Atlas de Parasitologia Humana - 1ª edição - John Jr & Layele Dias
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Atlas de Parasitologia Humana
John Jr & Layele Dias
"Toda ciência é algo que levamos para a vida, que enfrentamos com todo o
conhecimento que temos, buscamos curas, reformas, inovação, descobertas, mesmo sem
saber de onde viemos, pra onde vamos. Mas temos uma certeza, certeza esta de que
somos todos poeira das estrelas." (John Jr. )
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John Jr, graduando em Biomedicina pela Faculdade Anhanguera de Brasília, 5º
semestre (2011.1).
Layele Dias, graduando em Biomedicina pela Faculdade Anhanguera de Brasília, 5ºsemestre (2011.1).
Revisão, professor João Alves Biomédico, especialista em Docência do ensino
superior, Faculdade Anhanguera de Brasília.
1ª Edição, 2011
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MÉTODOS DE EXAMES COPROLÓGICOS
São inúmeros os métodos de exames coprológicos descritos na literatura, os
quais podem ser qualitativos ou quantitativos, apresentando diferentes sensibilidades na
detecção de ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários. Descrevemos a seguiralguns dos métodos e soluções utilizados de rotina em laboratórios para análise.
Solução de lugol
Lugol 2,0 gIodeto de Potássio - KI 4,0 gÁgua destilada Completar para 100 ml
Conservantes de fezes
MIF (Mertiolato, Iodo e Formaldeído)
Glicerina 5 mlFormaldeído (40%) 25 mlMertiolato (ou mercurocromo) 0,1% 200 mlÁgua destilada 200 mlSolução de lugol 43 mlTotal 473 ml
SAF (Acetato de Sódio, Ácido Acético e Formaldeído)
Acetato de Sódio 15 gÁcido Acético 20 mlFormaldeído (40%) 40 mlÁgua destilada 925 mlTotal 1.000 ml
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Exame direto
Utilizado para pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos. Métodopouco sensível e só apresenta resultados positivos em infecções massivas.Procedimento: Adicionar solução de lugol às fezes, preparar a lâmina e observar
direto ao microscópio em aumento de 100X e 400X.
MÉTODO DE HOFFMAN, PONS & JANER ou HPJ
Utilizado na pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 10g de fezes em 10 ml de H2O em frasco pequeno.2. Filtrar em gaze dobrada em quatro, utilizando um cálice de sedimentação.3. Lavar o frasco 2X despejando a água na gaze.4. Completar o cálice com água e homogeneizar com bastão de vidro.
5. Deixar em repouso de 2 a 24 horas.6. Com uma pipeta tampada, retirar uma amostra do fundo do vértice do cálicedestampando a pipeta após imergí-la.7. Examinar ao microscópio, adicionando uma gota da solução de lugol.
1ª parte 2ª parte
Gase dobrada
Cálice de sedimentação
Sedimento
3ª parte
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MÉTODO DE WILLIS
Utilizado na pesquisa de ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 5g de fezes em uma solução saturada de NaCl.
2. Filtrar em gaze dobrada em quatro em frasco de Borrel e completar com asolução saturada de NaCl até formar um menisco convexo na boca do frasco.3. Colocar uma lâmina por sobre as bordas do frasco para que fique em contatocom o líquido ao menos por 5 minutos.4. Retirar a lâmina sem escorrer o líquido e examinar ao microscópio.
MÉTODO DE FAUST – (Centrífugo-flutuação)
Utilizado na pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 5g de fezes em 10ml de água e filtrar em gaze dobrada emquatro.2. Depositar o material em tubo cônico de centrífuga e centrifugar a 1500 rpm por2 minutos.3. Desprezar o sobrenadante e ressuspender novamente em 10 ml de água.4. Repetir os passos 2 e 3 até que o sobrenadante apresente-se claro.5. Adicionar 10 ml de sulfato de zinco (ZnSO2) 33 %, densidade 1.180,homogeneizar e centrifugar a 1500 rpm por 2’.
6. Recolher com alça de platina a película superficial, adicionar uma gota dasolução de lugol e observar ao microscópio.
MÉTODO DE RITCHIE
Utilizado na pesquisa de cistos de protozoários.
1. Idêntico ao método de FAUST até o ítem 4.2. Adicionar cerca de 8 ml de formol a 10%, homogeneizar, descansar por 10’ a 20’.
3. Adicionar cerca de 2 ml de éter, agitar vigorosamente e centrifugar a 1500 rpm por 2’.
4. Desprezar o sobrenadante e examinar o depósito ao microscópio adicionandouma gota da solução de lugol.
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MÉTODO DE BAERMANN-MORAES
Utilizado na pesquisa e isolamento de larvas de Strongyloides sp. de fezes e delarvas de nematóides do solo.
1. Em um funil de vidro, adicionar água a 40-41°C até o nível atingir 1/2 altura daamostra depositada em gaze dobrada em quatro ou em peneira apropriada na boca dofunil.2. Após duas horas, coletar amostras da água em vidro de relógio e examinar aomicroscópio.
MÉTODO DE GRAHAM (Método da fita adesiva)
Utilizado na pesquisa de ovos de E. vermicularis .
1. Com auxílio de um tubo de ensaio, fazer pressão com uma fita gomadatransparente (parte colante) sobre o ânus e região perianal.2. Colar a fita em lâmina e observar ao microscópio.
MÉTODO DE KATO - KATZ
Utilizado principalmente na pesquisa de ovos de S. mansoni e outros helmintos.
Utilização do Kit (quantitativo - OPG):1. Depositar uma pequena quantidade de fezes sobre uma folha de papel higiênicocolocando a tela por cima e pressionando com a paleta.2. Colocar sobre uma lâmina de vidro a placa de plástico e depositar no centro doorifício as fezes que ultrapassaram as malhas da tela (40 - 60 mg).3. Comprimir as fezes no orifício da placa até completá-lo.4. Sobrepor à lamínula de celofane (embebida em verde malaquita) e inverter apreparação realizando pressão com o polegar sobre a lâmina até obter umauniformidade do material.5. Deixar em repouso por cerca de 60 minutos a temperatura ambiente.6. Contar todos os ovos encontrados e multiplicar o total por 24, resultando em
ovos/grama de fezes.
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Referências
Imagens:
Algumas das imagens foram retiradas do “Atlas de parasitologia” da faculdade de
Farmácia da UFMG (Universidade Federal de Minas Gerais). Disponível em:http://www.farmacia.ufmg.br/ACT/atlas/ . (Acesso em, 08, 09, 10, 11, 12 e 13 denovembro de 2010).O restante das imagens foram retiradas do acervo pessoal de parasitologia do autor.
Ciclos biológicos:
http://www.cdc.gov/DiseasesConditions/ http://www.vira-lata.org/doc2.shtml
http://www.saudesaude.com.br/saudesaude/arquivo.php?Numero=9 Neves, David. Pereira – Parasitologia humana, 11ª edição.
Referências dos métodos e Técnicas dos conservantes:
AMATO NETO, V. & CORRÊA, L.L., 1991. Exame parasitológico das fezes. 5ªedição. Sarvier, São Paulo, SP. 92p.CIMERMAN, B. & CIMERMAN, S., 1999. Parasitologia Humana e seus fundamentosgerais. Editora Atheneu, Belo Horizonte, MG. 375 p.DE CARLI, G.A. 2001. Parasitologia Clínica: Seleção de Métodos e Técnicas deLaboratório para o Diagnóstico das Parasitoses Humanas. Editora Atheneu, Riode Janeiro, RJ. 810 p.
FERREIRA, A.W. & ÁVILA, S.L.M., 1996. Diagnóstico laboratorial das principaisdoenças infecciosas e auto-imunes. Editora Guanabara-Koogan, Rio de Janeiro,RJ. 302 p.NEVES, D.P. et alli, 1998. Parasitologia Humana. 10ªedição. Editora Atheneu, BeloHorizonte, MG. 524 p.REY, L., 1991. Parasitologia. 2ª edição. Editora Guanabara-Koogan, Rio de Janeiro, RJ.731 p.WHO – World Health Organization, 2000. Pranchas para o Diagnóstico de ParasitasIntestinais. Livraria Editora Santos, São Paulo, SP. 12 p.WHO – World Health Organization, 1999. Procedimentos Laboratoriais emParasitologia Médica. Livraria Editora Santos, São Paulo, Sp
Disponível em: http://www.proto.ufsc.br/downloads/protocolos/fezes.pdf (Acesso em11 de novembro de 2010).
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Informações sobre os autores
- John Jr
Graduação em andamento pela Faculdade Anhanguera de Brasília, 5° semestre
(2011.1).
Currículo lattes: http://lattes.cnpq.br/1615872512645184 Contato: (61) 8151 1450 / 8465 5054.Emails: [email protected] / [email protected].
- Layele Dias
Graduação em andamento pela Faculdade Anhanguera de Brasília, 5° semestre(2011.1).
Currículo lattes: Contato: Email: [email protected]
"Toda ciência é algo que levamos para a vida, que enfrentamos com todo o
conhecimento que temos, buscamos curas, reformas, inovação, descobertas, mesmo sem
saber de onde viemos, pra onde vamos. Mas temos uma certeza, certeza esta de que
somos todos poeira das estrelas." (John Jr. )
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