Gabriel - Bioinfo Grad - Aula 2 06-12-2014

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bioinformática

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+

BioinformáticaGenômica, Transcritômica e Metagenômica

Gabriel da Rocha FernandesUniversidade Católica de Brasília

gabrielf@ucb.br - fernandes.gabriel@gmail.com

+Estratégia de sequenciamento

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+Estratégia de sequenciamento

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+Sequenciadores

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+Arquivos de sequências

nAB1 e ESD - Sanger

nFastq - Illumina

nSFF - 454

nEsses arquivos tem que ser processados e a sequencia FASTA gerada.

nAlguns programas disponibilizam também o arquivo de qualidade das sequencias.

nPossível montagem sem a conversão em FASTA.

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+FastQ

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+Qualidade

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+Montagem

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+Análise de sequências?

nTransformar os dados do sequenciador em conhecimento biológico.

nBase calling.

nMontagem.

nPredição de genes.

nIdentificação de promotores e marcadores.

nGenômica comparativa.

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+Montagem do genoma

nAlinhamento das sequencias para geração de um consenso.

nIdentificação e eliminação dos gaps.

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+Predição de genes

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+Análise Funcional

nAssocia uma função aos genes preditos.

nBaseada na homologia entre sequências.

nUtiliza bases de dados de sequências conhecidas e programas de alinhamento.

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+Transcritoma

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nConjunto de todas as moléculas de RNA encontradas em uma população celular:n mRNAn tRNAn rRNAn miRNA

nTotal de transcritos encontrados em um organismo, tipo celular, condição...

nReflete os genes que estão sendo expressos em um determinado momento.

nSnapshot da função celular.

+Métodos de estudo

nExpressed Sequence Tags.

nSequenciado por método de Sanger.

nClonagem dos fragmentos usando vetores.

nNão funciona em procariotos.

nLow throughput.

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+Métodos de estudo

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nMicroarray.

nArranjos com os genes em locais determinados.

nComparação de amostras par a par.

nHibridização.

+Next Generation Sequencing

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+Custo do sequenciamento

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+RNA-seq

nUltra larga escala.

nNão necessita de clonagem.

nBaixo custo.

nValores absolutos.

nAnálise multi amostras.

nGrande cobertura.

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+Protocolo

nProtocolo para montagem da biblioteca pode variar de acordo com a tecnologia e com o objetivo:

nRemoção de rRNA.

nAmplificação por PCR.

nConversão a cDNA.

nSingle read ou pair end.

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+Genoma referência vs. Montagem de novo

nMapeamento dos reads a um genoma referência.n Quantificação da expressão.n Identificação de variantes de splicing.

nMontagem de novo do transcritoma.n Caracterização dos genes expressos.n Identificação de isoformas.n Ausência de genoma referência.

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+O que sai do sequenciador?

nFormato padrão para análises é o FastQ.

n @SEQ_IDGATTTGGGGTTCAAAGCAGTATCGATCAAATAGTAAATCCATTTGTTCAACTCAC+!”*((((***+))%%%++)(%%%%).1***-+*”))**55CCF»»»CCCCCCC65

nPrimeira linha: identificador da sequência.n Nome da sequência.n Informação sobre filtros.

nTerceira linha: qualidade da chamada da base (em código).

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+Montagem

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+Mapeamento e quantificação

nAs sequências produzidas são mapeadas a um genôma referência.

nAlinhou em apenas uma região = ótimo.

nAlinhou em mais que uma região = dilema.

nO uso de replicatas é FUNDAMENTAL!

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Repl. 1 Repl. 2 Repl. 3

Gene A 5 3 12

Gene B 16 25 35

Gene C 10 15 3

Gene D 750 500 500

Gene E 1504 1005 1030

+Interpretando a contagem dos genes

nNo exemplo da tabela, o Gene E tem duas vezes mais reads que o Gene D:n Gene E é expresso duas vezes mais que o Gene D.n Ambos os genes se expressam na mesma intensidade, mas o Gene E é

duas vezes maior que o Gene D.n Ambos os genes tem o mesmo tamanho e se expressam na mesma

intensidade, mas o Gene D tem um parálogo no genoma ao qual metade dos seus reads foram mapeados.

nA causa é os três ao mesmo tempo.

nMas quando analisamos o mesmo gene em 2 condições diferentes, os efeitos 2 e 3 são desconsiderados.

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+Identificando genes diferencialmente expressos.

nComparar diferentes condições: controle com testes.n Célula normal com célula tumoral.n Planta sem e com estresse hídrico.n Animal sem e com parasita...

nGenes em duas condições diferentes VÃO apresentar quantidades de reads diferentes.

nEssa variação pode ser diferença biológica entre as duas condições, ou ruído experimental.

nAplicação de testes estatísticos.

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+Identificando genes diferencialmente expressos.

nPara identificar uma diferença estatisticamente significantes, é necessário que a diferença de expressão entre as duas condições seja maior que a imprecisão do nível de expressão sob uma determinada condição.

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+Sou pobre, não vou usar replicata.

nLição de vida:n Um Gene H, em uma célula normal extraída do Zé Moreno, tem 5 reads.n O mesmo Gene H, em célula tumoral extraída do mesmo Zé Moreno,

tem 10 reads.n Uoua! O Gene H é duas vezes mais expresso na célula tumoral!

n Ganhei uns trocados e fiz transcritoma da célula normal de mais 2 pacientes. De brinde, ganhei o sequenciamento do Zé moreno de novo.

n O Gene H teve 12 reads na célula do Zé Moreno, 17 reads na Maria Tolé, e 22 reads na célula do Tião Torresmo.

nMoral da história: quanto mais medições fizer, mais vai ter certeza dos níveis de expressão dos genes.

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+Replicata técnica vs. Replicata biológica

nTécnica: explica a variação encontrada que pode ter sido causada por critérios técnicos: preparação da biblioteca, qualidade do sequênciamento, cobertura do gene...

nBiológica: explica a variação encontrada que pode ter sido causada pela variabilidade de expressão que não está associada à mudança nas condições do experimento.

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+Fontes de variaçãoVariância de Poisson

nÉ a incerteza existente em qualquer medição em que algo é amostrado e contado.

nComo é baseado no valor da contagem em si, não é específico do experimento.

nEssa variância está relacionada a quantidade total de reads.

nPor exemplo, a diferença na expressão de um gene medido com 1 read versus 2 reads é inerentemente menos seguro do que as diferenças na expressão de um gene medido com 100 reads versus 200 reads, apesar de ambas as diferenças serem, nominalmente, uma mudança 2X.

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+Fontes de variaçãoVariância de Poisson

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+Fontes de variaçãoVariação Técnica Não-Poisson

nAssociado à incapacidade da técnica não conseguir medir a expressão perfeitamente.

nVisto em replicatas técnicas.

nCausas:n Seleção de miRNA.n Depleção de rRNA.n Amplificação por PCR.n Armazenamento.n RNA-later.

nMoral da história: Manipule sua amostra o mínimo possível.

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+Fontes de variaçãoVariação Biológica

nOcorre naturalmente nas amostras.

nA expressão naturalmente flutua em células sob a mesma condição.

nCausas da variações biológicas podem ser diferenças genéticas, de maquinaria celular, ou de resposta a variação do ambiente.

nVariação biológica também sofre a influência das outras duas variações vistas.

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+Filosofando...

nMais replicatas vs. Mais reads.

nComo lidar com batch-effects?

nPreciso validar com RT-PCR?

nEu considero como diferencialmente expresso genes com p-value < 0.01.

nCalcular FDR (False discovery rate)

nLeia artigos que tenham usado benchmarks.

nConverse com o bioinformata que vai fazer as análises.

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+Metagenômica

nMetagenoma: material genético recuperado diretamente de amostras ambientais.

nFornece informações sobre os organismos em seu habitat natural.

+Metagenômica

nCerca de 99% das bactérias não são cultiváveis.

nPermite o estudo de organismos que não são facilmente cultivados em laboratório.

nIdentificação de funções em espécies ainda não identificadas.

+Análise do gene do rRNA 16s

nGene altamente conservado em bactérias e archaea.

nRegião hiper variável confere sequências com assinatura específica.

nFornece um perfil da diversidade na amostra.

+Whole Genome Shotgun e nova geração de sequenciadores

nPermite uma visão mais global da comunidade.

nAnálise dos níveis da diversidade filogenética e polimorfismos intraespecíficos.

nEstudo de genes completos e de vias metabólicas da comunidade.

nReconstrução dos genomas.

nDemanda intensa análise bioinformática.

+Etapas da análise metagenômica

nFatores influentes.

nInterdependências ocultas.

+Métodos de estudo - Funcional

nIsolamento do DNA da amostra.

nClonagem do DNA em um hospedeiro.

nExpressão do gene e análise funcional.

nAnálise das sequências.

+Métodos de estudo - Genômico

nDNA isolado pode ser submetido a um sequenciamento aleatório ou direcionado.

nPermite montagem de todo metaboloma.

nAnálise filogenética.

nMetagenômica comparativa.

+Análise filogenética e funcional

+Pipeline de análise

+Assinatura filogenética

nCada read é associado a um organismo (espécie, gênero, família…)

nUtiliza bases de dados de genômas referência ou base de dados NT do NCBI.

nFerramenta de alinhamento.

nValores de identidade para definir o nível cladístico assinado.

88% 98% 99%

Bacteroides fragilis

Escherichia coli

70%

+Assinatura filogenética

nComposição geral da amostra

nPrograma: MEGAN

nAgrupa multiplos alinhamentos em um nível cladístico.

+Análise filogenética

nQual clado prevalece na amostra?

nExiste um perfil filogenético?

nIdentificação de marcadores filogenéticos.

nAssociação da presença de um clado a uma determinada característica.

+Anotação funcional

nAvaliar o potencial genético da amostra.

nMontagem dos contigs.

nPredição dos genes.

nAlinhamento dos genes preditos a uma base de dados.

+Análise funcional

nQual função está mais presente?

nExiste alguma função do seu interesse?

nMontagem do mapa metabólico do ambiente.

nRastrear a função e identificar o organismo que executa.

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+Visualização