UNIVERSIDADE NOVE DE JULHO - bibliotecatede.uninove.br Lucia... · Rigoni, Vera Lucia Silva. Efeito...
65
UNIVERSIDADE NOVE DE JULHO - UNINOVE PROGRAMA DE PÓS GRADUAÇÃO STRICTU SENSU VERA LUCIA SILVA RIGONI EFEITO DO VENENO DO ESCORPIÃO Tityus serrulatus EM CÉLULAS EPITELIAIS BRÔNQUICAS HUMANAS (BEAS) E CÉLULAS ENDOTELIAIS (tEnd) SÃO PAULO 2013
Transcript of UNIVERSIDADE NOVE DE JULHO - bibliotecatede.uninove.br Lucia... · Rigoni, Vera Lucia Silva. Efeito...
UNIVERSIDADE NOVE DE JULHO - UNINOVE
PROGRAMA DE PÓS GRADUAÇÃO STRICTU SENSU
VERA LUCIA SILVA RIGONI
EFEITO DO VENENO DO ESCORPIÃO Tityus serrulatus EM CÉLULAS EPITELIAIS BRÔNQUICAS HUMANAS (BEAS) E
CÉLULAS ENDOTELIAIS (tEnd)
SÃO PAULO 2013
UNIVERSIDADE NOVE DE JULHO - UNINOVE
PROGRAMA DE PÓS GRADUAÇÃO STRICTU SENSU
VERA LUCIA SILVA RIGONI
EFEITO DO VENENO DO ESCORPIÃO Tityus serrulatus EM CÉLULAS EPITELIAIS BRÔNQUICAS HUMANAS (BEAS) E
CÉLULAS ENDOTELIAIS (tEnd)
Dissertação de mestrado apresentada
ao Programa de Pós-Graduação em
Medicina da Universidade Nove de
Julho, como requisito para obtenção
do título de Mestre em Medicina.
Orientador: Profª. Drª. Stella Regina
Zamuner
Co-orientador: Prof. Dr. Rodolfo de
Paula Vieira
SÃO PAULO 2013
Rigoni, Vera Lucia Silva.
Efeito do veneno do escorpião Tityus serrulatus em células epiteliais
brônquicas humanas (BEAS) e células endoteliais (tEnd)./ Vera Lucia
Silva Rigoni. 2013.
50 f.
Dissertação (mestrado) – Universidade Nove de Julho - UNINOVE,
São Paulo, 2013.
Orientador (a): Pra. Dra. Stella Regina Zamuner.
1. Inflamação. 2. Citocinas. 3. Veneno tityus serrulatus.
I. Zamuner, Stella Regina. II. Titulo
CDU 615.831
DEDICATÓRIA
Ao Criador pelo inestimável presente da vida, pela paz e serenidade para fazer
bom uso do meu livre arbítrio, buscando o meu e respeitando a individualidade de
cada um.
Aos meus queridos pais, Jair Araujo Rigoni e Gilda Silva Rigoni (in memorian), ao
meu irmão Marcelo Rigoni e minha cunhada Laís Silva, por me apoiarem e me
fazerem acreditar que sou capaz.
Aos meus queridos e amados filhos, Caroline Rigoni Jacomino e Luiz Felipe
Rigoni Jacomino, razão de toda minha existência, pela qual dedico esta obra.
Ao meu marido Luiz Américo Amadei Jacomino, pelo apoio e paciência na minha
ausência.
À minha orientadora Profª. Drª Stella Regina Zamuner, mestre e mentora, por todo
conhecimento compartilhado, pela paciência, confiança, apoio e amizade. Meu
exemplo de dedicação e sabedoria.
Ao meu querido Amigo (orientador), Prof. Dr. Joelmir Lucena Veiga da Silva, pela
força, participação, paciência, amizade, sugestões, sempre disponível a me
auxiliar:
”(...) Há orientadores que são gaiolas. Há orientadores que são asas.
Orientadores que são gaiolas existem para que os pássaros desaprendam a arte
do vôo. Passáros engaiolados são pássaros sob controle. Engaiolados, o seu
dono pode levá-los para onde quiser. Pássaros engaiolados sempre têm um dono.
Deixaram de ser pássaros. Porque a essência do pássaro é o vôo. Orientadores
que são asas não amam pássaros engaiolados. O que eles amam são os
pássaros em vôo. Existem para dar aos pássaros coragem para voar. Ensinar o
vôo eles não podem fazer, porque o võo já nasce dentro dos pássaros. O võo não
pode ser ensinado. Só pode ser encorajado. (...)”
Meus mais sinceros agradecimentos à vocês dois, Profª. Stella e Prof.
Joelmir, por sempre terem sido grandes asas, no meio de tantas gaiolas!!!
Adaptação do texto “Gaiola e Asas” de Rubens Alves, colunista da
Folha de São Paulo, publicado em 5 de dezembro de 2001, p A3.
AGRADECIMENTOS
Ao Prof. Dr. Humberto Dellê, pelas críticas construtivas e idéias brilhantes.
Ao Prof. Dr. Rodolfo de Paula Vieira, pela confiança, apoio e infinitas sugestões.
À Profª Ana Paula Ligeiro, pelo suporte nas dosagens de citocinas.
À Profª. Drª. Camila Daher, do laboratório de Neurobiologia da dor (USP) e seu
aluno de doutorado Adriano, pela colaboração e confiança.
À Profª. Silvia Zamuner pela participação e sugestões. À coordenadora da pós graduação da Universidade Nove de Julho (UNINOVE),
Profª. Drª Fernanda Consolim Colombo pela oportunidade e confiança.
À Profª. Drª. Viviane Louise Andree Nouailhetas, Departamento de Biofísica
(UNIFESP) pela convivência, compreensão e apoio.
À Drª. Telma Lisboa, grande Amiga, por me incentivar sempre nesta caminhada e
me fazer acreditar sempre.
À Silene Fernandes da Costa, Amiga e irmã do coração, por sempre me ouvir e
compartilhar dos momentos bons e ruins.
Aos grandes Amigos Cátia Rosa Trebacchetti, Heloisa Bolorino e Orion Santana,
pela inestimável amizade, atenção e apoio sempre.
Às alunas de iniciação científica da UNINOVE, Luciana Mioto e Aline pela grande
participação e ajuda.
Aos colegas da pós graduação, Ana Teresa Barufi Franco, Nikele Andrade, Camila
Alves, Adriano Santos, Marcelo de Paula Silva, pela união, colaboração e
convivência.
Às queridas técnicas de laboratório de pesquisa da Universidade Nove de Julho
(UNINOVE), Luciana Teixeira e Angela Santos, pelas horas que passamos juntas,
por serem super prestativas e preocupadas no desenvolvimento da pesquisa e de
todo trabalho de bancada.
Aos colegas do laboratório de eletrofisiologia do departamento de Biofísica da
Universidade Federal de São Paulo, Thalyta Munhoz, Gabriel Andrade Alves,
Amanda Araújo, Marcus Buri pela ajuda e apoio.
À mestre e Amiga do laboratório de Biofísica (UNIFESP) Alessandra Campos pela
convivência, apoio e amizade.
À secretaria da pós graduação UNINOVE, Denise Freitas pela sua amizade,
carinho e paciência para a realização deste trabalho.
À todos que direta ou indiretamente foram responsáveis pela conclusão desta
tese.
ÍNDICE
RESUMO ............................................................................................................. i ABSTRACT ......................................................................................................... iii Lista de Figuras ................................................................................................. v 1.Introdução ....................................................................................................... 1 1.1 Epidemiologia .............................................................................................. 1
1.2 Escorpião Tityus serrulatus .................................................................. 3 1.3 Quadro Clínico do escorpionismo e tratamento ................................ 5
1.4Comprometimento Respiratório em Resposta ao veneno escorpião Tityus serrulatus
10
1.5 Células epiteliais brônquicas humanas (BEAS) .................................. 11 1.6 Considerações gerais sobre o endotélio ............................................. 12
2. Justificativa .................................................................................................... 14 3. Objetivos ........................................................................................................ 15
3.1 Geral ......................................................................................................... 15 3.2 Específicos .............................................................................................. 15
4. Material e métodos ........................................................................................ 16 4.1 Drogas e reagentes ................................................................................ 16
4.1.1 Células endoteliais de camundongos ........................................ 17 4.1.2 Células epiteliais brônquicas humanas ..................................... 17 4.1.3 Veneno do escorpião Tityus serrulatus ..................................... 17
4.2 Preparação dos meios de cultura celular ............................................ 18 4.2.1 Meio DMEN .................................................................................... 18 4.2.2 Meio BEBM .................................................................................... 18
4.3 Cultura de células ................................................................................... 18 4.3.1Células endoteliais de camundongo (tEnd) ................................ 19 4.3.2 Células epiteliais brônquicas humanas(BEAS) ......................... 19
4.4 Preparação de monocamadas ............................................................... 19 4.5 Avaliação de Viabilidade Celular (MTT) ................................................ 20 4.6 Dosagem de LDH .................................................................................... 21 4.7 Citologia BEAS e tEnd............................................................................ 21 4.8 Dosagem de citocinas ............................................................................ 22 4.9 Análise estatística .................................................................................. 23
5. Resultados ..................................................................................................... 24 5.1 Análise da viabilidade celular (MTT) .................................................... 24
5.1.1 BEAS ............................................................................................. 25 5.1.2 tEnd ............................................................................................... 26
5.2 Lactato desidrogenase (LDH) ................................................................ 27 5.2.1 BEAS ............................................................................................. 27 5.2.2 tEnd ............................................................................................... 28
5.3 Citologia BEAS ....................................................................................... 5.3.1 ....................................................................................................... 5.3.2 tEnd................................................................................................
29 29 30
5.4 Interleucinas BEAS ................................................................................. 31 5.4.1 IL-1β ............................................................................................. 31 5.4.2 IL-6 ............................................................................................... 32 5.4.3 IL-8 ............................................................................................... 33
6.Discussão ........................................................................................................ 34 7.Conclusão ....................................................................................................... 40 8. Referências bibliográficas ............................................................................ 41
RESUMO
O escorpionismo é considerado um problema mundial de saúde pública,
sendo a espécie Tityus serrulatus a principal causadora de acidentes graves no
Brasil. Os sintomas do envenenamento pelo escorpião Tityus serrulatus vão desde
dor local até reações sistêmicas severas, como disfunção cardíaca e edema
pulmonar agudo, sendo este a principal causa de morte. A quantidade de veneno
inoculado, idade, condições físicas e fatores genéticos das vítimas relacionam-se
com a gravidade dos sintomas apresentados pelos pacientes. As células
endoteliais, em condições fisiológicas, desempenham papel protetor do sistema
cardiovascular. Em caso de disfunção ou lesão desse tecido há repercussão sobre
a estrutura vascular, tecido adjacente e, por fim sobre o sistema cardiovascular.
Já, nas células epiteliais brônquicas após injúria, ocorre mecanismo de reparo
mediado por citocinas e fatores de crescimento, ocorrendo também proliferação e
diferenciação celular após o dano epitelial. Assim, o presente estudo tem como
objetivo avaliar o efeito modulador do veneno do escorpião Tityus serrulatus em
células endoteliais e células epiteliais brônquicas, analisando a viabilidade destas
células e o mecanismo de inflamação pela qual são acometidas. Para tanto, as
células em estudo foram cultivadas e incubadas em placas de cultura com o
veneno do escorpião Tityus serrulatus, em diferentes concentrações e em
diferentes períodos de tempo. O mecanismo inflamatório foi avaliado através da
dosagem de citocinas no sobrenadante destas células. Os resultados
demonstraram que o veneno de Tityus serrulatus alterou a viabilidade de
i
monocamadas das células epiteliais brônquicas e células endoteliais, sendo que
esse efeito foi mais evidente nas células epiteliais brônquicas. Ainda, os
resultados demonstraram que o veneno induz a liberação das citocinas IL-1, IL-6
e IL-8.
Estes estudos ampliam o conhecimento das ações do veneno do escorpião
Tityus serrulatus nas células endoteliais (tEnd) e epiteliais brônquicas (BEAS),
comprovando assim alterações na fisiologia pulmonar que poderão contribuir para
uma melhor estratégia de tratamento do envenenamento escorpiônico.
Palavras chave: células epiteliais brônquicas, veneno Tityus serrulatus, escorpião,
citocinas, inflamação, células endoteliais.
ii
ABSTRACT
The scorpionism is considered a public health worldwide, with Tityus serrulatus
the main cause of accidents in Brazil. Symptoms of envenomation by Tityus
serrulatus ranging from local pain to severe systemic reactions such as cardiac
dysfunction and pulmonary edema, which is the leading cause of death. The
amount of venom injected the age, physical and genetic factors of the victims are
related to the severity of the symptoms presented by patients. Endothelial cells
under physiological conditions play a protective role in the cardiovascular system.
In the case of dysfunction or injury of that tissue occurs repercussion in the
vascular structure, surrounding tissue, and finally on the cardiovascular system. In
bronchial epithelial cells after injury, occurs repair mechanism mediated by
cytokines and growth factors also occur increase in cell proliferation and
differentiation after epithelial damage. Thus, this study aims to evaluate the
modulating effect of Tityus serrulatus scorpion venom on endothelial cells and
bronchial epithelial cells analyzing the viability of these cells and the mechanism by
which inflammation occurs. Therefore, the cells in this study are cultured and
incubated in culture plates with Tityus serrulatus scorpion venom in different
concentrations and periods of time. The inflammatory mechanism was assessed
through the measurement of cytokines in the supernatant of these cells. The
results showed that Tityus serrulatus venom changed the viability of monolayers of
endothelial cells (tEnd), and bronchial epithelial cells (BEAS), and this effect was
more marked in bronchial epithelial cells. The results also demonstrate that the
venom induces the release of cytokines IL-1, IL-6 and IL-8.
iii
This study extend the knowledge of the actions of the venom of the scorpion
Tityus serrulatus on bronchial epithelial and endothelial cells thus demonstrating
changes in pulmonary physiology that may contribute to a better treatment strategy
of scorpion envenomation.
Key Words: bronchial epithelial cells, Tityus serrulatus venom, scorpion, cytokines,
inflammation, endothelial cells.
iv
LISTA DE FIGURAS
Fig.1 Notificações de acidentes por animais peçonhentos no Brasil 1 Fig.2 Distribuição geográfica dos escorpiões da espécie TsV no Brasil 3 Fig.3 Escorpião Tityus serrulatus 4 Fig.4 Efeito do TsV (0,5 - 10µg/mL) na viabilidade (MTT) de BEAS 24 Fig.5 Efeito do TsV (10 - 50µg/mL) na viabilidade (MTT) de BEAS 25 Fig.6 Efeito do TsV na viabilidade de tEnd 26 Fig.7 Efeito do TsV na liberação de LDH nas BEAS 27
Fig.8 Efeito do TsV na liberação de LDH nas tEnd 28 Fig.9 Aspecto citológico das células BEAS 29 Fig.10 Liberação de IL-1β induzida pelo TsV em BEAS 30 Fig.11 Liberação de IL-6 induzida pelo TsV em BEAS 31 Fig.12 Liberação de IL-8 induzida pelo TsV em BEAS 32
v
1
1. INTRODUÇÃO
1.1 Epidemiologia
O escorpionismo representa um problema mundial de saúde pública, sendo
que aproximadamente 1,2 milhões de acidentes ocorrem anualmente, com mais
de 3.250 óbitos/ano (Chippaux et al., 2008). No Brasil, dentre os acidentes
causados por animais peçonhentos, o escorpionismo é o que vem crescendo ao
longo dos anos, segundo dados do Sistema de Informações de Agravos de
Notificações, do Ministério da Saúde (Fig. 1).
Figura 1: Notificações de acidentes por animais peçonhentos no Brasil.
2
Em 2012, foram notificados 65.008 casos novos de acidentes por escorpiões
no Brasil, ou seja 45% do total de acidentes por animais peçonhentos (SINAN,
2012).
Os escorpiões são classificados como animais peçonhentos, sendo
capazes de gerar diferentes tipos de reações nos animais no qual injetam seu
veneno, geralmente acompanhado de muita dor. Os escorpiões têm hábitos
noturnos. Encontram-se em pilhas de madeiras, cercas, sob pedras, cupinzeiros,
muros cobertos por plantas onde podem ficar escondidos de 2 até 3 meses
(Santos, 1999).
Os escorpiões não são agressivos para o homem e somente picam quando
tocados ou se sentem ameaçados. São praticamente cegos e sentem suas presas
através de vibrações do solo e apenas a curtas distâncias. Em sua defesa ou para
se alimentarem, agarram a vítima com suas pinças, e num movimento de trás para
frente, cravam a cauda em seus corpos. É no último segmento da cauda, o télson,
que se localizam as glândulas de veneno (Cupo et al., 1999).
Existem grandes variações dos venenos das diferentes espécies de
escorpião. No entanto, pode-se observar uma sintomatologia muito parecida nas
vítimas que tem sido picadas. O efeito tóxico do veneno de escorpião decorre de
alguns fatores como: a espécie do escorpião, a capacidade e o estado fisiológico
das glândulas de veneno, a dose inoculada, o peso, a idade e o estado de saúde
da vítima, sua sensibilidade específica e o local da picada (Santos, 1999).
Nos países tropicais, o envenenamento humano por escorpiões é frequente
e acidentes fatais são comumente relatados, especialmente em crianças (Freira-
Maia et al., 1994). No Brasil, três espécies de escorpiões do gênero Tityus têm
3
sido responsabilizados por acidentes humanos graves, inclusive casos fatais:
Tityus serrulatus (escorpião amarelo), Tityus Bahienses (escorpião marrom) e
Tityus stigmurus. O escorpião Tityus serrulatus é a mais importante espécie, que
causa maior número de acidentes, e induz às mais severas formas de
envenenamento.
Escorpião Tityus serrulatus
No Brasil, o escorpião Tityus serrulatus, que será nossa base de estudo, é
encontrado em grande parte de território brasileiro, sendo a espécie mais
causadora de acidentes, principalmente na região sudeste (Fig 2).
Figura 2: Distribuição geográfica dos escorpiões da espécie Tityus serrulatus no
Brasil.
4
O escorpião Tityus serrulatus (Fig. 3) possui alta plasticidade ecológica,
podendo ser encontrado em florestas tropicais, pradarias, savanas, florestas
temperadas, cavernas e montanhas (revisado por Cologna et al., 2009). Essa
espécie é oportunista, pois, se adapta muito bem em ambientes modificados pela
ação do homem, com falta de saneamento básico e problemas de coleta de lixo,
onde se acumulam baratas e outros insetos, que servem de alimento aos
escorpiões (Lourenço; Von Eickstedt, 2009).
As fêmeas do escorpião Tityus serrulatus são capazes de se auto-
reproduzirem por partenogênese, forma de reprodução assexuada, a qual ocorre
sem a necessidade da fecundação do gameta masculino (Cologna et al., 2009).
Figura 3: Escorpião da espécie Tityus serrulatus.
5
Os venenos de escorpiões consistem de uma mistura de compostos
farmacologicamente ativos, principalmente proteínas e peptídeos. Tais proteínas
são geralmente de baixo peso molecular e com ponto isoelétrico variando entre
8,0 e 9,0 (Miranda et al.,1964). A tityotoxina (TsTX) é um dos componentes mais
tóxicos do veneno.
O veneno do escorpião Tityus serrulatus (TsV) não é miotóxico, mas
apresenta propriedades biológicas, composição química, toxicidade, ação
biológica, características farmacocinéticas e farmacodinâmicas muito variáveis
(Petricevich et al., 2007).
Grande parte das toxinas isoladas de venenos de escorpiões atuam sobre
canais iônicos, como os de sódio (Na+), potássio (K+), cálcio (Ca2+) e cloreto (Cl-)
que estão presentes em diferentes tipos celulares como neurônios, células
musculares e células do sistema imune, sendo essenciais para a manutenção do
equilíbrio eletrolítico do organismo (Catterall et al., 2007).
1.2 Quadro Clínico do escorpionismo e Tratamento
Os envenenamentos por escorpiões progridem com sintomas de dor local a
reações sistêmicas severas levando à morte quando não são devidamente
tratadas (Cupo et al.,1994).
Os sintomas se iniciam dentro de poucos minutos após a picada e
normalmente progridem até a máxima severidade dentro de aproximadamente
cinco horas (Mebs, 2002).
6
Os sintomas pós picada do escorpião Tityus serrulatus com atividade sobre
o sistema nervoso autônomo é responsável pelo quadro sistêmico, observado
principalmente em crianças, nas quais ocorre após intervalo de minutos até
poucas horas (2 a 3 horas) podendo surgir diversas manifestações sistêmicas tais
como hipertensão arterial, taquipnéia e hiperpnéia, taquicardia e bradicardia,
sudorese profunda, vômitos profusos, salivação excessiva, alternância entre
agitação e exaustão, convulsões, podendo evoluir para choque cardíaco e edema
agudo de pulmão, podendo também induzir uma resposta inflamatória sistêmica
ocasionando a liberação de mediadores inflamatórios tanto em pacientes (Abdel-
Hallem, 2006;D Suze et al., 2003; Fukuhara et al., 2003; Magalhães et al., 1999),
quanto em modelos experimentais (De Matos et al., 1997; Pessini et al.,2003
Petricevich; Penã, 2002).
O tratamento pelo CIT/RS (Centro de Informação Toxicológica do Rio
Grande do Sul), e o Ministério da Saúde, recomendam manutenção de sinais vitais
e tratamento específico com soro anti-escorpiônico ou anti-aracnídico (Cologna et
al., 2009).
O objetivo do soro é neutralizar a ação do veneno na circulação. Dessa
forma, o tempo entre o acidente e a utilização do soro é importante. A dor local e
os vômitos melhoram rapidamente após o uso do soro. Já a sintomatologia
cardiovascular regride mais tardiamente. Casos leves não tem indicação de soro;
em casos moderados devem ser usadas duas a três ampolas do soro por via
endovenosa (EV); enquanto que casos graves possuem indicação de 4 a 6
ampolas do soro, EV. Deve se atentar para as reações ao soro, que ocorrem em
7
torno de 7,5% dos acidentes que necessitam de soroterapia, com predomínio de
lesões cutâneas (Cologna et al.,2009, Cupo et al.,1994).
O prognóstico geralmente é bom, principalmente para acidentes leves a
moderados. Nos casos graves, as primeiras 48 horas são as que merecem maior
atenção, pois é neste período que podem surgir complicações cardiovasculares e
pulmonares (Petricevich et al., 2007).
O TsV é capaz de exercer uma variedade de efeitos nos tecidos excitáveis,
com ação no sistema nervoso periférico aumentando a liberação de
neurotransmissores. Vítimas de envenenamento pelo escorpião Tityus serrulatus
podem apresentar várias patologias envolvendo principalmente estimulação do
sistema nervoso simpático como taquicardia, hipertensão arterial, sudorese e
midríase e estimulação do sistema nervoso parassimpático como bradicardia,
hipotensão, secreções e mioses. No sistema nervoso central, as manifestações
que podem ocorrer, pela ação do TsV são: irritabilidade, hipertermia, vômitos,
tremores e convulsão (Petricevich, et al.,2007). Ainda, após o envenenamento
pelo escorpião Tityus serrulatus, podem ocorrer reações sistêmicas severas, como
disfunção cardíaca, edema pulmonar agudo e hemorragia alveolar (Petricevich et
al,2007). Ademais, dados obtidos tem mostrado disfunção ventricular esquerda em
pacientes com edema pulmonar agudo após envenenamento pelo escorpião
Tityus serrulatus (Gueron et al.,1996).
A disfunção cardíaca tem sido tradicionalmente atribuída ao aumento
abrupto da sobrecarga ventricular esquerda, secundária à liberação maciça de
catecolaminas pelo TsV (Freire-Maia et al., 1978; Freire-Maia and Campos, 1989).
8
O edema pulmonar é a principal causa de morte por envenenamento
causado pelo Tityus serrulatus, especialmente em crianças. São sugeridos dois
mecanismos responsáveis pela indução do edema pulmonar sendo um deles de
origem cardiogênica, pelo qual ocorre disfunção cardíaca ventricular esquerda e o
de origem não cardiogênica, pela possível liberação de mediadores inflamatórios
por meio da ativação da resposta inflamatória e subsequente aumento da
permeabilidade vascular (Benvenuti et al.,2002).Os mediadores inflamatórios de
origem não cardiogênica envolvidos no envenenamento pelo TsV incluem as
cininas, os fatores de ativação plaquetária (PAF) e as citocinas inflamatórias
(Freire et al, 1993).
Algumas alterações bioquímicas também são observadas, tanto em
pacientes quanto em modelos experimentais, como a liberação massiva de
angiotensina-II, aumento de marcadores de função hepática, como aspartato
aminotransferase, alanina aminotransferase e gama- glutamil transferase. Ocorre
também hiperamilasemia, leucocitose, policitemia, hiperglicemia, que é causada
pelo aumento da secreção de cortisol e diminuição dos níveis de insulina.
Também foi observado em pacientes, alterações nos níveis plasmáticos de cininas
(bradicinina e calicreína), sugerindo que tais componentes podem estar envolvidos
na patogênese do envenenamento humano (Corrêa et al.,1997; D’Suze et al.,
2003; Fukuhara et al., 2003; revisado por Petricevich, 2010; Ribeiro et al., 2010).
Além dos sintomas clínicos e alterações bioquímicas os pacientes
severamente envenenados por escorpiões apresentam um aumento significativo
nos níveis plasmáticos de mediadores inflamatórios como IL-1α, IL-1β, IL-6, IL-8,
IL-10, IFN-γ, TNF-α e óxido nítrico, pouco tempo após o envenenamento, a
9
presença desses mediadores no soro podem estar diretamente relacionada com
as manifestações fisiopatológicas (Abdel-Hallem et al., 2006).
Para o tratamento de acidentes moderados e graves causados pelo
escorpião Tityus serrulatus é feita a administração endovenosa dos soros anti-
escorpiônico ou polivalente anti-aracnídico, sendo iniciado o mais cedo possível
para que se torne eficaz, já que as toxinas do veneno são rapidamente difundidas
do local da picada para os órgãos alvos (FUNASA, 2001; Rezende,1995).
Após inoculação pelo TsV, foram observadas alterações pulmonares, como
presença de edema e hemorragia alveolar, bem como aumento de neutrófilos e
macrófagos, liberação de citocinas e quimiocininas (Petricevich et al., 2007).
Ainda, níveis alterados de citocinas pró-inflamatórias (IL-1β, IL-6, IL-8 e TNF-α) e
anti-inflamatórias (IL-10) podem ser detectadas em indivíduos picados pelo
escorpião Tityus serrulatus (Fukuhara et al., 2004).
Citocinas são mediadores inflamatórios produzidas por células imunes e
não imunes, quando ocorre processos inflamatórios e mediadas em todas as fases
dos processos inflamatórios. As citocinas pró inflamatórias tem como função
aumentar a resposta inflamatória, enquanto que as citocinas anti-inflamatórias
atenuam esta reposta.
As IL-1β, IL-6 e TNF-α são consideradas citocinas pró inflamatórias
(Simons and Hoyt, 1994), e altas concentrações de IL-1 e TNF-α podem estar
associadas com a síndrome da resposta inflamatória sistêmica (SIRS), choque
séptico e morte (Amaral et al., 1997). Por outro lado, IL-10 inibe a liberação de
citocinas pró-inflamatórias e a expressão de enzimas envolvidas em processos
10
inflamatórios como Cox 2 (ciclooxigenase 2) e óxido nítrico sintase (Amaral et al.,
1997).
As citocinas são liberadas por macrófagos em resposta inflamatória ao
envenenamento (Petricevich, 2004). Autores como Sofer et al. (1996); Barbouche
et al. (1996), Barraviera (1997), Meki: Mohey-el-Dean (1998) e Magalhães et al.
(1999) demonstraram um aumento de interleucinas (IL-6, IL-1α e IL-1β), óxido
nítrico(NO), interferon gama (IFN-γ) e fator estimulante de colônias monocíticas
granulocíticas (GM-CSF) após a picada de escorpiões do gênero Leiurus,
Buthotus e Tityus no sangue de pacientes. Estas citocinas podem contribuir para o
choque e disfunção cardíaca e pulmonar (Petricevich, 2004, Petricevich et al.,
2007). A resposta inflamatória sistêmica com subsequente liberação de citocinas
(Chaudry et al., 1989) pode mobilizar leucócitos e causar a liberação de fatores de
ativação de plaquetas (PAF), leucotrienos e prostaglandinas (Magalhães et al.,
1989; De Matos et al., 2001; Sofer et al., 1996; Meki; Monhey El-Dean, 1998;
Petricevich; D’Suze et al., 2003; Fukuhara et al., 2003; Andrade et al., 2007).
1.3 Comprometimento Respiratório em Resposta ao veneno de escorpião
Tityus serrulatus
Segundo Ismael (1995), estudo clínicos das vítimas por escorpiões
descrevem diferentes tipos de movimentos respiratórios anormais, tais como
taquipnéia, respiração anormal ofegante e falência respiratória. O edema
pulmonar é um achado frequente e muitas vezes fatal e implica no surgimento de
um padrão ventilatório intenso a ponto de produzir insuficiência respiratória aguda.
11
A manifestação mais séria e fatal encontrada nos casos de intoxicação
produzida pelo TsV é o edema pulmonar. Os casos de edema pulmonar de origem
não cardiogênica estariam relacionados com o aumento da permeabilidade
vascular que acompanha a ativação da cascata inflamatória (Amaral e Resende,
1997).
A literatura mostra que o edema pulmonar é secundário a ativação de um
processo inflamatório, o qual envolve liberação do fator de ativação plaquetária de
leucotrienos e prostaglandinas, consequentemente resultando num aumento da
permeabilidade vascular pulmonar (De-Matos et al., 1997). Ainda, foi
recentemente mostrado que o edema pulmonar causado pelo TsV não é devido
ativação de mastócitos no pulmão (Zuliani et al., 2013). E também o TsV diminui o
“clearance” (depuração) do líquido pulmonar de ratos, por uma diminuição da
quantidade da bomba Na+/K+-ATPase no epitélio alveolar (Comellas et al., 2003).
1.4 Células epiteliais brônquicas
As células epiteliais brônquicas humanas (BEAS) são células do trato
respiratório humano, sendo consideradas células de defesa contra vários
patógenos aéreos (Kim et al., 2013), podendo produzir citocinas e quimiocininas,
aumentando a inflamação local e a resposta imune. Após injúria, células epiteliais
brônquicas humanas migram, ocorrendo um mecanismo de reparo precoce, sendo
mediado por citocinas e fatores de crescimento (Kim et al., 2013), ocorrendo
também proliferação e diferenciação celular após o dano epitelial.
12
Estudos in vitro sobre a ação do TsV em células epiteliais brônquicas
humanas (BEAS) poderão contribuir significativamente no entendimento sobre o
mecanismo inflamatório local, contribuindo assim para inovações terapêuticas e
farmacológicas futuras.
1.5 Considerações gerais sobre o endotélio
O endotélio vascular é constituído por uma camada continua de células
endoteliais que revestem o lúmem dos vasos e separam o sangue dos tecidos. A
sua integridade funcional e estrutural é fundamental para a manutenção da
homeostasia e da função circulatória (Moncada et al.,1988).
As células endoteliais de um modo geral são alongadas, poligonais e
dotadas de ampla superfície. A parte luminal está continuamente exposta às
células circulantes e aos componentes plasmáticos. A porção oposta, abluminal,
está em contato com a matriz extracelular e tecidos adjacentes, que por meio de
integrinas, liga-se a lâmina basal. Esta é constituída por vários tipos de colágenos
(tipo IV, V e VII), laminina, sulfato de heparan e de condroitina, proteoglicianos,
entactina, nidogênio e sialoglicoproteínas, associados à fribonectina (Ondetti MA &
Cushman DW, 1982).
O endotélio, além da sua função como membrana semipermeável, é
considerado um tecido metabolicamente ativo. Por sua capacidade de sintetizar e
secretar inúmeras substâncias que exercem várias funções fisiológicas: a) no
metabolismo de substâncias vasoativas, por conter enzimas que transformam a
angiotensina I em angiotensina II e inativam a noradrenalina, serotonina e
13
bradicinina; b) na hemostasia, por meio da produção de substâncias coagulantes
(fator de Von Willebrand; c) inibidor de antígenos dos grupos A e B, fibronectina,
colágenos; d) na modulação do tônus vascular, por sua capacidade de produzir e
liberar fatores relaxantes da musculatura lisa dos vasos, como o óxido nítrico
(Vane et al., 1987).
Por outro lado as células endoteliais sofrem alterações de estrutura, função
e propriedades metabólicas, em resposta a fatores de crescimento, substâncias
vasoativas e citocinas, que variam de acordo com o tecido em que se localizam
(Thuillez et al.,2005). Desse modo, o endotélio ativado afeta o crescimento de
músculo liso, por sua capacidade de gerar diversos fatores de crescimento que
induzem espessamento da parede dos vasos e favorecem o desenvolvimento de
doenças cardiovasculares (Carvalho et al.,1996).
Em síntese, o endotélio, em condições fisiológicas, desempenham papel
protetor do sistema cardiovascular, liberando substâncias que modulam a
contração do músculo liso vascular, a sua proliferação, a adesão e a agregação
plaquetária e controlam a hemostasia. Portanto, em condições de disfunção ou
lesão desse tecido, há repercussão sobre a estrutura vascular, tecido adjacente e,
por fim, sobre o sistema cardiovascular.
14
2. JUSTIFICATIVA DO ESTUDO
A literatura mostra que o envenenamento causado pelo escorpião Tityus
serrulatus apresenta ação neurotóxica, citotóxica e não miotóxica, podendo causar
alterações na mecânica pulmonar, bem como liberação de mediadores
inflamatórios no sangue de pacientes picados por esse escorpião. Estudos em
humanos mostram como principal causa mortis, edema agudo de pulmão e a
participação das células pulmonares. O endotélio vascular é formado por células
que desempenham várias funções fisiológicas, tanto no metabolismo como na
homeostasia, mas em casos de disfunção pode haver repercussão neste tecido e
sobre o sistema cardiovascular. Desse modo, o conhecimento das ações in vitro
do TsV em células endoteliais (tEnd) e células epiteliais brônquicas (BEAS)
poderão contribuir para um melhor entendimento no processo fisiopatológico e
para uma melhor estratégia de tratamento do envenenamento escorpiônico.
15
3. OBJETIVOS 3.1 Geral
Analisar o efeito in vitro do TsV em BEAS e tEnd.
3.2 Específicos
Através de ensaios in vitro, avaliar o efeito modulador do TsV em cultura de
células BEAS e tEnd no que se refere a:
- Viabilidade das células pela dosagem de MTT e LDH. - Liberação de citocinas pró inflamatórias IL-1β, IL-6 e IL-8.
16
4. MATERIAL E MÉTODOS
Este projeto foi desenvolvido no laboratório de pesquisa em biologia celular e
molecular do curso de Mestrado e Doutorado em Medicina da Universidade Nove
de Julho (UNINOVE) em parceria com o Departamento de Biofísica da
Universidade Federal de São Paulo (UNIFESP). Foram realizados os ensaios de
viabilidade celular pelo método MTT nas BEAS e tEnd, dosagem da enzima
lactato desidrogenase no sobrenadante das mesmas incubadas com TsV em
diferentes concentrações e em diferentes períodos de tempo. Foram realizados
também dosagens das interleucinas IL1β, IL6 e IL8 no sobrenadante das BEAS
incubadas com TsV em diferentes concentrações e em diferentes períodos de
tempo.
4.1 Drogas e Reagentes
Avidina fosfatase alcalina (Sigma)
Bicarbonato de sódio (Merck)
Cloreto de sódio (Merck)
Cromógeno α nitrofenil fosfato (Sigma)
Estreptomicina (Sigma)
Glicose (Merck)
Hepes (Sigma)
Meio BEBM (Bronchial Epithelial Cell Basal Medium, marca Lonza)
Meio DMEN (Dulbeccos Modified Eagle Medium, marca Cultilab)
17
Sal MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5,-diphenyltetrazolium bromide) (Sigma)
NADH (Sigma)
PBS gelatina (Sigma)
PBS tween (Sigma)
Penicilina (Sigma)
Piruvato (Sigma)
Soro fetal bovino (Cultilab)
Tampão fosfato salina (Merck)
Tris HCl (Merck)
4.1.1 Células endoteliais de camundongos (tEnd):
Foram utilizadas células endoteliais murinas (hibridomas) da linhagem
tEnd (thimic endothelium), gentilmente cedidas pelo Dr. Bruno Lomonte, do
Instituto Clodomiro Picado, da Universidade da Costa Rica, Costa Rica.
4.1.2 las epiteliais brônquicas humanas (BEAS-2b):
Cedida pelo Prof. Dr. Roger Chammas, do Laboratório de Oncologia
Experimental, LIM 24 da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo.
4.1.3 neno do escorpião Tityus serrulatus (TsV):
Gentilmente cedido pelo prof. Dr. Fabio Kwasniewski da Universidade Estadual
de Londrina, Paraná.
18
4.2 Preparações dos meios de cultura
4.2.1 MEN (Cultilab)
O meio de cultura Dulbeccos Modified Eagle (DMEN) utilizado nas tEnd, foi
dissolvido em aproximadamente 950 ml de água Milli-Q, sendo adicionados 25
mM de bicarbonato de sódio, 11 mM de HEPES e 11 mM de glicose, sob agitação
magnética. O PH foi acertado em 7,4 em pHmetro. Após completar o volume para
um litro, a solução foi filtrada em filtros com poros de 0,22 micrômetros de
diâmetro no fluxo laminar, aliquotada e colocada em estufa a 37°C por 48 horas
para o teste de esterilidade. Posteriormente, o meio DMEN foi armazenado a 4° C
até o momento do uso, quando foram suplementados com 100 U/mL de penicilina
e 100 µg/mL de estreptomicina. Também foi adicionado SFB a 10% segundo o
experimento a ser realizado.
4.2.2 cultura BEBM (Lonza)
O meio de cultura BEBM (Lonza) utilizado para BEAS, já vem pronto para
uso. Apenas suplementamos com soro fetal bovino (SFB) a 10% e adicionamos
100 U/mL de penicilina e 100 µg/mL de estreptomicina.
4.3 Culturas de células
As culturas de células BEAS e tEnd foram cultivadas e mantidas no
laboratório de cultivo celular do Departamento de Biofísica da Universidade
Federal de São Paulo (UNIFESP).
19
4.3.1 las endoteliais de camundongo (tEnd)
Após o descongelamento das tEnd, estas foram colocadas em um tubo
cônico estéril e centrifugadas a 1.111 xg por 05 minutos, desprezando o
sobrenadante e ressuspendendo o pellet formado em meio DMEN, suplementado
com SFB 10% e penicilina e streptomicina 1%, e colocadas em garrafa de cultura
estéril média (75 cm3) e mantidas em estufa com 5% CO2 a 37°C até
apresentarem uma boa subconfluência. Para expansão e repique das células tEnd, realizou se a tripsinização e posteriormente expansão para novas garrafas
de cultura a cada 2 ou 3 dias.
4.3.2 las epiteliais brônquicas humanas (BEAS)
Para as BEAS foram realizados procedimentos similares de cultivo celular
aos das tEnd, exceto o meio de cultura utilizado para as BEAS foi meio BEBM
(Lonza), suplementado com SFB 10% e penicilina e streptomicina 0,01%. Para
expansão das células epiteliais brônquicas realizamos a observação destas a
longo prazo, de 30 a 60 dias, devido a demora quanto a aderência destas células.
Após aderência e com uma boa subconfluência, realizamos expansão e repique
destas células.
4.4 Preparação de monocamadas de células endoteliais e epiteliais
brônquicas humanas para ensaios com o veneno de Tityus serrulatus:
A partir das culturas celulares obtidas, foram feitas as diluições necessárias
para a semeadura das células em placas estéreis de 96 poços e colocadas em
20
estufa com 5% de CO2 a 37°C por 48 horas. Após a confluência, o meio específico
para cada tipo celular (tEnd e BEAS) foi retirado e as células foram incubadas com
TsV, diluídos nos meios específicos sem suplementação nas concentrações de 10
e 50 µg/mL após 01 hora, 03 horas, 06 horas e 24 horas de incubação.
4.5 Avaliação da Viabilidade Celular: Análise da Atividade
Mitocondrial Qualitativa: ensaio de MTT.
A função mitocondrial das células BEAS e tEnd foi avaliada usando o
ensaio MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5,-diphenyltetrazolium bromide)
(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA).
É uma forma de medida da atividade da desidrogenase mitocondrial. Este
é um sal tetrazólico que possui cor amarela e após ser metabolizado por
desidrogenases presentes nas mitocôndrias de células vivas, origina um sal que
cristaliza, os cristais de formazan e cuja concentração pode ser expressa pelo
aparelho de Enzyme linked Immunosorbent Assay (ELISA) (Siewerts et al., 1995).
As células foram plaqueadas (106 células/por poço) em placas de 96 poços e após aderência (24 a 48 horas), estas foram carenciadas de Soro Fetal
Bovino (SFB) para sincronização do ciclo celular por 24 horas. Os poços foram
lavados com PBS e então acrescentados 50 µL de MTT, sendo incubadas na
estufa de CO2 por 02 a 03 horas para que ocorra o metabolismo do sal tetrazólico.
Em seguida foram acrescentados 50µL de isopropanol por poço e feito a quebra
dos cristais de formazan, mecanicamente com auxílio de uma ponteira. A leitura
da absorbância nos poços foi realizada em 660 nm no leitor de ELISA.
21
4.6 Avaliação da Viabilidade Celular: Dosagem da Enzima
Desidrogenase Láctica (LDH):
A desidrogenase láctica (LDH) é uma enzima intracelular responsável pela
oxidação reversa do lactato em piruvato, catalisa a conversão reversível de ácido
láctico muscular em ácido pirúvico, um passo essencial nos processos
metabólicos que, em última análise, produzem energia celular. É amplamente
distribuída em todas as células do organismo, concentrando se mais
especialmente no miocárdio, rim, fígado, hemáceas e músculos.
A atividade enzimática da LDH, presente no sobrenadante das culturas
celulares em estudo, foi tomada como parâmetro da viabilidade celular. Após cada
período de incubação, o sobrenadante foi retirado e centrifugado a 1.111 xg (2000
rpm) por 6 minutos. A seguir, 20 µL do sobrenadante foi adicionado a outras
placas de cultura de 96 poços, acompanhados da adição de 200 µL do substrato,
em tampão fosfato contendo: NaCl 200 mM, NADH 0,2 mM, piruvato 1,6 mM/poço.
Foi feita a leitura da densidade óptica a 340 nm, no intervalo de tempo entre 0 e
10 minutos. Os resultados foram expressos pelo decréscimo da D.O. resultante da
oxidação do NADH, na presença do piruvato, em relação ao tempo zero.
4.7 Citologia das BEAS e tEnd
Para verificar a citologia das BEAS e tEnd, as mesmas foram fotografadas
antes e depois da incubação do TsV na concentração de 50µg/ml por 24 hs
(Fig.10). As preparações foram visualizadas em microscópio óptico Nikon TS-100
com objetivas de câmera 40x (abertura numérica: 0,55) e 100x (abertura
22
numérica: 1,25). As imagens foram captadas na câmera CCD DS-Fi 1 (Nikon,
EUA).
4.8 Dosagem de Citocinas
Para verificar se o TsV incubado nas BEAS e tEnd em diferentes
concentrações e em diferentes tempos libera em seu sobrenadante citocinas pró-
inflamatórias, realizou-se a dosagem das citocinas IL-1β, IL-6 e IL-8 pelo método
ELISA (enzima imuno ensaio) no sobrenadante colhido destas células.
Os sobrenadantes foram coletados 1, 3, 6 e 24 hs após a incubação com o
TsV em solução com meio de cultura, para a determinação das citocinas. Após a
centrifugação a 277,8 xg (1000 rpm) por 2 minutos, o sobrenadante foi coletado
para a determinação dos níveis de IL-6 e IL-1β e IL8. Em resumo, placas de 96
poços foram sensibilizadas com 50 µL do anticorpo de captura (anti- IL-1β ou anti-
IL-6 ou IL-8) marca Abcam, diluídos em PBS, e incubadas por 2 horas, a 37ºC.
Após esse período, os sítios livres foram bloqueados com 200 L de tampão de
bloqueio, contendo gelatina 3% em PBS e as placas incubadas por 18 horas, a
4ºC. Após lavagem da placa com PBS/Tween 20 0,05%, 50 L de amostras ou
padrões (recombinantes) foram adicionados em cada poço e as placas incubadas
por 1 hora, a 37ºC. A placa foi lavada com de PBS/Tween20 0,05% e a ligação
aos anticorpos foi detectada pela adição do anticorpo de captura, diluído em PBS-
gelatina 1% (5 g/mL, 50 L/poço), seguido de incubação por 1 hora a 37ºC. Após
lavagem da placa, 50 L de avidina-fosfatase alcalina, na diluição de 1:15000 em
PBS-gelatina 1%, foram adicionados e incubados por 1 hora à temperatura
ambiente, lavando-se em seguida. Para a revelação, foi utilizado o substrato
23
cromógeno -nitrofenil fosfato (200 L/mL), diluído em 1:5 em TRIS-HCl pH 9,8 1
M e salina 0,5 M. A absorbância foi determinada em leitor de ELISA (Labsystems
Multiscan) a 405 nm e os resultados confrontados a uma curva padrão efetuada
com o anticorpo recombinante para a determinação da concentração de cada
citocina, representada em ng/mL.
4.9 Análise estatística
Os valores foram expressos em média e desvio-padrão se aderirem à
curva de Gauss ou em mediana e intervalo interquartílico se não aderirem. A
comparação entre os grupos foi realizada pelo teste de ANOVA, dados
paramétricos. O teste de contraste (Pos Hoc) utilizado foi o Pós Teste Dunnet. Os
resultados foram considerados estatisticamente significantes se p menor ou igual
a 0,05. Os dados foram analisados por meio do programa GraphPadPrism 5.0
(GraphPad Software, San Diego, CA, EUA).
24
5. RESULTADOS
5.1 Determinação do efeito citotóxico do veneno Tityus serrulatus
(TsV): método MTT
5.1.1 las epiteliais brônquicas (BEAS)
O efeito do TsV sobre a viabilidade de BEAS foi analisado nos tempos de
30 e 60 minutos após a adição do veneno na concentração de 0.5, 1, 5 e 10
µg/mL. Os resultados demonstraram que não houve diferença estatisticamente
significativa em nenhuma das doses utilizadas que receberam o veneno nos
períodos de 30 e 60 minutos (Fig. 4), quando comparado ao controle.
Figura 4. Efeito do veneno Tityus serrulatus (TsV) na viabilidade de células epiteliais
brônquicas. Células brônquicas BEAS foram plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por
24-48 horas para adesão celular. Após esse período o veneno foi adicionado nas concentrações
0,5, 1, 5, e 10 µg/mL ou somente meio de cultura (controle) e incubadas por 30 e 60 minutos. A
viabilidade celular foi determinada pelo método MTT. Cada valor representa a média ± EPM de três
experimentos independentes.
25
A b
s
( %
c o
n t r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t r o
l e
)
Para verificar se o veneno teria uma ação mais tardia ou se doses maiores
causariam inviabilidade celular, incubamos o TsV (10 e 50 µg/mL) por 1, 3, 6 e 24
horas e avaliamos a viabilidade celular das BEAS. Como observado na figura 5, o
TsV (10 e 50 µg/mL, respectivamente) reduziu de maneira significante a
viabilidade apenas após 3 horas (50,1 ± 0,1 e 49,2 ± 2,2 %, respectivamente) e 24
horas (51,1 ± 2,2 e 26,7 ± 2,5 %, respectivamente).
1 h
3 h
1 0 0
1 0 0
7 5 7 5
5 0 5 0 * ** * **
2 5 2 5
0 0
[ T s V ] g / m L [ T s V ] g / m L
6 h 2 4 h
1 0 0
1 0 0
7 5 7 5 **
5 0 5 0 **
2 5 2 5
0 0
[ T s V ] g / m L [ T s V ] g / m L
Figura 5. Efeito do veneno Tityus serrulatus (TsV) na viabilidade de BEAS. As BEAS foram
plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse
período o veneno foi adicionado nas concentrações 10 e 50 µg/mL ou somente meio de cultura
(controle) e incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. A viabilidade celular foi determinada pelo método
MTT. Cada valor representa a média ± EPM de três experimentos independentes. Cada valor
representa a média ± EPM de três experimentos independentes. * p < 0,05, vs controle (ANOVA).
26
A b
s
( %
c o
n t
r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t
r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t
r o
l e
)
A b
s
( %
c o
n t
r o
l e
)
5.1.2 Células endoteliais (tEnd)
Quando avaliamos a viabilidade de tEnd incubadas com o TsV, verificamos
que o veneno não foi capaz de alterar a viabilidade das mesmas, mesmo na
concentração mais alta (50 g/mL) e em todos os tempos de incubação (fig. 6).
1 h 3 h
1 0 0
1 0 0
7 5 7 5
5 0 5 0
2 5 2 5
0 0
[ T s V ] g / m L [ T s V ] g / m L
6 h 2 4 h
1 0 0
1 0 0
7 5 7 5
5 0 5 0
2 5 2 5
0 0
[ T s V ] g / m L [ T s V ] g / m L
Figura 6. Efeito do veneno Tityus serrulatus (TsV) na viabilidade de tEnd. As tEnd foram
plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse
período o veneno foi adicionado nas concentrações 10 e 50 µg/mL ou somente meio de cultura
(controle) e incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. A viabilidade celular foi determinada pelo método
MTT. Cada valor representa a média ± EPM de três experimentos independentes.
27
m m
o l
N A
D H
/m
in
5.2 Determinação do efeito citotóxico do veneno Tityus serrulatus (TsV): dosagem de LDH
5.2.1 las epiteliais brônquicas (BEAS)
A perda da integridade da membrana após incubação com TsV foi
monitorada pela análise da liberação no meio de cultura da enzima citoplasmática
LDH. Células que receberam o veneno, na concentração de 50 µg/mL,
apresentaram aumento de 85% nos níveis de LDH no sobrenadante, no tempo de
24 horas, comparado ao grupo que recebeu somente meio de cultura (controle). O
mesmo efeito não foi observado nos outros tempos estudados e na concentração
de 10 µg/mL (fig. 7).
1 . 5
C o n t r o le
T s V ( 1 0 g /m L )
T s V ( 5 0 g /m L )
* 1 . 0
0 . 5
0 . 0
1 3 6 2 4
T e m p o ( h )
Figura 7: Efeito do veneno do escorpião Tityus serrulatus (TsV) na liberação de LDH de
BEAS.. Células brônquicas epiteliais foram plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por
24-48 horas para adesão celular. Após esse período foi adicionado o TsV (10 e 50 µg/mL), ou meio
de cultura (controle) e foram incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. Após cada período de tempo, 20 uL
de cada amostra foram adicionados ao substrato e a atividade da LDH foi determinada pelo
decréscimo da D.O., como descrito em Material e Métodos. Cada valor representa a média ± EPM
de três experimentos independentes, * p < 0,05, vs controle (ANOVA).
28
mm
ol
NA
DH
/min
*
5.2.2 las endoteliais (tEnd)
Quando o TsV foi incubado com tEnd, houve liberação significante de LDH
no sobrenadante, no tempo de 24 horas nas concentrações de 10 e 50 g/mL,
quando comparado ao grupo que recebeu somente meio de cultura (controle). O
mesmo efeito não foi observado nos outros tempos estudados (fig. 8).
1.2
0.9
0.6
Controle *
TsV (10 g/mL)
TsV (50 g/mL)
*
0.3
0.0 1 3 6 24
Tempo (h)
Figura 8: Efeito do TsV na liberação de LDH de tEnd.. As tEnd foram plaqueadas em placas de
96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse período foi adicionado o
TsV (10 e 50 µg/mL) ou meio de cultura (controle) e foram incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. Após
cada período de tempo, 20 uL de cada amostra foram adicionados ao substrato e a atividade da
LDH foi determinada pelo decréscimo da D.O., como descrito em Material e Métodos. Cada valor
representa a média ± EPM de três experimentos independentes. * p < 0,05, vs controle (ANOVA).
29
5.3 CITOLOGIA 5.3.1 Citologia de células BEAS após incubação com o veneno de Tityus
serrulatus (TsV).
As células BEAS em cultura foram observadas em microscopia óptica antes
e após 24 horas da incubação de TsV (50 µg/mL). Pode-se observar uma redução
na quantidade de células na presença do TsV (Fig. 9 C e D), quando comparadas
com o controle (Fig. 9 A e B). Além disso, também se observa uma diminuição do
volume citoplasmático (plasmólise) das mesmas.
Controle TsV (50 µg/mL)
A C
B D
Figura 9: Aspecto citológico das BEAS. As BEAS foram plaqueadas em placas de 96 poços e
colocadas para aderir por 24-48 horas. Após esse período foi adicionado o TsV (50 µg/mL) ou meio
de cultura (controle) e incubadas por 24 horas, a seguir a placa foi fotografada em microscópio
invertido. A e B: controle, C e D: TsV 50 µg/mL (100 e 400x respectivamente). A e C: 10x, B e D:
40x.
30
5.3.2 das células tEnd após incubação com o veneno de Tityus serrulatus (TsV)
As células tEnd em cultura foram observadas em microscopia óptica antes e
após 24 horas da incubação de TsV (50µg/mL). Pode se observar que não ocorreu
uma redução significativa na quantidade de células na presença do TsV (Fig. 10 C
e D), quando comparadas com o controle (Fig 10 A e B).
Figura 10: Aspecto citológico das tEnd. As tEnd foram plaqueadas em placas de 96 poços e
colocadas para aderir por 24-48 horas. Após esse período foi adicionado o TsV (50 µg/mL) ou meio
de cultura (controle) e incubadas por 24 horas, a seguir a placa foi fotografada em microscópio
invertido. A e B: controle, C e D: TsV 50 µg/mL (100 e 400x respectivamente). A e C: 10x, B e D:
40x.
31
IL1
ng
/mL
5.4 Dosagem de interleucinas em células BEAS
5.4.1 Liberação de IL-1β induzida pelo TsV em BEAS.
As concentrações de IL-1β foram avaliadas no sobrenadante de cultura de
BEAS, no período de 1, 3, 6 e 24 horas após a incubação com o TsV (10 e 50
µg/mL) ou meio de cultura (controle). O TsV foi capaz de aumentar
significativamente a liberação da IL-1β quando foi incubado por 6 horas na
concentração 50 g/mL (Figura 10).
Controle
TsV (10 g/mL)
30 TsV (50 g/mL)
*
20
10
0
1 3 6 24
Tempo (h)
Figura 10: Liberação de IL-1β induzida pelo TsV em BEAS. As BEAS foram plaqueadas em
placas de 96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse período foi
adicionado o TsV (10 e 50 µg/mL) ou meio de cultura (controle) e foram incubadas por 1, 3, 6 e 24
horas. As concentrações de IL-1β foram avaliadas por EIA em sobrenadante das células em
cultura. Cada valor representa a média ± EPM de três experimentos independentes, * p< 0,05, vs
controle (ANOVA).
32
IL-6
ng
/mL
5.4.2 Liberação de IL-6 induzida pelo TsV em BEAS.
As concentrações de IL-6 foram avaliadas no sobrenadante de cultura de
BEAS, no período de 1, 3, 6 e 24 horas após a incubação com o TsV (10 e 50
µg/mL) ou meio de cultura (controle). Ambas as concentrações estudadas foram
capazes de induzir a liberação de IL-6, pelas BEAS, que foi significativamente
diferente do controle em todos os tempos analisados, sendo que a maior liberação
dessa citocina ocorreu às 3 e 24 horas após a incubação do TsV (Fig. 11).
4000
Controle
TsV (10 g/mL)
TsV (50 g/mL)
3000 *
* * * 2000
* * * * 1000
0 1 3 6 24
Tempo (h)
Figura 11: Liberação de IL-6 induzida pelo TsV em BEAS. As BEAS foram plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse período foi adicionado o TsV (10 e 50 µg/mL) ou meio de cultura (controle) e foram incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. As concentrações de IL-6 foram avaliadas por ELISA em sobrenadante das células em cultura. Cada valor representa a média ± EPM de três experimentos independentes, * p< 0,05, vs controle (ANOVA).
33
IL-8
ng
/mL
5.4.3 Liberação de IL-8 induzida pelo TsV em BEAS.
As concentrações de IL-8 foram avaliadas no sobrenadante de cultura de
BEAS, no período de 1, 3, 6 e 24 horas após a incubação com o TsV (10 e 50
µg/mL) ou meio de cultura (controle). Ambas as concentrações estudadas foram
capazes de induzir a liberação de IL-8, pelas BEAS, que foi significativamente
diferente do controle em todos os tempos analisados, sendo que a maior liberação
dessa citocina ocorreu às 3 e 6 horas após a incubação do TsV (Fig. 12).
2500
2000 *
* 1500
1000
* * 500
Controle
TsV (10 g/mL)
TSV (50 g/mL)
*
* *
*
0 1 3 6 24
Tempo (h)
Figura 12: Liberação de IL-8 induzida pelo TsV em BEAS. As BEAS foram plaqueadas em placas de 96 poços e incubadas por 24-48 horas para adesão celular. Após esse período foi adicionado o TsV (10 e 50 µg/mL) ou meio de cultura (controle) e foram incubadas por 1, 3, 6 e 24 horas. As concentrações de IL-8 foram avaliadas por ELISA em sobrenadante das células em cultura. Cada valor representa a média ± EPM de três experimentos independentes, * p< 0,05, vs controle (ANOVA).
34
6. DISCUSSÃO
O TsV é o que causa o maior número de acidentes em humanos, e induz às
mais severas formas de envenenamento, quando comparado as outras espécies
de escorpião de importância médica no Brasil. No entanto, os estudos da ação
deste veneno em células em cultura são escassos. Assim, este trabalho teve
como objetivo investigar o efeito in vitro do TsV de em cultura de células epiteliais
brônquicas humanas (BEAS) e células endoteliais murinas (tEnd).
A literatura mostra que o envenenamento causado pelo TsV causa
alterações pulmonares como edema pulmonar agudo, sendo a principal causa de
óbito, principalmente em crianças (Amaral e Resende, 1997). No entanto, não está
esclarecido os mecanismos celulares pelo qual isto ocorre.
Neste estudo avaliou-se a capacidade do TsV em causar injúria em células
epiteliais brônquicas e em células endoteliais in vitro.
Na primeira fase do trabalho avaliou-se a viabilidade das BEAS e tEnd, pelo
método do MTT, onde dosou-se a enzima desidrogenase mitocondrial, pois em
casos de injúria ocorre extravasamento desta enzima para o citoplasma das
células, onde pode se observar na literatura que o método MTT serve também
para estimar o número de mitocôndrias e o número de células vivas em lavado
bronco alveolar de cavalos após injúria (Hall JA et al, 2006). Já Xie et al. (2011)
determinaram a atividade anti-proliferativa pelo MTT, onde quantificou a
viabilidade/morte celular por apoptose em carcinoma mucoepidermóide de pulmão
em humanos. Após a avaliação pelo MTT, os resultados mostraram que o TsV foi
capaz de diminuir a viabilidade das células BEAS em 3, 6 e 24 horas de incubação
35
nas concentrações de 10 e 50 g/mL, mostrando que o TsV é tóxico para essas
células. Já foi demonstrado que o TsV é capaz de causar alterações na mecânica
do tecido pulmonar em camundongos (Peres et al, 2009), onde essas alterações
podem ser decorrentes da toxicidade do veneno sobre as BEAS como
observamos neste trabalho. Já em períodos mais precoces de incubação (30 min
e 1 h) o TsV não causou citotoxicidade.
Quando avaliou-se o efeito do TsV nas tEnd, verificou-se que o veneno não
é citotóxico para essas células em nenhum dos tempos avaliados e nenhuma das
concentrações, resultados semelhantes foram encontrados quando o TsV foi
avaliado sobre macrófagos em cultura (Petricevich, 2002). No entanto, não se
pode descartar a possibilidade do veneno ter alguma modulação sobre as tEnd,
uma vez que o endotélio é um importante componente tecidual que medeia o
processo inflamatório e a resposta vascular à injúria pulmonar (Parra-Bonilla G et
al., 2010).
Para avaliar outra forma de dosagem da viabilidade celular frente ao TsV,
dosou-se a liberação da enzima lactato desidrogenase (LDH), uma enzima
intracelular que após rompimento da membrana celular é liberada, podendo ser
dosada no sobrenadante de cultura celular. A LDH converte piruvato a lactato,
gerando NAD, que é importante para sustentação do fluxo glicolítico. A LDH
converte o piruvato, que é o produto final da glicólise em lactato na ausência ou
em pequenas quantidades de oxigênio, realiza também reação reversa via
glicolítica anaeróbica no fígado. Na presença de grandes concentrações de
lactato, a enzima exibe inibição por “feedback” e a taxa de lactato a piruvato é
reduzida. Na literatura podemos observar que a enzima LDH está presente na
36
disfunção endotelial e que pode ser considerada uma indicadora de morte celular
por necrose (Zhang SL et al, 2010). Já em células endoteliais pulmonares de
ratos, é mostrado que uma subunidade da LDH, a LDH-A está relacionada com a
regulação do rápido crescimento celular e que a supressão de LDH-A expressa
estímulo respiratório mitocondrial e diminuição do crescimento celular, enquanto
que em células cancerígenas a LDH-A participa da tumorigênese (Parra-Bonilla et
al, 2010). Os resultados mostraram um aumento significante da LDH após 24
horas da incubação do TsV (50 g/mL), tanto nas células BEAS como nas células
tEnd, indicando que o TsV leva a lesão celular nos dois tipos celulares estudados.
Os dados obtidos demonstraram que o veneno causa tanto a liberação de
LDH e alteração da atividade oxidativa mitocondrial em células BEAS. Por outro
lado, o veneno causou a liberação de LDH, mas não alterou a atividade oxidativa
mitocondrial nas tEnd
. A partir desses dados, pode-se sugerir que os mecanismos de ação do
TsV sobre a viabilidade das monocamadas de BEASl e tEnd sejam diferentes.
A análise citológica das células BEAS está de acordo com a observada na
análise bioquímica de citotoxicidade, uma vez que foi observado redução do
número de células e do volume citoplasmático na presença do TsV em 24 horas.
Esta redução de volume está de acordo com a alteração da bomba Na+/K+-
ATPase causada pelo TsV relatada em células epiteliais alveolares do tipo II em
ratos, que pode contribuir para a morbidade e mortalidade de vítimas que
desenvolveram edema pulmonar após a acidente com o TsV (Comellas et al.,
2003).
37
Com a finalidade de verificar se as BEAS estariam participando da
inflamação local, avaliou-se a capacidade das BEAS de produzir citocinas pró-
inflamatórias, visto que diversas citocinas já foram verificadas in vivo após
envenenamento pelo Tityus serrulatus. (Fukuhara et al., 2002).
As citocinas são um grupo de proteínas muito importantes nos processos
de comunicação entre as células. Constituem uma classe de compostos diferentes
em termos de origem e função e são fundamentais para o funcionamento
adequado da resposta imune inata e adaptativa (Mtodzikowska-Albrecht et al.,
2007).
Além de sua ação sobre os neurotransmissores, já foi demonstrado que o
veneno do escorpião pode estimular a liberação de citocinas principalmente em
casos de envenenamento severo (Meki, Monhey-El-Dean, 1998; Zoccal et al.,
2011). Níveis elevados de IL-6 foram encontrados no plasma de pacientes picados
pelo escorpião Tityus serrulatus (Magalhães et al, 1999; Fukuhara et al., 2003) e
ocorreu aumento de IL-6 e IL-1 em camundongos expostos aos venenos dos
escorpiões T. serrulatus e Centruroides noxius (Petricevich e Peña 2002; Pessini
et al., 2003; Petricevich et al., 2006). Há trabalhos na literatura com o TsV ou
toxinas purificadas deste, mostrando que o pico máximo de IL-1β ocorre antes do
pico máximo de IL-6. (Petricevich et al, 2007).
Baseado nestas informações, estudou-se as citocinas IL-1β, IL-6 e IL-8,
pelo fato de estudos mostrarem, em humanos, uma correlação direta dessas
interleucinas no plasma, com a severidade do envenenamento pelo TsV
(Fukuhara Y D et al, 2003). Os resultados obtidos nas células BEAS, mostrou que
houve um aumento significativo na liberação da IL-1β no período de incubação de
38
6 horas pelo TsV. Já, o TsV causou um aumento significante das citocinas IL-6 e
IL-8, nas células BEAS em todos os períodos de tempo analisados.
A IL-1 é sintetizada por vários tipos celulares incluindo as células epiteliais.
As ações biológicas da IL-1 são múltiplas e diversificadas. O principal efeito
biológico desta citocina é mediar o processo inflamatório. Essa citocina aumenta a
síntese e secreção de proteínas de fase aguda pelos hepatócitos e promove
acúmulo de granulócitos, particularmente de neutrófilos, nos sítios de inflamação,
através do aumento da expressão de moléculas de adesão nas células
endoteliais. A IL-1 causa edema e induz a produção de quimiocinas como a IL-8 e
de outras citocinas como o TNF-e a IL-6 (para revisão vide DINARELLO, 1988;
1991; MIZEL, 1989; STYLIANOU & SAKLATVALA, 1998). A IL-6 está relacionada
à resposta de fase aguda da reação inflamatória, que é caracterizada por
leucocitose, febre, aumento da permeabilidade vascular, alterações das
concentrações plasmáticas de esteróides, aumento da produção de proteínas de
fase aguda (KISHIMOTO, 1989) e aumento da expressão da molécula de adesão
ICAM-1 (TILG et al., 1997). A IL-8 é produzida por uma enorme variedade de
células (monócitos, linfócitos, células do endotélio ou epitélio, fibroblastos) em
resposta a diferentes estímulos como o LPS e a outras citocinas (TNFα, IL-1β).
Ainda, a IL-8 é um potente quimiotático e ativador de neutrófilos (Montón et al
1998). Desse modo, pode-se sugerir que as citocinas IL-1β, Il-6 e IL-8, liberadas
pelas células BEAS contribuam para o recrutamento leucocitário induzido pelo
veneno e/ou aumento de permeabilidade vascular, eventos causados pelo TsV já
demostrados na literatura (ZULIANI et al., 2013; Fialho et al., 2011; Peres et al.,
2009).
39
Em conjunto, pelos dados obtidos, verificou-se a ação in vitro do TsV em
BEAS e tEnd. Concluiu-se que o envenenamento causado pelo TsV que ocorre no
pulmão (mecanismo in vivo) apresenta ação local em BEAS (mecanismo in vitro),
e que essas células contribuem para o processo inflamatório observado nos
pacientes picados pelo TsV. Podemos também inferir que o TsV é tóxico para
BEAS e que esta seria uma das causas das alterações na mecânica pulmonar
causada por este veneno.
Esses dados colaboram para um melhor entendimento no processo
fisiopatológico deste envenenamento, contribuindo para uma conduta médica
precoce e mais direcionada da vítima logo após a picada pelo TsV, evitando
evolução para o edema agudo de pulmão e morte.
40
7. CONCLUSÃO
√ O veneno de TsV alterou a viabilidade de monocamadas das BEAS e
tEnd, sendo que esse efeito foi mais pronunciado nas BEAS.
√ O TsV induz a liberação das citocinas IL-1, IL-6 e IL-8 pelas BEAS.
41
8. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Abdel-Haleem AH, Meki, A, Naoman HA, Mohamed ZT. Serum levels of IL-6 and
its soluble receptor, TNF-α and chemokine RANTES in scorpion envenomed
children: Their relation to scorpion envenomation outcome. Toxicon, v. 40, p. 437-
444, 2006.
Amaral CFS, Rezende NA. Both cardiogenic and non-cardiogenic factors are
involved in the pathogenesis of pulmonary oedema after scorpion envenoming.
Toxicon. v. 35, p. 997-998, 1997.
Andrade MV, Lisboa FA, Portugal AL, Arantes RME, Cunha-Melo JR. Scorpion
venon increases mRNA expression of lung cytokines. Comp. Biochem. Physiol,
Part A, v. 146, p.581-587, 2007.
Barbouche MR, Haguiga H, Nouira S, Krifi MN, Abroug F, Bouchoucha S. Dellagi
K. Inflamatory cytokines and scorpion envenomation: analysis of serological levels
in 46 Tunisian patients. Toxicon, v. 34, p. 156-157, 1996.
Barraviera B. Systemic inflammatory response syndrome in envenoming. Toxicon,
v. 3, p. 13-14, 1997.
Benvenuti LA, Dowtts KV, Cardoso JL. Myocardial necrosis after envenomation by
the scorpion T. serrulatus. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg., v.96, p. 275-276, 2002.
42
Carvalho MHC, Scivoletto R, Nigro D, Fortes ZB (1996) Funções Fisiológicas do
endotélio vascular. Ver. Soc. Cardiol. Estado de São paulo, 2: 121-128.
Catterall WA, Cestéle S, Yarov-Yarovoy V, Yu FH, Konoki K, Scheuer T. Voltage-
gated ion channels and gating modifier toxins. Toxicon, v.49, p. 124-141, 2007.
Chaudry IH, Stephan RN, Harkema JM, Dean RE. Immunological alterations
following simple hemorrhage. In: Faist F, Ninneman J, Green D.(Ed). Immune
Consequences of Trauma. Springer Berlin: Shock and Sepsis, 1989. P. 363-373.
Chippaux JP, Goyffon M. Epidemiology of scorpionism: a global appraisal. Acta
Trop., v. 107, p. 71-79, 2008.
Cologna CT, Marcussi S, Giglio JR, Soares AM, Arantes EC. Tityus serrulatus
Scorpion Venom and Toxins: An Overview. Protein Pept. Lett., v. 16, p. 920-932,
2009.
Comellas AP, Pesce LM, Azzam Z, Saldías FJ, Sznajder JI. Scorpion venom
decreases lung liquid clearence in rats. Am J Respir Crit Care Med 2003 Apr 15;
167(8): 1064-7.
Corrêa MM, Sampaio SV, Lopes RA, Mancuso LC, Cunha OAB, Franco JJ, Giglio
JR. Biochemical and histopayhological alterations induced in rats by Tityus
serrulatus scorpion venom and its majos neurotoxin Tityustoxin-I. Toxicon, v. 35,
p.1053-1067, 1997.
43
Cupo P, Jurca M, Azeedo-Marques, M. M, Oliveira J.S, Hering SE. Severe
scorpion envenomation in Brazil. Clinical, laboratory and anatomopathological
aspects. Rev. Inst. Med. Trop. São Paulo, v. 36, p. 67-76, 1994.
Cupo P, Azevedo-Marques, M. M Hering SE. Escorpionismo: IN: Barraviera, B.
Venenos, Aspectos clínicos e terapêuticos dos acidentes dos animais
peçonhentos. Rio de Janeiro EPUB (Editora de Public. Biomédicas, cap 22, pp
299-313, 1999.
De Matos IMO, Rocha A, Leite, R, Freire-Maia L. Lung oedema induced by T.
serrulatus scorpion venom in the rat. Comp. Biochem. Physiol. C. Pharmacol.
Toxicol. Endocrinol, v.118c, p. 143-148, 1997.
De Matos IM, Talvani A, Rocha OO, Freire-Maia L, Teixeira MM. Evidence for a
role of mast cells in the lung edema induced by Tityus serrulatus venom in rats.
Toxicon, v. 39, p. 863-867, 2001.
Dinarello, C.A. The proinflammatory cytokines interleukin-1 and tumor necrosis
factor and treatments of the shock syndrome. J. Infect. Dis., 163: 1177-1183, 1991.
Dinarello, C.A. Biology of interleukin-1. FASEB J., 2: 108-15, 1988.
D’Suze G, Moncada S, González C, Aguilar V, Alagón A. Relationship between
plasmatic levels of various cytokines, tumor necrosis factor, enzymes and glucose
and venom concentration following Tityus scorpion sting. Toxicon, v. 41, p. 367-
375, 2003.
44
Fialho EMS, Maciel MCG, Silva ACB, Reis AS, Assunção AKM, Fortes TS, Silva
LA, Guerra RNM, Kwasniewski FH, Nascimento FRF. Immune cells recruitment
and activation by Tityus serrulatus scorpion venom. Toxicon 58 (2011) 480–485,
2011.
Freire-Maia L, Almeida HO, Cunha-Melo JR, Azevedo AD, Barroso J. Mechanism
of the pulmonary edema by intravenous injection of scorpion toxin in the rat.
Agents Actions. 1978 Jan; 8(1-2): 113-8.
Freire-Maia L, Campos J A. Pathophysiology and treatment of scorpion poisoning.
In: Ownby G V, Odell C L (Eds). Natural toxins: Characterization, pharmacology
and therapeutics. Oxford, Pergamon Press: p. 139-159, 1989.
Freire-Maia L, de Matos IM. Heparin or PAF antagonist (BN-520521) prevents the
cute pulmonar edema induced by Tityus serrulatus in the rat.Toxicon.1993 sep;
31(9): 1207-10.
Freire-Maia L, Campos JA, Amaral CFS. Approaches to the treatment of scorpion
envenoming. Toxicon, 32: 1009-1014, 1994
Fukuhara Y D, Reis M L, Dellalibera-Joviliano R, Cunha F Q, Donadi E A.
Increased plasma levels of IL-1beta, IL-6, IL-8, IL-10 and TNF-alpha in patients
moderately or severely envenomed by Tityus serrulatus scorpion sting. Toxicon, v.
41(1), p. 49-55, 2003.
45
Fukuhara YD, Dellalibera-Joviliano R, Cunha FQ, Reis ML, Donadi EA. The Kinin
system in the envenomation caused by the Tityus serrulatus scorpion sting.
Toxicol. Appl. Pharmacol. v. 196, p.390-395, 2004.
Fundação Nacional de Saúde, Ministério da Saúde. Manual de diagnóstico e
tratamento de acidentes por animais peçonhentos. 2. Ed. Brasília: Ministério da
Saúde, 2001. p. 37-44.
Gueron M, Ilia R. Non-cardiogenic pulmonary edema after scorpion envenomation:
A true entity? Toxicon, v. 34, p. 393-395, 1996.
Hall JA, Hoyt D, Zuver C, Skinner MM, Schilpf JW Jr. Rapid, Multiwell colorimetric
assay for measuring neutrophil chemoattractant activity bronchoalveolar lavage
fluid of horses with recurrent airway obstruction. J Vet Diagn Invest. 2006 may;
18(3): 257-63.
Ismael, M. The scorpion envenomation syndrome. Toxicon, v 33, n 7, p 825-858,
1995.
Kim H, Zamel R, Bai X-H, Liu M. PKC Activation Induces Inflammatory Response
and Cell Death in Human Bronchial Epithelial Cells. Plos one 8(5): e64182. Doi:
10.137/journal.pone.0064182, 2013.
KISHIMOTO, T. The biology of interleukin-6. Blood, 74: 1-10, 1989.
46
Lourenço W R, Von Eickstedt V R D. Escorpiões de importância médica. In:
Cardoso J L C, França F O S, Wen F H, Málaque C M S, Haddad V JR. Animais
peçonhentos do Brasil: biologia, clínica e terapêutica dos acidentes, 2. Ed. São
Paulo: Sarvier, 2009. p. 182-197.
Magalhães MM, Pereira ME, Amaral CF, Rezende NA, Campolina D, Bucaretchi F,
Gazzinelli RT, Cunha-Melo JR. Serum levels of cytokines in patients envenomed
by Tityus serrulatus scorpion sting. Toxicon, 1999 Aug; 37(8): 1155-64.
Mebs D. Scorpion and snakes, such as cobras, mambas and vipers made the
African continent famous for venomous animals. Bull. Soc. Pathol. Exot., v. 95, p.
131, 2002.
Meki AR, Monhey El-Dean ZM. Sérum interleukin-1 beta, interleukin-6, nitric oxide
and alphal-antitrypsin in scorpion envenomed children. Toxicon, v.36, p, 1851-
1859, 1998.
Miranda F, Rochat H, Lissitzky S. Sur les neurotoxines de deux espèces de
scorpions nordafricains.II. Proprietés des neurotoxines (scorpamines) d’
Androctonus xustralis (L.) et de Buthus ocritanus (Am.). Toxicon, v. 2, p. 113-
121,1964.
Mizel, S.B. The interleukins. FASEB J., 3: 2379-88, 1989.
Moncada S, Radomski MW, Palmer RM. Endothelium-derived relaxing factor.
Identification as nitric oxide and role in the control of vascular tone and platelet
function. Biochem Pharmacol. 1988 Jul 1; 37(13): 2495-501. Review.
47
Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application
to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods 1983 Dec 16; 65 (1-2);
55-63.
Montón C, Torres A. Lung inflammatory response in pneumonia. Monaldi Arch
Chest Dis. 53(1):56-63, 1998. Review
Mtodzikowska-Albrecht J, Steinborn B, Zarowski M. Cytokines, epilepsy and
antiepileptic drugs - is there a mutual influence? Pharmacol Rep., v. 59. P. 129-
138, 2007
Ondetti MA, Cushman DW. Enzymes of the rennin-angiotensin system and the
inhibitors. Annu Rev Biochem 1982; 51: 283-308. Review.
Parra-Bonilla G, Alvarez DF, Al-Mehdi AB, Alexeyev M, Stevens T. Critical role for
lactate dehydrogenase A in aerobic glycolysis that sustains pulmonary
microvascular endothelial cell proliferation.AM J Physiol Lung Cell Mol Physiol
2010 Oct, 299(4):L 513-522.
Peres A C, Nonaka P N, Carvalho P T C, Toyama M H, Silva C A M, Vieira R P,
Dolhnikoff M, Zamuner S R, Oliveira L V F. Effects of Tityus serrulatus scorpion
venom on lung mechanics and inflammation in mice. Toxicon, v. 53, p. 779-785,
2009.
Pessini AC, de Souza AM, Faccioli LH, Gregório ZM, Arantes EC. Time course of
acute-phase response induced by Tityus serrulatus venom and TsTX-I in mice.
International Immunopharmacology. 2003 May; 3(5): 765-74.
48
Petricevich VL. Effect of Tityus serrulatus venom on cytokine production and the
activity of murine macrophages. Mediators Inflamm 2002 Feb;11(1):23-31.
Petricevich VL. Peña CF. The dynamics of cytokine d nitric oxide secretion in mice
.injected with Tityus serrulatus scorpion venon. Mediators Inflamm 2002 Jun;11(3):
173-80
Petricevich VL. Cytokine and nitric oxide production following severe
envenomation. Curr. Drug Targets Inflamm. Allergy. v.3, p. 325-332, 2004.
Petricevich VL. Balance between pro-and anti-inflamatory cytokines in mice treated
with Centruroides noxius scorpion venom. Mediators of inflamm. V. 5, p 1-11,
2006.
Petricevich V L, Cruz A H, Coronas F I, Possani L D. Toxin gamma from Tityus
serrulatus scorpion venom plays an essential role in immunomodulation of
macrophages. Toxicon, v.50, p. 666-675, 2007.
Petricevich VL. Scorpion venom and the inflammatory response. Mediators
Inflamm. v. 2010, p. 1-16, 2010.
Rezende NA, Dias MB, Campolina D, Chavez-Olortegui C, Diniz CR, Amaral CF.
Efficacy of antivenom therapy for neutralizing circlating venom antigens in patients
tung by Tityus serrulatus scorpions. Am J Trop Med Hyg. 1995 Mar; 52(3): 277-80.
49
Ribeiro El, Pinto MCL, Labarrère CR, Paes PRO,Paes-Leme, FO, Chávez-
Olótergui D, Melo MM. Biochemical profile of dogs experimentally envenomed with
Tityus serrulatus scorpion venom. Toxicon, v.55, p.1125-1131, 2010.
Santos WF, Venenos Escorpionicos: Bioquímica e Farmacologia. In: Barravieira B.
Venenos, aspectos clínicos e terapêuticos dos acidentes por animais
peçonhentos. Rio de janeiro: EPUB (Editora de Public Biomédicas), 1999 cap 16,
p. 233-241.
Stein, M., Gordon, S., 1991. Regulation of tumor necrosis factor (TNF) release by
murine peritoneal macrophages; role of cell stimulation and specific phagocytic
plasma membrane receptors. Eur.J. Immunol. 21 (2), 431-437.
Sofer S, Gueron M, White RM, Lifshitz M, Apte RN. Interleukin-6 release following
scorpion sting in children. Toxicon, v.34, p. 389-392, 1996.
Stylianou, E & Saklatvala, J. - Molecules in Focus Interleukin-1. Intern. J. Biochem.
Cell Biol., 30: 1075-79, 1998.
Tilg, H.; Dinarello, C.A.; Mier, J.W. IL-6 and PPAs: anti-inflammatory and
immunosupressive mediators. Immunol. Today, 18: 428-432, 1997.
Thuillez C, Richard V. Targeting endothelial dysfunction in hypertensive subjects. J
Hum Hypertens.2005 jun; 19 suppl 1: s 21-5. Review.
Vane JR, Gryglewski RJ, Botting RM (1987). Endothelial cell as a metabolic and
endocrine organ. Trends Pharmacol. Sci, 8: 491-496.
50
Zhang SL, Du YH, Wan J, Yang LH, Yang XL, Zheng RH, Wu Y, Wang K, Zhang
MS, Liu HR. Endothelial dysfunction induced by antibodies against angiotensin
AT1 receptor in immunized rats. Acta Pharmacologica Sin 2010 Oct;31 (10): 1381-
8.
Zoccal KF, Bitencourt CS, Secatto A, Sorgi CA, Bordon KCF, sampaio SV, Arantes
EC, Faccioli LH. Tityus serrulatus venom and toxins Ts1, Ts2 and Ts6 induce
macrophage activation and production of immune mediators. Toxicon v.57, p 1101-
1108, 2011.
Zuliani JP, Freitas TA, Conceição IM, Kwasniewski FH. Tityus serrulatus venom
increases vascular permeability in selected airway tissues in a mast cell-
independent way. Experimental and Toxicologic Pathology 65 229-234, 2013.
51
manuscript 4326 - Receipt - Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology
Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology <[email protected]>
qui 30/01/2014 05:26
Para:
Stella Regina Zamuner;
Manuscript title: EFFECTS OF Tityus serrulatus SCORPION VENOM ON
ENDOTHELIAL CELLS
Dear Dr Zamuner
Thank you very much for submitting the above manuscript to Basic &
Clinical Pharmacology & Toxicology. The manuscript is being evaluated
and we will contact you as soon as a decision has been made.
The progress of your manuscript can be followed from the progress report
accessed from your overview at any time during the review or publication
process.
Please ONLY inform us by return of email if the pdf version of your
article accessed from the progress report, DOES NOT correspond with the
version that was submitted.
The editorial office
