Diagnóstico parasitológico ii

10
PROFº M Sc. GUILHERME COLLARES

Transcript of Diagnóstico parasitológico ii

Page 1: Diagnóstico parasitológico ii

PROFº M Sc. GUILHERME COLLARES

Page 2: Diagnóstico parasitológico ii

DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO II

Page 3: Diagnóstico parasitológico ii

TÉCNICAS DIAGNÓSTICAS COPROPARASITOLÓGICAS

Page 4: Diagnóstico parasitológico ii

ESQUEMA DE APLICAÇÃO DE TÉCNICAS DIAGNÓSTICAS COPROPARASITOLÓGICAS

FEZES

Observação a olho nu

NEMATÓDEOS

Ovos

Qualitativa Flutuação simples e

sedimentação

Quantitativa OPG

Larvas Técnica de Baermann

CESTÓDEOS Ovos e Proglotes Qualitativa Flutuação simples e

Sedimentação

TREMATÓDEOS Ovos

Qualitativa Sedimentação

Quantitativa Quatro Tamises

Page 5: Diagnóstico parasitológico ii

TÉCNICAS DE SEDIMENTAÇÃO

Page 6: Diagnóstico parasitológico ii

TÉCNICAS QUALITATIVAS

MÉTODO DE DÊNIS STONE E SWANSON – utiliza-se esta técnica para pesquisa de ovos de trematódeos, cestódeos e acantocéfalos.

Material: 2 g de fezes; Copos plásticos; Coador; Bastão de vidro; Pipeta de Pasteur; Lâminas e lamínulas; Cálice de sedimentação; Solução detergente; Lugol.

Preparação de Solução Detergente: Detergente líquido .......5 ml - Solução fisiológica ou agua ......... 995 ml; Técnica:

Misturar as fezes com 30 ml de solução detergente; Tamisar, passando ao cálice de sedimentação; Deixar repousar por 10 min.; Desprezar o sobrenadante e adicionar mais 30 ml de solução detergente; Deixar repousar por 10 min.; Desprezar o sobrenadante, adicionar 1 gota de lugol ao sedimento e misturar com auxílio de um bastão de vidro; Deixar em repouso durante 5 min.; Pipetar algumas gotas de sedimento e examinar ao microscópio entre lâmina e lamínula (examinar mais de uma lâmina – de acordo

com a quantidade de sedimento).

Page 7: Diagnóstico parasitológico ii

TÉCNICAS QUANTITATIVAS

TÉCNICA DE TAMISAÇÃO DE GIRÃO E UENO: QUATRO TAMISES METÁLICOS – empregada para diagnóstico quantitativo e qualitativo de ovos de Fasciola hepatica e Paramphistomum cervi em fezes de ruminantes.

Material: Solução detergente a 10%; Frasco com capacidade de 80 – 100 ml; Bastão de vidro; Tamises com telas metálicas de 100, 180, 200, 250 malhas/polegada; Placa de Petri, riscada em linhas paralelas; Pipeta de Pasteur; Corante Azul de Metileno;

Técnica:

Pesar 1 g de fezes e colocar no frasco; Diluir as fezes em 30 ml de água com 5 gotas de solução detergente; Homogeneizar o conteúdo; Passar a mistura pelo conjunto de tamises, descartando-se, um por um, dos três primeiros

tamises, recolhendo o material retido no último tamis em na Placa de Petri riscada (utilizando um fino jato de água no sentido inverso do tamis);

Esperar 2 min. e retirar, sem agitar o sedimento, o excesso de água da placa com uma pipeta; Observar ao microscópio.

Page 8: Diagnóstico parasitológico ii

OVOS DE PARASITAS IDENTIFICADOS ATRAVÉS DE TÉCNICAS DE SEDIMENTAÇÃO

Page 9: Diagnóstico parasitológico ii

PARASITAS DE CÃES E GATOS

Page 10: Diagnóstico parasitológico ii

PARASITAS DE RUMINANTES

Fasciola hepatica – ovos maiores de coloração esverdeada; Paramphistomum cervi – ovo menor, de coloração acinzentada