, relié au précédentpar un pédoncule long et grêle.....................................P. chabaudi/P.riouxi

Dernier segment largement accolé au précédent ........................................4

4. Ecailles de l'armature pharyngienne formant des cellules à paroi épaisse, les antérieures généralement fermées et s'ordonnant en réseau transversal .................................................................................P. alexandri

Ecailles de l'armature pharyngienne formant des cellules à paroi mince, lesantérieures allongées d'avant en arrière et généralement ouvertes ...............5

5. Ecailles postéro-médianes du pharynx denticulées.......................P. papatasi

Toutes les écailles pharyngiennes dépourvues de denticulations ..................6

6. Ecailles pharyngiennes arrondies, régulièrement réparties ; dernier segment

de la spermathèque réduit à une collerette latérale ; tête large et subsphérique....................................................................................................P. bergeroti

Ecailles pharyngiennes polymorphes, très irrégulièrement réparties, derniersegment de la spermathèque globuleux, tête étroite et subovalaire...P. sergenti

7. Conduit de la spermathèque présentant une dilatation progressive à sonextrémité distale ............................................................................................8

Conduit de calibre uniforme; une ampoule terminale ou latérale à son extrémité


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distale (la dissection est idéale pour voir cette structure) ...............................9

8. Conduit dilaté sur la moitié de sa longueur ; col relativement court et épais parrapport au réservoir ; tête de la spermathèque peu différenciée

..........................................................................................P.ariasi.(P. Ch adlii)

Conduit de la spermathèque dilaté sur le 1/3 de sa longueur ; col long et mincepar rapport au réservoir (2/3 ; tête bien différenciée) ..................P. langeroni

9. Un caecum à paroi très épaisse et à lumière étroite, en dérivation à la base duconduit de la spermathèque ; limite antérieure de l’armature pharyngienneimprécise ....................................................................................P. perniciosus

Une dilatation irrégulière ou un caecum différent à la base du conduit ; limiteantérieure de l’armature pharyngienne nette, subrectiligne .........................10

10. Conduit de la spermathèque se terminant dans une poche asymétrique, auxparois fripées (ceci n’est bien visible que sur un exemplairedisséqué).......................................................................................P. perfiliewi

Un caecum latéral bilobé, s’abouchant largement à la base du conduit (cecin’est bien visible que sur un exemplaire disséqué) .....................P. longicuspis

D - Détermination des espèces du genre Sergentomyia : mâles

1. Pompe génitale dépourvue de pavillon ...............................................S. lewisi

Pompe génitale pourvue d'un pavillon ..........................................................2

2. Pénis à extrémité mousse...............................................................................3

Pénis à extrémité acérée ...............................................................................7

3. Style 5 à 7 fois plus long que large ......................................................S. fallax

Style 3 à 4 fois plus long que large ................................................................4

4. Extrémité du pénis pourvue d'un renflement déjeté dorsalement ...................5

Extrémité du pénis dépourvue d'une telle protubérance ..............................6

5. Pénis 8 à 9 fois plus long que large ..............................................S. antennata

Pénis 4 à 6 fois plus long que large .............................................S. schwetzi

6. Soie non caduque insérée au voisinage immédiat de l'apex du style ; fémurantérieur armé d'épines ................................................................ S. dreifussi

Soie non caduque insérée à l'union du tiers moyen et du tiers distal ; fémurantérieur dépourvu d'épines.............................................................S. minuta


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7. Longueur de la partie libre du pénis plus grande (1,5 à 2,5 fois) que celle de sabase d'insertion (racine supérieure) ................................................ S. africana

Longueur de la partie libre du pénis égale à celle de sa base d'insertion .......8

8. Longueur des filaments génitaux égale à 3 fois la longueur du coxite ; 10 à 12dents cibariales principales...............................................................S. clydei

Longueur des filaments inférieure ou égale à 2 fois la longueur du coxite, 2 à 5dents cibariales principales .....................................................S. christophersi

E - Détermination des espèces du genre Sergentomyia : femelles

1. Spermathèque tubulaire, sans conduit ni réservoir différencié ......................2

Spermathèque avec réservoir et conduit différenciés ....................................5

2. Dents cibariales au nombre de 60 à 85, formant une palissade

rectiligne .........................................................................................S. minuta

Dents cibariales entre 13 et 20, disposées sur une ligne courbe et formant unfeston ...........................................................................................................3

3. Armature pharyngienne peu différenciée, située dans la partie postérieurerétrécie du pharynx et formée d'écailles finement denticulées ......S. schwetzi

Armature pharyngienne puissante, située dans la partie postérieure renflée dupharynx et formée d'épines plus ou moins puissantes ................................4

4. Armature pharyngienne condiforme, comportant deux types d'épines, lesantérieures longues et acérées, les postérieures ponctiformes ; tache cibarialeovalaire, sans prolongement antérieur .............................................S. fallax

Armature pharyngienne discrètement échancrée, comportant un seul typed'épines, longues et acérées ; tache cibariale pourvue d'un prolongementantérieur ......................................................................................S. antennata

5. Réservoir de la spermathèque annelé ; armature cibariale constituée de deuxtypes de dents, grandes et petites....................................................................6

Réservoir non annelé ; dents cibariales d'un seul type ....................................7

6. Grandes dents cibariales (12-13) jointives ; tache cibariale avec unprolongement antérieur.....................................................................S. clydei

Grandes dents cibariales (4-5) indépendantes; tache cibariale ovalaire, sansprolongement .......................................................................... S. christophersi

7. Réservoir de la spermathèque orné d'une bande équatoriale constituée deponctuations ; fémur antérieur armé d'épines .................................. S. dreifussi

Réservoir dépourvu d'une bande équatoriale ; fémur antérieur inerme ...........8

8. Réservoir de la spermathèque de forme ovale allongé ; dents cibariales (40-50)


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insérées sur une ligne concave ...................................................... S. africana

Réservoir subsphérique ; dents cibariales (15-20) implantées sur une lignedroite .................................................................................................S. lewisi

4-2- Surveillance entomologique

La surveillance entomologique a pour objectifs de :

ß Estimer le risque en décelant la présence des vecteurs et de calculer leursdensités.

ß Orienter la lutte en permettant de délimiter l’espace et la période à risque, dechoisir la méthode de lutte appropriée et l’insecticide efficace en cas de luttechimique.

ß Evaluer l’efficacité des actions entreprises par comparaison de la densité de lapopulation avant et après les interventions et par la comparaison de la densité dela population ciblée à celle d’une population voisine non touchée par l’action.

4-2-1- Techniques de capture des phlébotomes

Elle intéresse la phase aérienne du développement du vecteur. son exécution, avecun matériel et une technique normalisés, valorise l'évaluation entomologique.

Entre diverses méthodes de récoltes de spécimens adultes les procédures nécessitantun matériel et une technique relativement simple sont proposées.

a- Technique permettant d'obtenir des phlébotomes morts

Parmi les techniques permettant la collecte des phlébotomes morts, la technique laplus rentable est :

La capture par piège adhésif

C’est la méthode la plus utilisée au Maroc. On imprègne avec l'huile de ricin lesfeuilles de papiers de dimension: 25 x 20 cm de préférence. A défaut on utilise dupapier format A4 (29,7 x 21) que l'on dispose pendant la nuit dans les lieux de reposou de reproduction des phlébotomes. Selon le site du piégeage, les pièges sontdisposés soit en cornet (cavité cylindrique) soit à la verticale appliqués sur un murou fixés sur un support. Au besoin ils sont maintenus à l'aide d'une petite baguetteflexible ou d’un clou (Fig. 23).

Lorsque ces pièges sont disposés près d'une agglomération ou en bordure de route,il est recommandé d'informer la population et de lui demander sa coopération.

Pour obtenir des résultats quantitatifs, il faut exposer en totalité une seule face ou


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les deux faces du papier.Les pièges sont relevés après une ou plusieurs nuits de piégeage. Ils sont alorsgroupés par station dans une enveloppe résistante à l'huile de ricin sur laquelledoivent être mentionnés au crayon à mine le nombre de papier et le numéro de lastation dont toutes les informations nécessaires correspondantes sont portées sur unregistre.

Les papiers peuvent ainsi être conservés plusieursjours, mais il est conseillé, pour éviter la détériorationdes captures, de les dépouiller au plus vite d'autantplus que les champignons se développent rapidementdans ce milieu, surtout si les papiers sont légèrementhumides.

Les phlébotomes sont retirés du papier imprégnéd'huile à l'aide d'un fin pinceau imbibé largementd’éthanol et mis dans des tubes contenant de l’éthanolà 75° avec une étiquette portant mention, au crayon àmine, de la date de récolte et du n° de la station.

Les densités des phlébotomes sont exprimées en nombre de phlébotomes par m2 depapier adhésif et par nuit.

b- Technique permettant d'obtenir des phlébotomes vivants

b-1 Capture nocturne manuelle sur paroi verticale

Cette méthode, moins encombrante et plus pratique offre toutefois des résultats,dont la fiabilité, dépend largement de l'habileté de chaque prospecteur.Le travail commence au crépuscule et se poursuit pendant les heures chaudes de lanuit ce qui correspond au maximum d'activité des phlébotomes (RIOUX et al,1969). Pour que ce type de piégeage soit productif, il faut que les conditionsatmosphériques soient favorables à la sortie des phlébotomes :

l Température extérieure d'au moins 19° C ;l Absence totale de vent ;l Absence de pluie.

- Matériell Un capturateur à bouche ou tube à aspiration en verre épais (3 mm), de 15 cm

de long et de 4 cm de diamètre.

L'extrémité distale du tube se termine en forme de nasse dont l'ouverture interne a

Figure 23 : Piège adhésifen place


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un diamètre de 5 mm. Le segment interne se prolonge à l'intérieur du tube sur 2 cm,l'extrémité proximale est obturée par un bouchon de caoutchouc, traversé par untube de verre de 5 mm de diamètre. L'extrémité du bouchon se trouvant à l'intérieurdu capturateur est recouverte d'un morceau de tissu élastique à mailles serrées (basde nylon épais). Sur l'extrémité libre s'adapte un tuyau de caoutchouc souple, longde 50 cm destiné à l'aspiration.

l Une torche électrique de poche : elle est choisie en fonction de sa luminosité(suffisante sans être agressive) et de sa maniabilité, équipée d'une pile de 4,5 voltset d'une ampoule de 0,3 ampères. En général, les torches à deux éléments sontparticulièrement indiquées.

- Technique l Se mettre en place devant une paroi lisse et de couleur claire ;l Se déplacer peu à partir du moment où les insectes commencent à sortir ;l Recouvrir du capturateur les phlébotomes qui se posent en marge de la surface

éclairée dans une zone de faible luminosité ;l Aspirer par une brève et légère succion les phlébotomes qui restent prisonniers

au moment de l'envol.

Plusieurs phlébotomes peuvent être piégés dans le même capturateur, maintenufermé à l'aide d'un tampon de coton entre les captures.

Une fois le piégeage terminé, les phlébotomes sont immobilisés à l'intérieur ducapturateur et tués par la fumée de cigarettes ou par un jet de gaz carbonique. Dansle cas où on utilise la fumée de cigarettes, le capturateur et le tissu de nylon devrontêtre soigneusement lavés, rincés et séchés avant une nouvelle utilisation, afin de lesdébarrasser des substances toxiques dont ils sont imprégnés.

b-2 Capture nocturne manuelle sur appât humain

Elle s'effectue la nuit soit dans l'obscurité totale, soit au cours d'un piégeage par latechnique décrite précédemment.

Le piégeur est muni d'une lampe de poche et d'un capturateur en verre de typecourt ou d'un lot de tubes à hémolyse avec bouchons de coton.

Le piégeur doit être attentif afin de détecter la présence du phlébotome dès qu'il sepose sur sa peau car l'insecte ne se manifeste, au début, que par un légereffleurement qui est le seul signe perceptible lorsque la prise de contact n'est passuivie de repas sanguin (ce qui n'est pas rare).


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Tout en demeurant immobile, le piégeur s'assure, en l'éclairant rapidement avec salampe, que le phlébotome est en train de piquer (dans le cas où il ne désire capturerque des espèces anthropophiles). Il le coiffe alors du capturateur ou d'un tube. Lemieux est d'attendre la fin du repas de sang et l'envol spontané de la femelle.

Si le piégeage est effectué par tubes, chaque capture est séparée de la suivante parun petit tampon de coton.

Cette technique de capture est sélective. Elle se prête bien aux études éthologiquescar elle permet l'individualisation des espèces attirées par l'homme et, parmi celles-ci, celles qui se nourrissent de sang humain.

Les phlébotomes capturés sont recueillis comme précédemment. L'anesthésie augaz carbonique sera utilisée pour la récupération des femelles gorgées destinées àêtre mises en élevage.

b-3 Capture nocturne aux pièges lumineux

On installe dans des points déterminés des pièges lumineux du type CDC que l'onallume avant la tombée de la nuit pour les laisser fonctionner jusqu'à l'aube.

Le piège comporte :

l un moteur assurant le fonctionnement d'un petit ventilateur destiné à entretenirune aspiration continue de faible intensité. Au dessus du ventilateur, se trouve unepetite ampoule de 0,3 ampère. Le tout alimenté par quatre piles rondes de 1,5 voltsou d'une batterie pour assurer un fonctionnement efficace pendant toute la nuit etéviter ainsi la fuite des phlébotomes capturés en maintenant la ventilation jusqu'àl'intervention du piégeur (Fig.24).l L'ensemble moteur-ventilateur-lampe se trouve à l'intérieur d'un cylindre

transparent en matière plastique dont la partiesupérieure est couverte d'un grillage métallique évitantla pénétration des insectes de grande taille et dont lapartie inférieure est creusée d'une gorge destinée àl'ajustement de la cage de recueil.l une cage cylindrique recouverte d'un tissu à mailles

très serrées (tissu pour rideaux). Le fond de la cagecomporte un tube de tissu

La partie supérieure, rétrécie, vient s'adapter à l'aided'un élastique à la partie inférieure du cylindre enmatière plastique.

Figure. 24 : Piège lumineuxtype CDC


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Cette méthode est applicable aussi bien pour les phlébotomes exophiles qu'auxphlébotomes endophiles. Néanmoins, les espèces de phlébotomes réagissentdifféremment vis à vis de la lumière.

Les phlébotomes sont tués avant d’être identifiés. Le résultat de ces captures estexprimé en nombre de phlébotomes par piège et par nuit.

b-4 Capture diurne manuelle dans les anfractuosités

Cette technique ne permet pas de récolter un grand nombre de spécimens mais elle offrel'avantage d'un échantillon précis (gîtes de repos, gîtes de ponte) et diversifié (fréquencedes espèces non anthropophiles, importante proportion de mâles) (RIOUX et al, 1969).Elle peut être mise en oeuvre quelles que soient les conditions météorologiques.

Il convient d'utiliser cette fois un capturateur àbouche de type long, identique à celui utilisé pourla capture sur paroi lisse mais d'une longueur de30 cm de façon à pouvoir pénétrer profondémentdans le trou prospecté ou dans les interstices desmurs. Cette recherche doit être effectuée en faisantsubir à l'extrémité du capturateur, tenu à bout debras, un mouvement ascendant afin d'aspirer, enbout de course, au niveau de la partie supérieuredu gîte où les phlébotomes ont l'habitude de setenir (Fig. 25).

Le rendement de la technique dépend à la fois :

l Des mouvements que le piégeur communique au capturateur ;l De la puissance de l'aspiration ;l Du synchronisme des deux actions car l'insecte, au repos dans son gîte, a

tendance à rester plaqué contre les parois et sa force est suffisante pour résisterà une aspiration faible.

4-2-2- Application pratique de la surveillance entomologique

Elle s'effectue au niveau de sites d'observations d’adultes (stations fixes de récolte)choisis selon leur représentativité bioclimatique.Les informations recueillies, et dont la valeur dépend essentiellement de lacontinuité, et de la régularité (fréquence bimensuelle minimum) des observations,permettent l'acquisition progressive de données entomologiques de référencenécessaires, à la délimitation des zones à risques, à la planification des activités delutte et à l'évaluation des opérations anti-vectorielles entreprises.

4-2-3- Evaluation des opérations de lutte

Les observations entreprises, avant et après les opérations, aussi bien dans la zonetraitée que dans une zone témoin, assurent une évaluation correcte de leur impactsur les vecteurs. Elles permettent aussi le contrôle de la rémanence de l'action

Figure 25 : capturateur à bouche


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insecticide attendue d'un produit à effet rémanent.

4-2-4- L'enregistrement et la notification

Dans un souci de normalisation, l'ensemble des informations recueillies par lesdiverses activités, devra être enregistré localement et notifié aux services concernéssur le rapport trimestriel.

4-3- Lutte contre les vecteurs

En raison des difficultés d’identification des lieux de ponte des phlébotomes, il estpratiquement impossible d’envisager une stratégie de lutte antilarvaire. Cependant,l'élimination des gîtes larvaires effectifs ou potentiels de phlébotomes, par exemple lesfumiers, déchets et ordures ménageres contribue à l'élimination des populations devecteurs.

4-3-1- Aspersions Intra-domiciliaires

Par ailleurs, la lutte imagocide peut être menée par des opérations d’aspersions intra-domiciliaires d’un insecticide à effet rémanent couvrant la période de transmission.

En ce qui concerne la leishmaniose cutanée à L.tropica, ces opérations peuventparticiper au contrôle des épidémies (Fig. 26).

Figure. 26 : Techniques Aspersions Intra-domiciliairesVoir fiche technique n°8


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Objectif :

l réduire la densité du phlébotome vecteur ; l arrêter la transmission de la maladie.

Organisation :

Les modalités d’organisation et la technique des opérations de lutte imagocide sontidentiques à celles du programme de la lutte antipaludique.

4-3-2- Moustiquaires de lits imprégnées d’insecticides

L’utilisation des moustiquaires de lits imprégnées d’insecticides permet de protégerla population des piqûres des phlébotomes endophiles. Par conséquent, elle peutcontribuer à la réduction de la densité du vecteur et du contact homme/vecteur.

Technique d’imprégnation des moustiquaires (Fig. 27)

ß Rassemblez le matériel nécessaire : cuvette ousac en plastique, insecticide, dispositif demesure, moustiquaire propre, gants et savon.

ß Mesurez la quantité d’eau appropriée et versez-la dans la cuvette ou le sac plastique :s 1/2 litre pour chaque moustiquaire

synthétiques 2 litres pour chaque moustiquaire en coton

ß Ajoutez dans l’eau la dose corrected’insecticide.

ß Mélangez l’eau et l’insecticide.

ß Plongez les moustiquaires dans la cuvette ou lesac en plastique avec le mélange eau plusinsecticide. Brassez les moustiquairessuffisamment pour les imprégner en totalité.

ß Sortez les moustiquaires et essorez- les doucement

(Si vous les essorez trop fort, vous perderez del’insecticide) ;

ß Faites sécher les moustiquaires imprégnées àplat, de préférence à l’ombre. Vous pourrezensuite les suspendre pour finir le séchage (Voirfiche technique n°7). Figure. 27 : Technique d’imprégnation

des moustiquaires


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Les facteurs à prendre en considération :

l La concentration en matière active du produit à utiliser ;l La dose létale ;l La superficie de la moustiquaire à imprégner ; l La quantité d’eau nécessaire pour imprégner une moustiquaire.

Dans notre cas :

• Utiliser un produit à base de deltaméthrine à 1 % formulé SC.

• Concentration de matière active (m.a) : 10 g/l

• Dose d’application /m2 de moustiquaire : 25mg/m2

• Superficie de moustiquaire : 8 m2

1. Quantité de produit commercial contenant 25 mg de m.a

10000 mg ‡ 1000 ml

25 mg ‡ x ml

Quantité = 25000/10000 = 2,5 ml. Donc la quantité du produit commercial

nécessaire pour imprégner 1 m2 de moustiquaire est 2,5 ml.

2. Quantité de produit commercial nécessaire pour imprégner une moustiquaire

Quantité 8 m2 = 2,5ml x 8 = 20 ml de produit commercial.

3. Quantité du produit commercial nécessaire pour imprégner 100 moustiquaires

Q = 20 ml x100 = 2 litres.


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5 - FICHES TECHNIQUES


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FICHE TECHNIQUE N° 1

LE PRELEVEMENT ET LE DIAGNOSTIC BIOLOGIQUEDES LEISHMANIOSES

1- LE PRELEVEMENT DE LA LEISHMANIOSE CUTANEE (L.C)

Le diagnostic de certitude de la L.C repose sur la mise en évidence du parasite(forme amastigote) au niveau de la lésion soit par un raclage de la lésion, soit parune biopsie cutanée.

Le prélèvement est réalisé par un personnel qualifié.

- RACLAGE DES LESIONS

Il est effectué à la périphérie de la lésion cutanée, dans ses parties infiltrées, enévitant les zones ulcérées ou surinfectées par des bactéries.

•Désinfecter soigneusement l’ulcération cutanée, après avoir enlevé les croûtesqui la recouvrent.

• Avec un vaccinostyle, racler le revêtement cutané en allant vers le centre de lalésion, et de plus en plus profondément, jusqu'à la sérosité plus ou moinsteintée du sang.

• Le produit du raclage et le recueil des sérosités serviront à la confection desfrottis et à la réalisation des cultures.

• Sur une lame porte objet préalablement dégraissée, étaler le prélèvement àl’aide d’un vaccinostyle.

• Ecraser le produit du raclage à l’aide d’une autre lame porte objet.• Le frottis cutané doit être trop mince et non sanglant pour bien observer les

formes amastigotes.• Faire si possible plusieurs lames. • sécher les lames et colorer au Giemsa.

- BIOPSIE CUTANEE

La biopsie est indiquée lors des lésions papulo-nodulaires et se fait à l'aide d'unpunch.

Le prélèvement est ensuite broyé dans de l'eau physiologique stérile contenant desantibiotiques.

Le broyat est soit ensemencé sur milieu de culture, soit utilisé pour faire un frottismince et coloré au Giemsa pour examen direct.

Lorsque la lésion est assez récente, le diagnostic est facile car les leishmanies sontnombreuses dans les cellules macrophagiques.

Dans les lésions anciennes, elles sont plus rares. Elles deviennent extrêmement raresdans les lésions surinfectées par les bactéries et les champignons.


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2- LE PRELEVEMENT DE LA LEISHMANIOSE VISCERALE (LV)

Le diagnostic de certitude de la L.V repose sur la mise en évidence du parasite(forme amastigote) au niveau de la moelle osseuse, du ganglion, de la rate ou dufoie, par une ponction. Elle se fait à l’hôpital par un médecin qualifié etexpérimenté.

La ponction de la moelle osseuse est la plus utilisée, celle de la rate est à éviter caril y a risque de rupture de celle-ci. Le produit de la ponction servira à la réalisationdes cultures et à la confection des frottis qui seront par la suite fixés et colorés.

- COLORATION DE GIEMSA POUR LE DIAGNOSTIC DE LA LEISHMANIOSE

La coloration se fait pour le frottis cutané, la ponction ou la biopsie (voir fichestechniques prélèvement)

ETALEMENT• Bien écraser le prélèvement par apposition.• Préparer plusieurs lames.• Numéroter les lames à l’aide d’un graveur.

SECHAGE• Sécher les lames en les posant verticalement sur un portoir.

FIXATION• Fixer l’étalement à l'alcool méthylique (méthanol absolu) pendant 2 à 5

minutes.

COLORATION• Colorer avec la solution de Giemsa diluée à 10 % dans une solution

physiologique tamponnée à pH 6,8. En cas de manque utiliser de l’eau distilléeà pH 6,8 pendant 15 à 20 minutes.

• Le pH du colorant est un facteur important pour obtenir des frottis bien colorés.Si le pH est supérieur à 6,8 ajouter KH2PO4 à 2%, Si le pH est inférieur à 6,8ajouter Na2HPO4 à 2%.

• Le flacon de la solution mère de Giemsa doit être fermé hermétiquement etgardé à l’abri de la lumière.

• Ne jamais introduire une pipette mouillée dans le flacon de la solution mère.• Le Giemsa dilué est utilisable pendant environ 8 heures, par conséquent, on

préparera la dilution le jour même où elle sera utilisée.

RINçAGE• Laver à l'eau distillée ou l’eau du robinet (débit faible) pour enlever l’excès du

colorant.• Il ne faut pas trop rincer les frottis minces, le colorant risque d’être éliminé.


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SECHAGE• Sécher les lames en les posant verticalement sur un portoir. • En cours du séchage, mettre les lames à l’abri de la poussière et de tout autre

débris qui pourrait tomber dessus et entraîner par la suite des problèmes dediagnostic, les protéger contre les mouches et tout autres insectes susceptiblesde les endommager.

LECTURE DES LAMES• Lire les lames au microscope à l’objectif 100 à l’huile à immersion.• Balayer toute la lame en zigzag horizontalement ou verticalement.

La sensibilité de l’examen microscopique dépend de la compétence dumicroscopiste et du temps de lecture d’une lame.

CONSERVATION DES LAMES

Utiliser l’EUKIT dilué par le toluène ou le xylène :• Déposer deux gouttes du conservateur dilué sur le frottis.• Couvrir à l’aide d’une lamelle en évitant la formation des bulles d’air.• Laisser sécher les lames.

EXAMEN DES LAMES : FORMES AMASTIGOTES

Cette forme se retrouve chez l'homme et les autres vertébrés (rongeurs, chiens,renard …). Elle est arrondie ou ovoïdes, immobile, strictement intracellulaire, avecun diamètre compris entre 2 à 6 mm. Son cytoplasme est bleu contenant deuxponctuations rouges, l'une est grosse excentrée, rouge violacée correspondant aunoyau, l'autre est bacilliforme rouge vermeil correspondant au blépharoblaste. Lorsde la confection du frottis, les cellules macrophagiques hôtes peuvent éclater et lesleishmanies se trouvent éparpillées sur le frottis (Fig. 28).

ACHEMINEMENT DES LAMES VERS LE LABORATOIRE DE REFERENCE

Toutes les lames négatives et positives doivent être envoyées au laboratoire nationalde référence des leishmanioses pour confirmation dans un délai de 15 jours.Les Lames destinées pour le laboratoire de référence doivent être :

• Etiquetées lisiblement au bord de la lame, au moment où le prélèvement estréalisé, le N° du prélèvement à l’aide du graveur (ne pas écrire sur le frottis).

• Dégraissées et rangées dans des boites étanches, servant au transport avec lenom et l’adresse du laboratoire destinataire, et éventuellement du laboratoireexpéditeur.

• Accompagnées des fiches de renseignements des malades prélevés bienremplies.


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3- SERO-DIAGNOSTIC DE LA LEISHMANIOSE PAR IMMUNOFLUORESCENCEINDIRECTE ( IFI )

PRINCIPE

La technique d’immunofluorescence consiste à faire réagir les sérums avec lesantigènes figurés déposés sur lames. Les éventuels anticorps spécifiques sont révéléspar des antiglobulines conjuguées à une substance fluorescente observée aumicroscope à UV.

PREPARATION DES LAMES SILICONEES• Déposer 15 µl de la suspension d’antigène préparée dans chaque puits des

lames siliconées.• Laisser sécher les lames à l’étuve à 37°C, entre 2 et 3 heures jusqu’à séchage

complet.• Les lames préparées et non utilisées le jour même peuvent se conserver 6 moisà moins 20 °C dans une boite fermée hermétiquement.• Au moment de l’emploi, sortir du congélateur le nombre suffisant de lames

préparées ; les sécher pendant 5 mn à 37°C.

INCUBATION DES SERUMS• Diluer les sérums à tester dans le tampon PBS. Les dilutions sont les suivantes :1/25 (20 µl sérum + 480 µl PBS) ; 1/50 (100µl de la solution 1/25 + 100 µl PBS) ;1/100 (100 µl de la solution 1/50 + 100 µl PBS) ; 1/200 ; 1/400...•Déposer 30 µl des différentes dilutions des sérums à tester sur les puits deslames déjà sensibilisées et numérotées.• Placer les lames en atmosphère humide à 37°C pendant 30 mn.• Rincer les lames 3 fois dans 3 bains de PBS (5minutes pour chaque bain).• Sécher les lames à l’air libre en position verticale sur du papier buvard.

PREPARATION DE L’ANTISERUM FLUORESCENT• Préparer une solution de Bleu Evans à 2 % (2g de Bleu Evans dans 100 ml PBS).• Diluer cette solution au 1/5ème (125 µl solution à 2% + 1000 µl PBS) ; dilutionfinale=1/250ème

• Préparer extemporanément la concentration du conjugué fluorescent à utiliseren définissant au préalable la dilution optimale pour obtenir le maximum defluorescence (voir réactifs et matériel).

• Déposer 30 µl du conjugué par puits.• Placer à nouveau les lames en atmosphère humide.• Laver 3 fois dans des bains de PBS. • Sécher les lames à l’air libre en position verticale sur du papier buvard.

OBSERVATION AU MICROSCOPE• Déposer 1 à 2 gouttes de glycérine tamponnée diluée dans un 1 ml de PBS surles lames. • Placer les lamelles.


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Lecture au microscope à fluorescence en lumière UV au grossissement 40.

Résultat négatif : corps entièrement rouge ou fluorescence monopolaire oubipolaire ou très faible liseré fluorescent discontinu.

Résultat positif : fluorescence jaune verdâtre à la périphérie des parasites. La partiecentrale peut être colorée ou non en rouge.

INTERPRETATION DES RESULTAS

Résultat négatif : Absence d’anticorps anti-leishmaniens ou taux non décelable.

Résultat positif : Présence d’anticorps anti-leishmaniens. Seules les réactionspositives aux dilutions supérieures ou égales à 1/100 sont prises en considération.Les titres compris entre 1/40 et 1/100 sont considérés comme douteux.Ces titres sont indicatifs. L’expérience du laboratoire et la corrélation entre lesrésultats de l’examen direct et le tableau clinique sont indispensables pour uneinterprétation correcte.

NB : Quel que soit le titre du sérum examiné, la certitude diagnostique n‘estaffirmée que par la mise en évidence de leishmanies dans la moelle osseuse.

CONSERVATION

- Conserver les réactifs entre + 4° et + 8°C.- Conserver les lames siliconées sensibilisées à – 20°C dans une boite à fermeture

hermétique.

- Eviter les décongélations et congélations des lames.

- Le bleu Evans à 2% se conserve 1 mois à l’abri de la lumière.

- Le tampon PBS se conserve 1 mois à +4°C.

PRECAUTION D’EMPLOI

- Les sérums et les réactifs doivent être stabilisés à une température ambiante 15minutes avant le début de la réaction.

- Utiliser des sérums frais ou congelés à –20°C.- Eviter les sérums troubles, contaminés ou hémolysés.- Le pH du tampon doit être compris entre 7,2 et 7,4.- Renouveler la glycérine tamponnée à chaque test.- Allumer le microscope 10 minutes avant l’utilisation et ne l’éteindre qu’en fin

de lecture. L’observateur doit rester 5 minutes dans la chambre noire pouradapter sa vision.


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4- SERO-DIAGNOSTIC DE LA LEISHMANIOSE PAR REACTION IMMUNOENZYMATIQUE(ELISA)= ENZYME LINKED IMMUNO SORBENT ASSAY

PRINCIPE

C’est une technique à deux couches dans laquelle la présence d’anticorpsspécifiques est révélée par l’emploi d’antiglobulines conjuguées.

La technique est réalisée avec : • des antigènes solubles fixés dans les puits de la plaque de microtitration ;• des anticorps marqués par des enzymes.

En cas de réaction positive, la présence d’enzyme est révélée par un substrat enprésence d’un chromogène.

MODE OPERATOIRE

1- La sensibilisation par l’antigèneDéposer dans chaque puits de la plaque 100 µl d’Antigène dilué dans du tamponcarbonate 0,05 M, pH 9,6 (dilution généralement comprise entre 5 et 20 µg/ml :dilution optimale d’emploi déterminée par des titrages préalables) ;• Incubation : la fixation de l’Ag est réalisée par contact une nuit à 4°C, ou 2

heures à température ambiante ou 1 heure à 37°C ;• Lavage : laver avec H2O physiologique additionnée de Tween 20, laisser agir

5 minutes à température ambiante et renouveler 3 fois ;• Essorage : débarrasser soigneusement les plaques de titration en les secouant

fortement face en dessous contre des feuilles de papiers filtre.

2- Complexation avec les anticorps du sérum• Pour chaque sérum on utilise : Une seule dilution (1/80 ou 1/100) si la réaction

est lue au spectrophotomètre (492 nm), une gamme de dilution de raison 2 àpartir de la dilution initiale de 1/40. Si la réaction est lue à l’œil nu.

• déposer 100 µl du sérum dilué dans le tampon phosphate + BSA + tween 20,pH 7,2.

• laisser agir 30 minutes à température ambiante.• laver et sécher.

3- Complexation avec le conjugué anti IgG-peroxydase

ß Répartir 100 µl de conjugué à la peroxydase (porté à sa dilution optimaled’emploi dans du tampon PBS-BSA-Tween 20, pH 7,2). Incubation 30 minutes àtempérature ambiante.

ß Incubation, lavage, essorage identiques aux précédents.


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4- Réaction enzymatique

ß Répartir 100 µl de substrat (H2O2) et de chromogène OPD-2Hcl

(orthophénylène-diamine-déhydrochloride) dans du tampon citrate 0,07M, pH 5,1.

ß Laisser agir 10 minutes à la température ambiante et à l’obscurité.

5- Arrêt de la réaction

par addition de 200 µl de H2SO4 (2N).

6- Lecture à 492 nm

Pour chaque test, réaliser plusieurs témoins avec des sérums connus, positif, négatifet des témoins conjugué-seul (sans sérum).

EXPRESSION ET INTERPRETATION DES RESULTATS

ß lecture à l’œil nu : l’expression des résultats se fait en titre final dontl’interprétation est liée à la détermination d’un seuil de spécificité, à l’issue decontrôles préalables.

- Mesures au spectrophotomètre: expressionen DO après soustraction des bruits de fondobtenus avec les témoins négatifs et témoinsconjugués seuls (blancs). Dans ces conditionsle seuil de spécificité correspond à des0,1<DO<0,3 alors que les sérums nettementpositifs donnent des DO = 2 ou 3

Figure. 28 : Lame riche en leishmanies après éclatement d’un macrophage


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TRAITEMENT DE LA LEISHMANIOSE VISCERALE

1- Les dérivés pentavalents de l'antimoine

Antimoine de méglumine ou Glucantime® est le traitement de choix au Maroc.

Le principe actif est l'antimoine pentavalent (Sb5+) d'où l'expression des doses enmg de Sb5+/kg/j conformément aux recommandations internationales.

Présentation : ampoule de 5 ml de solution dosée à 1,5g d'antimoniate deméglumine soit 85 mg de Sb5+/ml ou 425 mg de Sb5+/ampoule.

Conduite du traitement

Posologie : La dose préconisée est de 20 mg de Sb5+/kg/j sans jamais dépasser 850mg par jour (2 ampoules).

Durée de la cure : 20 jours sans interruption si bien tolérée. Cette cure peut êtreprolongée ou répétée selon l'évolution clinique et biologique du patient.

Mode d'administration : en injection intramusculaire profonde quotidienne.

Surveillance pré-thérapeutique et per-thérapeutique :

ß Hémogramme ;

ß Constantes hépatiques, rénales et pancréatiques ;

ß Electrocardiogramme.

La guérison est affirmée sur l'amélioration des signes cliniques (fièvre, courbe depoids corporel, réduction de la splénomégalie) et biologique (hémogramme).

Un deuxième examen parasitologique de la moelle ne se justifie qu'en cas de nonamélioration.

˚ En cas d'échec thérapeutique : une seconde cure d Antimoine de méglumine àla même dose initiale peut être proposée 1 mois après, ou un traitement dedeuxième intention par l'Amphotéricine B est à envisager.

2- Amphotorecine B

2-1- Amphotéricine B

ß Nom commercial : F ungizone®.

ß Voie d’administration : Intraveineuse.


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ß Posologie : 1 mg/kg 1 jour sur 2 à atteindre progressivement pour limiter leseffets secondaires.

ß Durée du traitement : est fonction de la réponse clinique.

2-2- Amphotoricine B liposomale

Nom commercial: Ambisome® est le traitement de deuxième intention en cas derésistance prouvée ou probable aux antimoniés.

ß Le principe actif est Amphotoricine B liposomale

ß Présentation : Poudre pour suspension de liposomes pour perfusion à 50 mg :Flacons unidosés de 30 ml et de 15 ml avec filtre stérile, boites de 10.

Conduite du traitement

Posologie : La dose cumulative est de 18 à 25 mg |kg en 6 perfusions :

Une perfusion par jour pendant 5 jours consécutifs et une 6ème perfusion au 10ème

jour chez l’enfant et l’adulte immunocompétent.

Chez l’immunodéprimé, des doses allant jusqu'à 40 mg/kg sur 10 à 20 joursconsécutifs peuvent être administrées.

Durée de la cure : 20 jours sans interruption si bien tolérée. Cette cure peut êtreprolongée ou répétée selon l'évolution clinique et biologique du patient.

Mode d'administration : en injection intraveineuse stricte de 30 à 60 minutes. Laconcentration recommandée pour la perfusion intraveineuse est comprise entre 0,2et 2 mg/ml d’Ambisome.

La guérison est affirmée sur l'amélioration des signes cliniques (fièvre, courbe depoids corporel, réduction de la splénomégalie) et biologique (hémogramme).

Un deuxième examen parasitologique de la moelle ne se justifie qu'en cas de nonamélioration.


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TRAITEMENT DES LEISHMANIOSES CUTANEES

Les indications thérapeutiques varient selon la forme clinique et l’espèce deleishmanie en cause.

Le but du traitement est de :

ß permettre une cicatrisation rapide.

ß réduire la circulation du parasite dans les foyers à L. tropica dont le réservoirpourrait être l'homme.

1- Traitement local

Ce traitement concerne tous les types de leishmaniose cutanée dont le nombre delésions est inférieur à 5 et dont le diamètre est inférieur à 4 centimètres chacune.

Traitement local par antiseptique et pommade antibiotique :

La lésion cutanée est traitée par des antiseptiques (éosine ou bétadine) et desantibiotiques locaux (auréomycine 3 % ...) jusqu'à la cicatrisation complète.

L'injection péri-lésionnelle de Glucantime® :

Elle consiste en une injection péri-lésionnelle au moyen d'une seringue munied'une aiguille fine (type seringue à insuline) de 1 à 3 ml du produit par séance, 2fois par semaine jusqu'à guérison complète qui est obtenue généralement en 3 à 4semaines. La quantité à injecter dépend de la taille de la lésion. L’infiltration doitêtre réalisée sur les bords dans les zones inflammatoires périphériques, de façon àcouvrir tout le pourtour de la lésion en évitant de diriger l’aiguille vers le centre.

NB : Pour la Leishmaniose à L.tropica, la lésion doit être couverte pendant toute ladurée du traitement par un pansement adhésif pour éviter la piqure par le vecteurqui favorise la transmission.

2- Traitement par voie générale

Ce traitement fait appel aux dérivés pentavalents de l'antimoine : Glucantime®

Le traitement par voie générale doit être exceptionnel. Il sera réservé aux patientsprésentant :


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ß Des lésions de grande taille dépassant 4 centimètres de diamètre (même s’ils’agit d’une seule lésion).

ß Des lésions multiples (plus de 4 lésions).

ß Des lésions périorificielles ou périarticulaires.

ß Lésion (s) au niveau des doigts et des orteils.

2-1- Zones où sévit la leishmaniose à L.major

ß En plus des soins locaux par antispetiques et pommade antibiotique, le

traitement est à base de Glucantime® à la dose de 20 mg de Sb5+/kg/j sansjamais dépasser 850 mg par jour (2 ampoules) pendant 2 semaines.

2-2- Zones où sévit la leishmaniose cutanée à L.tropica / L. infantum

ß Le traitement par voie générale doit être exceptionnel et reste préconisé selonles mêmes indications que celles de L. major sauf pour la durée du traitementqui est de 3 semaines.

ß dans le cas de lésion causée par L. infantum, le traitement est urgent par peurde viscéralisation, la durée de traitement est de 2 semaines.


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FICHE TECHNIQUE N° 4FICHE SYNTHETIQUE DU TRAITEMENT DES

LEISHMANIOSESTR

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DécouvertedecasdeleishmaniosecutanéeàL.tropica

Enquête épidémiologique

Cas paradoxal Cas autochtone Cas importé

Enquêted’entourage Informerlaprovinced’originePland’actiondevigilance

PrésencedecasDépistagedemasseauniveaudesécoles

ContinuerlasurveillanceAbsencedecas

AbsencedecasPrésencedecasContinuerlavigilanceDépistagedemasseauniveaudes

localitéstouchées

SinouveaufoyerSiancienfoyerInvestigations(pland’action)Pland’actionderiposte

FICHE TECHNIQUE N° 5CONDUITE À TENIR DEVANT LA DÉCOUVERTE D’UN

NOUVEAU CAS DE LEISHMANIOSE CUTANÉE


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CONDUITE À TENIR DEVANT UN NOUVEAU FOYER DELA LEISHMANIOSE CUTANÉE

1- Identification du foyer par les investigations :

a. Epidémiologiques (incidence, prévalence, temps, espace…) ;

b. Parasitologiques (identification du parasite en cause) ;

c. Entomologiques (identification du vecteur) ;

d. Mammalogiques (identification du rongeur) ;

e. Données démographiques (population par secteurs et localités).

2 - Information et formation du personnel ;

3 - Mise en place des moyens de diagnostic (Personnel et laboratoire) ;

4 - Renforcer le dépistage (Masse école, Masse localité, Enquêteépidémiologique) ;

5 - Prise en charge précoce des malades (Adapter le schéma thérapeutique) ;

6 - Mise en place d’un plan d’action de lutte contre le vecteur /rongeur ;

7 - Sensibilisation de la population ;

8 - Implication des autres départements, Associations et ONGs ;

9 - Assurer le suivi et l’évaluation des actions entreprises ;

10 - Mise en place du plan d’action de riposte pour l’avenir ;

11 - Dans les foyers où la tansmission est active, la déclaration des cas doit se faireà un rythme mensuel ;

12 - La leishmaniose est une maladie à déclaration oubligatoire selon l’arrêtéministériel N° : 683-95 du 31 mars 1995 ;

13 - La liste mensuelle des cas sous format excel doit parvenir au service desmaladies parasitaires au plus tard quinze jours après la fin de chaque mois àl’adresse email suivante : [email protected] ;

14 - L’analyse des données au niveau central se fait par le logiciel épi-infowindows.


85....................

1. Rassemblez le matériel nécessaire :1. Rassemblez le matériel nécessaire :

FICHE TECHNIQUE N° 7Technique d’imprégnation des moustiquaires


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8. Sortez les moustiquaires et 8. Sortez les moustiquaires et essorez-les doucement.essorez-les doucement.Si vous les essorez trop fort, Si vous les essorez trop fort, vous perderez l'insecticide.vous perderez l'insecticide.


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ORGANISATION DES OPÉRATIONS D’ASPERSIONSINTRA-DOMICILIAIRES DANS LE CADRE DE LA LUTTE

CONTRE LES LEISHMANIOSES

Les aspersions intradomiciliaires consistent à asperger, à l’aide des appareils depulvérisation, toutes les surfaces internes et externes des habitations et des locaux

réservées aux animaux ou autres, ceci dans l’objectif de réduire le contacthomme/moustique et d’interrompre la chaine de transmission.

1- Phase préparatoire des opérations d'aspersions

Avant toute chose, il faudra commencer par une formation et un recyclage dupersonnel qui devra participer aux opérations d'aspersions. Une fois lareconnaissance géographique, le recensement des habitants et des locaux, la miseen place de fiches de maison et le métrage des maisons est effectué, il faudra :

- Etablir le circuit d'aspersions ;

- Mettre en place l'insecticide dans les dépôts préalablement choisis ;

- Recruter les ouvriers et les entrainer ;

- Passer à l'exécution des opérations.

1-1- Itinéraire du circuit de pulvérisation

Sur un croquis, tracer l’itinéraire du circuit de pulvérisation et prendre commepoint de départ la formation sanitaire si elle existe ou le dépôt de produits etmatériel.

La quantité du produit nécessaire pour chaque localité sera calculée en se basantsur une estimation d’une superficie moyenne à traiter par maison de 600 m2 par"maison".

1-2- Recrutement des ouvriers pulvériseurs

Ils seront recrutés parmi la population de la commune rurale et si possible du soussecteur intéressé. Ceci est très important car ces ouvriers seront connus de lapopulation donc mieux acceptés et en plus il n'y aura pas de problème de transportà résoudre.

1-3- Equipement type d'un ouvrier pulvériseur

Chaque ouvrier pulvériseur chargé d'effectuer les pulvérisations, doit être doté de :


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- Un appareil pulvériseur ;- Une sacoche individuelle pour le transport de l'insecticide ;- Du savon ;- Une tenue de travail et un casque de protection, lunettes, masque, bottes, gants ; - Eprouvette graduée en plastique, dans le cas échéant utiliser une seringue

graduée.

1-4- Entraînement des ouvriers ''pulvériseurs''

a- Objectifs

- Familiariser les ouvriers avec le maniement de l'appareil ;

- Apprendre comment préparer la suspension avec le matériel disponible ;

- Acquérir la technique de pulvérisation et être en mesure de pouvoir traiter

correctement 20 m2 à la minute.

b- Préparation de la suspensionProcéder de la façon suivante :

- Remplir l'appareil de pulvérisation avec 10 litres d’eau ;- Verser le contenu de produit nécessaire dans l’appareil (75 ml du produit à

base de l’alpha-cyperméthrine SC 10%) ;- Fermer l'appareil et le secouer deux ou trois fois pour obtenir une suspension

homogène ;- Mettre l'appareil sous pression jusqu'à ce que la flèche du manomètre atteigne

l'extrémité supérieure du secteur de travail (bande colorée du manomètre) ;- Lors de la première mise en service, chaque ouvrier compte le nombre de

coups de pompe nécessaire pour amener son appareil à la pression de travail,ceci en prévision d'une défection ultérieure éventuelle du manomètre ;

- Au cours du travail, dès qu'il constate une diminution de pression, on pompepour atteindre la pression de travail.

c- Aspersions sur mur d'entraînement

Pour faciliter l'apprentissage de la technique des aspersions, on trace sur un mur

quelconque (à condition qu'il ait une superficie égale ou supérieure à 20 m2) desbandes repères de 60 cm de largeur.

Le traçage du mur pourra se faire à l'aide d'un morceau de charbon ou d'une craiede couleur visible (Fig. 29).


....................90

Pour permettre à l'ouvrier de garder la même distance entre le gicleur et le mur àtraiter (45 cm environ), on peut dans un premier temps attacher au bec de la lanceun morceau de roseau ou de bois d'une longueur de 45 cm.

Modèle de mur d'entrainement

Surface de la bande : 2,20 m x 0,65 m = 1,43 m2 surface totale : 1,43 m2 x 7 bandes= 10,01 m2 (surface à couvrir en 30 secondes). Si les dimensions du mur le

permettent, il suffit de tracer 14 bandes pour avoir une surface de 20 m2 à couvriren une minute.

Le tracé du mur doit débuter à partir du sol.

L'ouvrier ne sera déclaré apte que lorsqu'il pourra traiter correctement en une

minute 20 m2.

L'entraînement des ouvriers doit s'effectuer juste avant le début des opérations.

Avant de décider de la date du lancement des opérations d'aspersions, on doits'assurer que :

- Les itinéraires des équipes chargées du traitement des localités dans les sous secteurs ontété établis, ceux-ci doivent être adaptés de façon à éviter les pertes de temps et lesoublis de certaines maisons situées loin de la localité d'origine ;

- Le matériel d'aspersions (appareils, accessoires et tenues de travail) a été vérifiéet mis en place au niveau des secteurs intéressés ;

- Les secteurs sont dotés en pièces de rechange pour les appareils d'aspersions

Figure. 29 : Modele de mur d’entrainement


91....................

(joints, garnitures de piston) ;

- La population a été informée et motivée par le canal de l'éducation sanitaire ;

- Les autorités locales et les élus ont été informés et leur collaboration a étésollicitée.

2- Phase opérationnelle

Les opérations d'aspersions doivent être entreprises avant le début de la saison detransmission qui coïncide avec le début du développement des phlébotomes.

Le traitement insecticide doit toucher toutes les habitations des localitésprogrammées.

2-1- Préparation de la maison

Le chef d'équipe doit avertir au fur et à mesure les habitants de la localité à traiterla veille ou mieux encore quelques jours à l'avance au sujet de la préparation deleur maison.

Pour cela :

- Faire sortir de chaque maison tous les objets ou produits ayant rapport avecl'alimentation (farine, grains, couscous, fruits, jarre pour eau etc.) ainsi que tous lesrécipients servant aux repas ou à leur préparation ;

- Faire sortir les meubles ou les déplacer vers le centre de la pièce à traiter (armoire,buffet, grands coffres) de façon à permettre la pulvérisation totale des murs ;

- Les cadres, photos, gravures et autres collés à la paroi seront traités au même titreque la paroi elle même. S'ils sont accrochés au mur en position oblique, par rapportà lui-même, il faut les décrocher et traiter les deux faces antérieures et postérieures ;

- Les enfants (nouveau-nés en particulier) devront bien entendu être éloignés despièces au moment de la pulvérisation ;

- Les animaux d'élevage et de basse-cour (poulet, lapins) ne doivent pas séjournerdans les pièces pendant la pulvérisation ;

- Les locaux où seront entreposés les aliments destinés aux animaux (fourrage) neseront pas traités sauf si ces locaux sont situés dans l'étable ou communiquent avecelle, il en sera de même des hangars et des magasins non habités.

2-2- Couverture totale de la maison

a- Locaux habités

Il est indispensable de traiter les surfaces complètes des parois (du sol au plafond) :

- la surface complète du plafond ou toit (attention aux poutres rondes : 2 passages) ;


....................92

- L’encadrement de toutes les ouvertures ;

- Les portes donnant à l'extérieur, seulement la face intérieure ; les portes internes,les deux accès ;

- Les niches creusées dans les parois des murs (à traiter très soigneusement) ;

- Meubles fixes (lits, placards, étagères) à traiter, le dessous en particulier ;

- Meubles mobiles : Traiter le dessous tables seulement (chaînes, tabourets), traiterle dessous et la face postérieure (buffets, armoires, coffres).

b- Abris d'animaux

Doivent être traités entièrement et soigneusement comme une habitation humainey compris les porcheries, les poulaillers, les clapiers, les niches à chiens….

Sont exclus de la pulvérisation :

Les magasins, les dépôts de fourrage, les hangars métalliques et d'une façongénérale tous les bâtiments inhabités par les hommes et les animaux.

Cette façon d'appliquer la pulvérisation est appelée COUVERTURE TOTALE.

c- Grottes, caves et autres abris naturels

Doivent être traités s'ils sont utilisés même de façon temporaire et de courte duréecomme habitation humaine ou abris des animaux.

2-3- Technique de la pulvérisation

a- Le port de l'appareil

Il doit être placé sous le bras gauche (Bretelle sur l'épaule), la partie supérieure del'appareil dirigée vers l'avant pour pouvoir à tout moment contrôler le manomètre(secteur coloré de travail).

b- Maniement de la lance

- Distance gicleur/paroi : cette distance doit être de 45 cm. Pour l'obtenir, il estnécessaire pendant la période d'entraînement de fixer au gicleur sur la lance de sonappareil une tige de bois ou de roseau, d'une longueur de 45 cm à partir del'extrémité du gicleur.

- Le geste : doit être régulier, le poignet souple, la pulvérisation doit se faire parbandes verticales et parallèles, qui doivent se recouvrir parfaitement, chaque bandecouvre de 70 à 75 cm en largeur.


93....................

- Le rythme : c'est une question d'entraînement pour obtenir une cadence régulière

permettant de traiter 20 m2 en une minute ou 1 m2 en 3 secondes.

Tous ces points ne seront obtenus qu'après :

- Une sélection sérieuse faite après essai des candidats les plus doués pour ce travailau moment du recrutement des ouvriers pulvériseurs ;

- Un entraînement poussé de plusieurs jours au secteur, tendant à obtenir des

ouvriers pulvériseurs qui traitent une surface de 20 m2 (mesurée à l'avance) en uneminute.

2-4- Incidents relevés en cours de la pulvérisation

a- Le gicleur est bouché

Le démonter et le laver à l'eau propre, souvent il suffira de souffler pour ledéboucher (Sans contact direct avec la peau de la bouche).

Si cela est insuffisant, employer une brindille de paille.

b- La suspension n'arrive pas à la sortie du gicleur

A l'aide de la soupape de sûreté, procéder à une décompression de l'appareil, puisdémonter le tube plongeant, vérifier le filtre, le nettoyer (lavage à grande eau) et leremonter.

c- Le joint de l'orifice de remplissage fuit

Décompresser l'appareil comme ci-dessus, puis démonter la pompe et retourner lejoint, le changer s'il est abîmé (cette observation est valable pour tous les points).

d- Le manomètre ne fonctionne pas (et en l'absence de manomètre de rechange)

- Lors de la première mise en service de son appareil chaque ouvrier devra s'assurerdu nombre de coups de pompe nécessaires pour amener celui-ci à la pressionnormale de travail, c’est-à-dire amener l'aiguille du manomètre à l'extrémitésupérieure du secteur de travail (zone colorée). Ce nombre de coups qui varied'après la manière de pomper et l'appareil lui-même, est de l'ordre de 45. De cefait en cas de défection du manomètre, l'ouvrier n'aura qu'à pomper le nombre decoups déterminé antérieurement.

- Après six minutes de travail (sous le contrôle direct du chef d'équipe) repomper ànouveau 30 coups, ce qui permettra de rétablir une pression suffisante pour


....................94

terminer la pulvérisation jusqu à ce que l'appareil soit vide.

3- Supervision des aspersions

La supervision des aspersions constitue un élément fondamental de cette activité.Elle doit s'exercer à tous les niveaux et être constante.

Le chef d'équipe devra veiller à ce que le travail des ouvriers qu'il encadre soitcorrect. Il doit éviter de les disperser sur plusieurs maisons, essayer autant que

possible de regrouper l'équipe dans une même maison afin de mieux surveiller leurtravail et corriger au fur et à mesure les erreurs qui se produisent.

Le chef de secteur, le major de circonscription, l’animateur des maladies parasitaireset le technicien d’hygiène sont également responsables de cette opération.

4- Instructions concernant le rattrapage

Le chef de secteur remettra la copie de la fiche de rattrapage au chef de l'équipe.

Les maisons inscrites dans la fiche de rattrapage doivent être traitées dès quepossible.

5- Evaluation des aspersions

L’évaluation des aspersions est effectuée par le chef de secteur, le major de lacirconscription, l’animateur des maladies parasitaires et le technicien d’hygiène, lemajor du SIAAP et le médecin chef du SIAAP.

Une fiche de supervision des aspersions sera rempli par le chef du secteur.

5-1- En cours des opérations

Elle a pour objectifs :

- d'apprécier la qualité du travail fait et de rectifier les éventuelles anomalies qui

N° de lamaison

Nbred’habitants

Maisons traitées Maisons non traitéestotalement partiellement refus absence Autre

Tableau 3 : Tableau récapitulatif des opérations d’aspersions


95....................

seront relevées ;

- de mesurer l'avancement du travail.

5-2- A la fin des aspersions

L'évaluation est systématique, elle est effectuée sur un choix au hasard aussi biendes localités que des maisons. Il consiste à inspecter les surfaces traitées pourapprécier la qualité du travail et faire régulièrement des captures de phlébotomespour évaluer l’efficacité du traitement et la rémanence préconisée du produit.

L'objectif principal est d'apprécier la couverture réalisée.


....................96


INSECTICIDE A BASE DE L’ALPHACYPERMETHRINE

100 Gramme/litre Suspension Concentrée

1- propriétés

C’est un insecticide adulticide. Il agit par contact et par ingestion. Il est utilisé pourla lutte contre les vecteurs de maladies et les nuisances à savoir les phlébotomes,moustiques, mouches, cafards et autres insectes rampants. Il appartient à la familledes pyréthrinoides de synthèse.

2- Formulation

Suspension concentrée contenant 100 g de l’alphacyperméthrine par 1 litre deproduit commercial.

3- Dose et mode d’emploi

- Dose d’application :

La dose d’utilisation est de 0,03 g de matière active par m2.

- Utilisation du produit en intradomiciliaire :

Sachant que le débit de l’appareil à utiliser est de 0,8 l/min et qu’il faut traiter une

superficie de 20 m2 par min, il faut mélanger 75 ml de produit commercial dans

10 litres d’eau. Cette préparation permettra de traiter une superficie de 250 m2.

4- Matériel utilisé

Pulvérisateurs manuels à pression préalable.

5- Toxicité du produit

Il présente un danger pour les abeilles.

Il est toxique pour les poissons et les invertébrés aquatiques en milieu naturel.

6- Antidote

Il n’y a pas d’antidote spécifique.

7- Précautions d’utilisation

- Ne pas pulvériser face au vent ;


97....................

- Eviter le contact corporel direct avec le produit concentré ;

- Eviter d’inhaler directement ou d’avaler le produit concentré ;

- Eviter lors de l’épandage de contaminer les produits alimentaires ;

- Se laver les mains et la peau découverte au savon après manipulation ;

- Laver les vêtements contaminés après utilisation ;

- Ne pas appliquer au dessus d’eau contenant des poissons ;

- En cas d’accident ou de malaise, consulter immédiatement la formationsanitaire la plus proche muni de l’étiquette.

8- Considérations relatives à l’élimination

- Ne pas rejeter en milieu naturel les eaux de lavage ;

- Bien vider et bien rincer les emballages souillés et les rendre inutilisables ;

- Incinérer les déchets et résidus dans un centre agréé ou procéder à leurenfouissement dans le sol en évitant toute contamination des sources d’eau.


....................98

Progra

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FICHE TECHNIQUE N° 10SCHÉMA ORGANISATIONNEL DES ACTIVITÉS DE LA LUTTE CONTRE LES LEISHMANIOSES


99....................

FICHE TECHNIQUE N° 11STRUCTURE ORGANISATIONNELLE CHARGÉE DE LAGESTION DU PROGRAMME DE LUTTE CONTRE LES

LEISHMANIOSES


....................100


101....................

6 - INDICATEURS D’ÉVALUATION


....................102


103....................

6-1- Indicateurs d’évaluation du programme de lutte contre le parasite

L’atteinte des objectifs du programme se fait par l’évaluation qualitative etquantitative des activités du programme :

• L’évaluation qualitative relève de l’encadrement technique de l’activité par lesdifférents niveaux de supervision. Une grille de supervision est utile pour mieuxcerner les problèmes posés et améliorer les méthodes et techniques de travail.

• L’évaluation quantitative repose essentiellement sur les performances atteintes.Elle se fait par l’appréciation des indicateurs de performance et d’impact parl’analyse des données du système d’information spécifique à chaque activité.

Il existe des indicateurs de mesure de performance et des indicateurs d’appréciationd’impact.

6-1-1- Les indicateurs de mesure de performance

• Les indicateurs de dépistage

Ils permettent d’évaluer les activités de dépistage et leur rentabilité.

a- Taux de couverture de dépistage passif : C’est le rapport d’examens cliniquesréalisés par le dépistage passif sur la population exposée au risque. Il permetd’orienter sur la qualité de surveillance.

Nombre d’examens cliniques réalisés par le dépistage passif x100Population exposée

b- Taux de couverture par le dépistage actif : C’est le rapport d’examens cliniquesréalisés par le dépistage actif sur la population cible programmée (écoles, localités).

Ce taux de couverture du dépistage actif doit atteindre 100% au niveau des écoleset 80% au niveau des localités.

Nombre d’examens cliniques réalisés par le dépistage de masse x100Population cible


....................104

• Les indicateurs de traitement

Ils permettent d’apprécier la qualité de la couverture thérapeutique et la continuitédu traitement.

a- Taux de couverture médicamenteuse :

Il s’agit du rapport entre le nombre de malades traités complètement et le nombrede malades diagnostiqués, le taux obtenu est exprimé en pourcentage.

Nombre de malades traités x 100Nombre de malades diagnostiqués

b- Taux de continuité du traitement :

C’est le rapport entre le nombre de prises de traitement réalisées et le nombre deprises de traitement programmées, exprimée en pourcentage.

Nombre de prises réalisées x 100Nombre de prises programmées

6-1-2- Les indicateurs d’appréciation d’impact

Ces indicateurs permettent l’évaluation, le suivi de la situation épidémiologique etl’amélioration du rendement en matière de prise en charge des malades.

•Indicateurs de dépistage

a- Taux de positivité : c’est le rapport du nombre de prélèvements sur lames positifssur le nombre de lames examinées (exprimé en pourcentage).

Nombre de prélèvements positifs x 100Nombre de prélèvements examinés

b- L’Incidence cumulée : c’est le nombre de nouveaux cas de leishmaniose dépistéspour cent mille habitants dans une population exposée donnée en une année.

Nombre de nouveaux cas dépistés en une année x 100 000Population exposée pendant la même période

• Indicateurs de traitement

Le taux de guérison : c’est le rapport du nombre de malades guéris sur le nombrede malades traités, exprimé en pourcentage.

Nombre total de malades guéris après traitement x 100Nombre total de malades traités


105....................

TABLEAUX RECAPITULATIFS

DES INDICATEURS DE LUTTE CONTRE LE PARASITE

Indicateurs Formules de calcul Normes ou critèresd’appréciation

De performance

Taux de couverture parle dépistage passif

Examens cliniques réaliséspar le dépistage passif

x100/population exposée

Aucune, il doit évoluerselon une progression

annuelle constante

Taux de couverture parle dépistage actif

Examens cliniques réaliséspar le dépistage actif

x100/population cible

Le rapport doit être égal à100% dans les écoles et80% dans les localités

D’impact

Taux de positivitéNombre de prélèvementspositifs x 100/ Nombrede prélèvements effectués

Un taux de positivité élevépeut être un indice de

transmission

Incidence cumulée

Nombre de nouveaux casdépistés en une année x

100 000/ Populationexposée pendant la même

période

Doit en principe décroitrequand un programme de

lutte est bien mené

Indicateurs Formules de calcul Normes ou critèresd’appréciation

De performance

Taux de couverturemédicamenteuse

Nombre de maladestraitésx100/Nombre demalades diagnostiqués

100% des maladesdiagnostiqués doivent être

traités

Taux de continuité dutraitement

Nombre d’injectionsréalisées x100/nombre

d’injections programmées

Plus de 90% des maladesdoivent être traités

totalementD’impact

Taux de guérisonNombre de malades guérisx100/nombre de malades

traités

Ce taux doit être égal à100%


....................106

6-2- Les indicateurs de la surveillance mammalogique et de la lutte antivectorielle

La surveillance mammalogique et la lutte anti vectorielle sont des activitésimportantes pour le programme de la lutte contre les leishmanioses. Leurévaluation permet au fur et à mesure de relever les défaillances et corriger lesméthodes et techniques de travail.

6-2-1- Indicateur de surveillance et lutte contre les rongeurs

Il permet de mesurer la densité des rongeurs par unité de surface infestée, c’est lerapport du nombre de terriers actifs multiplié par cinq par hectare :

Nombre de terriers actifs x5 Surface de la station (en hectare)

6-2-2- Indicateur de surveillance du phlébotome de leishmaniose à Leishmaniatropica

Il permet de mesurer la densité du phlébotome par deux méthodes :

- Densité par CDC (piège lumineux) = Nombre de phlébotomes capturés / piège / nuit- Densité par papier imprégné = Nombre de phlébotomes capturés

m2 de papier imprégné par l’huile de ricin

6-2-3- Indicateur des opérations d’aspersion intra domiciliaire pour laleishmaniose cutanée à Leishmania tropica

Le taux de couverture de maisons par opération intra domiciliaire : c’est le rapportde maisons aspergées par rapport au nombre des maisons recensées.

Maisons aspergées x 100Maisons recensées

6-2-4- Indicateur de l’introduction des moustiquaires

Le taux de protection de la population par les moustiquaires imprégnées : c’est lerapport de la population protégée par les moustiquaires par rapport à la populationtotale.

Population protégée par les moustiquaires x 100Population totale

6-2-5- Indicateur d’amélioration des conditions d’hygiène

Taux de réalisation de compagnes de propreté : c’est le rapport du nombre decompagnes réalisées par rapport au nombre de compagnes prévues.

Compagnes réaliséesx100Compagnes prévues


107....................

6-2-6- Indicateur de la lutte contre le phlébotome vecteur de la maladie

Taux d’efficacité de la lutte contre le vecteur : c’est le rapport du nombre de gitesassainis par rapport au total des gites assainis et traités chimiquement.

Nombre de gites assainis x100Nombre de gites assainis + Nombre de gites traités chimiquement


....................108


109....................

7 - SYSTÈME D’INFORMATION


....................110


111....................

Le support d’information mis en place doit permettre de connaître :ß le nombre d’examens effectués ;ß l’origine des différents prélèvements ;ß le nombre de cas dépistés et leur localisation ;ß la classification des cas en vue de délimiter les foyers de transmission ;ßLa prise en charge thérapeutique.La saisie des données nécessaires à l’élaboration de l’information est faite à partir des

documents techniques suivants.

7-1- Bon individuel de prélèvement

Objectif : consigner les prélèvements effectués dans le cadre du dépistage sélectif actif oupassif.

Utilisation : Ce bon est établi en double exemplaire. L’original accompagne le prélèvement etla souche est conservée dans la formation sanitaire.


....................112

Il doit être rempli de façon précise et écrit lisiblement pour permettre sa transcription sur leregistre du laboratoire.Caractéristiques :

- Carnet avec 50 bons originaux et 50 souches ;- Dimension : 13 cm x 17 cm ;

- Imprimé en recto verso sur papier bulle jaune.

Il comprend 2 parties :

wLa première concerne l’identité du malade, ses coordonnées ainsi que certaines informationscliniques. Elle est remplie au moment du prélèvement par celui qui l’a effectué. Pour lesrenseignements où il y’a une case, il suffit de mettre une croix dans la case correspondante.

wLa seconde est réservée au laboratoire qui doit y porter les résultats de l’examen.

7-2- Bon collectif de prélèvement

- Objectif : enregistrer les prélèvements faits au cours d’une enquête autour d’un cas ou dedépistage de masse.

- Utilisation : ce bon est établi en 1 seul exemplaire. Il doit être rempli correctement et écritlisiblement pour permettre sa transcription sur le registre du laboratoire.

Il comprend également 2 parties :

- La 1ère est destinée à la provenance des prélèvements et aux motivations de ces prélèvements.Il faut mettre une croix dans la case correspondante selon qu’il s’agit d’enquête d’entourage(dans ce cas, il ne faut pas omettre d’inscrire le numéro du cas qui a motivé les prélèvements)ou d’enquête de masse. Le n° d’ordre d’enregistrement commence par 1,2,3 etc. Ce n° est àporter sur la lame correspondante.

L’identité, le sexe, l’âge et l’adresse doivent être inscrits devant chaque n° de prélèvement.

- La 2ème partie est réservée à l’enregistrement des résultats des examens.


113....................


....................114

Nom del’établissement scolaire

Nombre desélèves

Nombre d’ examenscliniques réalisés

Taux decouverture%

Date de l’opération

7-3- Dépistage de masse

Programme de la lutte contre les leishmanioses

Plan d’action de dépistage de masse au niveau des établissements scolaires

Province :…………......………… Secteur :…...…………… ………… Année :………................………


115....................

Plan d’action de dépistage de masse au niveau des localités/quartiers

Province :…………............……… Secteur :…………..............………… Année :…....………......……

Nom deslocalités/quartiers

Population

Nombre

d’ examens cliniques

réalisés

Taux decouverture%

Date del’opération


....................116


Tableau récapitulatif des opérations du dépistage de masse au niveau desétablissements scolaires

Province :…......................... Secteur :…......................... Date de l’opération : /…..../ /…..../ /…..../

Etablissementsscolaires

Nombredes élèves

Elèvesexaminés

Prélèvementseffectués

Prélèvementspositifs

Castraités

Cas guéris Observation

La classe Nombredes élèves

Elèvesexaminés


Prélèvementpositif

Castraités

Cas guéris Localitéd’origine


Opérations du dépistage de masse au niveau des établissements scolaires

Secteur :.................... Etablissements scolaires :................. Date de l’opération : /..../ /.../ /…../


117....................


Tableau récapitulatif des opérations du dépistage de masse au niveau des localités

Province :……....................….. Secteur :….........…...........….. Date de l’opération : /...…/ /...…/ /...…/

Nom de lalocalité/quartier

Populationtotale

Populationexaminée



Castraités

Casguéris

Observation

N° dufoyer/Chef du

foyer

Nombred’habitants

Habitantsexaminés



Castraités

Casguéris

Observation


Opérations du dépistage de masse au niveau des localités/quartiers

Secteur :…..................….. localité/quartier :…................….. Date de l’opération : /..…/ /..…/ /..…/


....................118

7-4- Enquête épidémiologique autour d’un cas de lesishmaniose

Objectifs : Consigner tous les renseignements issus des investigationsentreprises auprès du malade pour permettre de déterminer l’origineprobable de l’infection.

Utilisation : Ce formulaire est rempli chaque fois que l’on entreprend uneenquête autour d’un cas dépisté.

L’enquêteur se doit de poser les questions d’une manière simple et précise, dereposer plusieurs fois la même question si nécessaire, éventuellement la reprendresous une autre forme pour qu’elle soit bien comprise.

Les différentes rubriques composant ce questionnaire sont les suivantes :

- Localisation et identification du malade ainsi que les renseignements dulaboratoire obtenus à partir des bons de prélèvements Leish.1 et Leish.2.

- Caractéristiques de la maladie : Cette rubrique est complétée auprès du malade.pour mieux préciser les dates, se reporter aux événements religieux, locaux ounationaux.

Dans le cas où le malade a été traité par un médecin ou hospitalisé, demander àvoir : ordonnances, carnet de soins, bulletin de sortie etc...

- Enquête d’entourage : Indiquer le nombre de prélèvements réalisés dansl’entourage immédiat du malade et chez les habitants des maisons avoisinantes.

- Mesures de lutte contre le réservoir animal : Préciser les modifications apportésau biotope des rongeurs et éventuellement les traitements chimiques entrepris.

- Rechercher l’origine de la contamination : C’est l’une des rubriques importantesdu questionnaire car elle permet de déterminer le lieu probable de l’infestation ducas.

- Conclusion de l’enquête : Elle doit porter sur l’origine probable du cas.


119....................

Formulaire d’enquête épidémiologique

Cutanée /__/ Viscérale /__/

ÿ Identification du malade

Nom du malade :…………………............. Nom du chef du foyer :…………….......................……

Age : …......... sexe : F /__/ M /__/ Profession :………………………………………......................

Province :………………….....… Commune :………….....…………… Secteur :………………………....

Localité :………………….....… urbain /__/ rural /__/

Nombre d’habitants dans la maison : ………………….....… dans la localité : ……………...

Localité de résidence secondaire : ……………….....…......................................................................

ÿ Renseignements sur la Maladie

Type de dépistage : S.Passif /__/ S.Actif /__/ M.École /__/ M.Localité /__/E.Épidémiologique/__/

Date de début de la maladie /__/ /__/ /_____/

Hospitalisation : lieu : ……………….....… N° d’hospitalisation :……………….....…

Date d’entrée /__/ /__/ /_____/ Date de sortie /__/ /__/ /_____/

ÿ Renseignements cliniques :

- Leishmaniose viscérale :

Fièvre /__/ durée en jours /__/ pâleur /__/ Splénomégalie /__/

Amaigrissement /__/ Adénopathies /__/ Hépatomégalie /__/

Autres signes cliniques (à préciser) : …………………………………………………

- Leishmaniose cutanée :

Localisationx

Taille des lésions Nombre des lésions

< 4cm >= 4cm < 5 >= 5


....................120

ÿ Renseignements du laboratoire

ÿ Traitement

Leishmaniose viscérale :

Médicament administré : ………………….....…......................................................................................

Date de début du traitement : /__/ /__/ /_____/ date de la fin : /__/ /__/ /_____/nombre de prises : /__/

Leishmaniose cutanée :

Type de traitement :

Traitement local /__/ Infiltration du glucantime /__/ Nombre d’infiltrations……….....

Traitement général /__/ Nombre d’injections...… Dose et durée de traitement......…

ÿ Entourage du malade

Leishmaniose viscérale :

Cas de Leishmaniose connu : dans la maison : oui /__/ non /__/

dans l’entourage: oui/__/non/__/

Leishmaniose cutanée :

Cas de Leishmaniose connu : dans la maison …….…....... dans l’entourage………............

Prélèvement effectués : dans la maison ……..............…....... dans l’entourage ……..............

Prélèvement positifs : dans la maison ……..................…....... dans l’entourage……................

ÿ Vecteur

Capture de phlébotome : Méthode utilisée :.........….............. Lieu de capture.......…...........

Espèces identifiées :……..................….................. Nombre par espèce .................…....................

Espèces parasitées :……..................…................... Nombre par espèce .................…....................

ÿMoustiquaires

Mise en place : Oui /__/ Non /__/

Date de mise en place : /__/ /__/ /_____/

Date de réimprégnation : /__/ /__/ /_____/

Type deprélèvement

N°Prélèvement

Date deprélèvement

Dated’examen

Résultat

L.VSérologie

Frottis demoelle

L.CFrottis cutanée

Biopsie


121....................

7-5- Registre des cas


....................122

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7-6- Liste des cas des leishmanioses (cutanée et viscérale)


123....................

7-7- Rapport Triméstriel

Comme son nom l’indique, c’est un périodique destiné au recueil et au traitementdes données sur les activités réalisées au cours du trimestre.

Objectifs :

- Consigner les données relatives aux activités de surveillance et aux informationsépidémiologiques ;

- Evaluer les performances enregistrées par l’état d’avancement du programme.

Utilisation :

Ce rapport est établi tous les trimestres en 4 exemplaires.

Il comprend 2 parties :

- la 1ère est destinée aux données sur les activités réalisées ;

- la seconde permet de faire l’analyse des performances enregistrées.


....................124


125....................


....................126

7-8- Feuille d’enregistrement des examens de laboratoire

Objectifs :

- inscrire les résultats d’examens des prélèvements qui ont été faitsau niveau des formations sanitaires ;

- évaluer le rendement du laboratoire.

Utilisation :

Ces feuilles sont assemblées en un registre qui est tenu à jour auniveau du laboratoire. Chaque feuille de registre comprend 2 parties :

- une relat ive à la provenance des échant i l lons ains i qu’auxcirconstances qui ont motivé les prélèvements. Cette part ie estcomplétée à partir des bons de prélèvements (Leish.1 et Leish.2) ;

- l’autre est destinée aux résultats des examens effectués.


127....................

7-9- Evaluation des méthodes de piègeage

Fiche de description des sites

Province : ....................................................................................................................................................

C/S : ..............................................................................................................................................................

Secteur : .....................................................................................................................................................

Localité : ....................................................................................................................................................

Code du site: ............................................................................................................................................

Nom du propriétaire : ...........................................................................................................................

Coordonnées GPS : Longitude :……….. Latitude :……….. Altitude : ..................................

Méthode de piégeage : Piège adhésif /__/ Piège lumineux /__/Site de piégeage : Habitation /__/ Abris animal /__/ autres /__/Type d’abris animal : Ecurie /__/ Poulailler /__/ Clapier/__/ autres /__/

Formulaire d’enregistrement des donnéesCapture par Pièges adhésifs

Province : ...... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. ..

C/S : ...... .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .

Secteur : ...... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .

Localité : ...... .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ..

Date de pose des papiers imprégnés : ...... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. ..

Date de récupération des papiers imprégnés : ...... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... ..

SiteNom du

propriétaire

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Code duflacon*

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Calcul de la densitéD=Ph/SS=2xLxlxP (L et l sont la longueur et la largeur (en mètre) de la feuille utilisée)


....................128

Capture par Pièges lumineuxProvince : ....... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. ..

C/S : ....... .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .

Secteur : ....... .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ..

Localité : ....... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ...

Date de pose du piège CDC : ....... .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ..

Date de récupération du piège CDC : ....... .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .. .. ... .. .. .. .. ... .. .. .. .

Etat du piège CDC : Marche /__/Arrêt /__/

Calcul de la densité

D=Ph/P

* En plus du code, reporter les informations: Localité, site, date decapture sur une étiquette et la mettre dans le flacon

SiteNom du

propriétaireNbre de

papiers posés

Nbre de papiersrécupérés

“p”

Nbre dephlébotomes

”PH”

Code duflacon*

Densité

“D”

S1

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Total


129....................

7-10- Evaluation de l’introduction des moustiquaires imprégnées de laDéltaméthrine au niveau de la localité

FICHE D’ENQUETE N° : I_____I

A. Renseignements généraux

ßNom et Prénom du chef de famille :............................................................................................

ßNombre des membres du ménage : F : I___I M : I___I

ßProfession du chef de famille Agriculteur /............/ commerçant /.........../.

autre à préciser :..............................................

ßNombre des pièces d’habitation I___I

ßNombre de moustiquaires installées I___I

ßNiveau d’instruction des membres de la famille dont l’âge ≥ 6 ans

1. Analphabète I____I 2. Primaire I____I

3. Secondaire I____I 4. Universitaire I____I

ÿAspersions

La maison du malade est-elle traitée par pulvérisation ? Oui /__/ Non /__/

Si oui produit utilisé : …..................….....................................................................................................

Date de la dernière pulvérisation /__/ /__/ /_____/

La maison a-elle été peinte après la dernière pulvérisation Oui /__/ Non /__/.

ÿOrigine de l’infection

Autochtone /__/ Rechute /__/ Non classé /__/ Importé /__/

Si oui lieu d’importation .......................................................................................................................

ÿMesures entreprises et commentaires

……………………………………………………………………………………..………………………

ÿEvolution de la maladie

Guéri /__/ Rechute /__/ Transféré /__/ Décédé /__/

Enquête effectuée par : Nom de l’enquêteur : ………………….Fonction : ………………….......

Date de l’enquête : /__/ /__/ /_____/


....................130

B. Connaissances et comportement en matière de prévention et de lutte contreles moustiques avant l’introduction des moustiquaires

w Avez-vous bénéficié des séances d’éducation sanitaire dans le domaine de lalutte contre les phlébotomes ?

Oui o non o

w A votre avis quel est le lieu de développement des phlébotomes ?

1. Eaux (préciser) I____I 2. Arbres I____I

3. Déchets I____I 4. Autres à préciser :....................

w Moyens utilisés dans la protection et la lutte contre les phlébotomes ?

ß Grillages au niveau des fenêtres I____I

ß Rideaux au niveau des portes I____I

ß Bombes aérosols I____I

ß Insecticide pulvérisable I____I

ß Répulsifs (à préciser) I____I

ß Aucun moyen de lutte I____I

C. Habitudes et comportements après l’introduction des moustiquaires

v Les personnes qui ont l’habitude de se coucher à l’extérieur de la maison enpériode d’été :

v Pour les personnes qui ont pris l’habitude de se coucher à l’intérieur desmoustiquaires :

ÿ Ressentez-vous encore les nuisances causées par les phlébotomes ?

Oui /……/ Peu /……./ Non /……/

v Pour les personnes qui n’utilisent pas les moustiquaires, quelles sont les raisons?:

1. Les moustiquaires sont utiles mais insuffisantes : /……/

2. Les moustiquaires sont utiles uniquement pour les enfants : /....../

3. Les moustiquaires sont mal confectionnées : /…../

Préciser…………………………………………………………………………………………..………………….

……………………………………………………………………………………………………………..……………

Il fait très chaud à l’intérieur des moustiquaires : /…../

Les moustiquaires ne servent à rien : /…../


131....................

4. Autres raisons à préciser :………………………………………………………………………………………………………………..…......……

..........................................................................................................................................................................

..........................................................................................................................................................................

D. Observations et commentaires

…………………………………………………………………………………………...................………..................

..........................................................................................................................................................................

..........................................................................................................................................................................


....................132

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7-11- Evaluation de la surveillance des phlébotomes vecteurs


133....................

7-12- Evaluation de la surveillance mammalogique

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7-13- Evaluation de la lutte contre les phlébotomes vecteurs des leishmanioses


137....................

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7-14- Evaluation de l’introduction des moustiquaires


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7-15- Rapport sur l’aspertion des localités

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....................140

LISTE DES NUMÉROS DES FIGURES

Figure. 1 : Cycle évolutif de la Leishmaniose viscérale

Figure. 2 : Cycle évolutif de la leishmaniose cutanée à L. tropica MON102

Figure. 3 : Lésion unique de la leishmaniose cutanée à L. tropica

Figure. 4 : Lésion unique ulcérée de la leishmaniose cutanée à L. tropica

Figure. 5 : Cycle évolutif de la Leishmaniose cutanée à L. major

Figure. 6 : lésion ulcéro-végétante du visage

Figure. 7 : cicatrice de leishmaniose cutanée à L. Major

Figure. 8 : La leishmaniose cutanée à L. infantum

Figure. 9 : Technique du prélèvement cutané

Figures. 10. 11 : Technique d’injection péri-lésionnelle du glucantime

Figure. 12 : Mériones shawi grandis

Figure. 13 : Terrier actif du rongeur

Figure. 14 : Phlébotomes du Maroc: Profil des indices de fréquence corrigée

Figure. 15 : Forêt de Thuya

Figure. 16 : chien suspect de leishmaniose viscérale

Figure. 17 : Technique du prélèvement

Figure. 18 : Clé d’identification des rongeurs

Figure. 19 : Terriers du rongeur

Figure. 20 : Pose d’appâts au niveau des terriers

Figure. 21: photo d’un phlébotome adulte Imago

Figure. 22 : Cycle biologique du phlébotom

Figure 23 : Piège adhésif en place

Figure. 24 : Piège lumineux type CDC

Figure 25 : capturateur à bouche

Figure. 26: Techniques Aspersions Intra-domiciliaires

Figure. 27 : Technique d’imprégnation des moustiquaires

Figure. 28 : Lame riche en leishmanies après éclatement d’un macrophage

Figure. 29 : Modèle de mur d’entrainement


141....................

8 - BIBLIOGRAPHIE


....................142


143....................

ß Abrégés connaissances et pratiques : parasitoses et mycoses des régionstempérées et tropicalesEdition Masson 2007

ß A.AGOUMI – Précis de parasitologie médicale – Collection Medika 2003

ß Guessous Idrissi N, Ryad M, et Chiheb S : Les leishmanioses au Maroc:actualités épidémiologiques et diagnostiques. Bulletin S.M.S.M. 1996, VII (2),31-35.

ß Jacques EUZEBY – Protozoologie médicale comparée, Vol I : généralités-Sarcoma-stigophores-1986.

ß Marc Gentilini - Médecine tropicale, Flammarion - Sciences, 1993.

ß MSP – Bulletin épidémiologique – Supplément N° 7, Septembre 1992.

ß MSP – Lutte antipaludique – Guide des activités – édition 1995.

ß OMS – ABC des leishmanioses à l’usage des techniciens de la santé Publique,Edition 3.

ß OMS – control of leishmaniases, report of the WHO, expert committee on thecontrol of leishmaniases, Geneve, 22- 26 Mars 2010.

ß OMS – Directives applicables à la lutte contre les leishmaniose au niveaurégional et sous régional – programme des maladies parasitaires 1988–WHO/LEISH/88.25.

ß OMS – lutte contre les leishmanioses – rapport d’un comité OMS d’experts –Série de rapport techniques N° 793-Genéve 1990.

ß Y-J. GOLVAN – Eléments de parasitologie médicale – Flammarion, 4émeédition, 1983.


....................144


145....................


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